Pomiar ekspresji białek w mózgu gryzoni za pomocą fluorescencji w bliskiej podczerwieni i skanowania w wysokiej rozdzielczości

0 wyświetleń3:03 min • May 29th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weź szklane szkiełko zawierające skrawki tkanki mózgowej szczura barwione immunologicznie na obecność receptorów AMPA i NMDA w neuronach ciała migdałowatego.

Receptory AMPA pośredniczą w indukowanym glutaminianem napływie sodu i szybkiej pobudzającej transmisji synaptycznej.

W przeciwieństwie do tego, receptory NMDA pośredniczą w indukowanym glutaminianem i koagonistą napływie sodu i wapnia, ułatwiając powolną pobudzającą transmisję synaptyczną.

Receptory są barwione przeciwciałami pierwszorzędowymi i wykrywane za pomocą przeciwciał drugorzędowych znakowanych fluoroforem w bliskiej podczerwieni.

Umieść szkiełko stroną tkankową do dołu na interfejsie skanowania w bliskiej podczerwieni.

Dostosuj parametry obrazowania i rozpocznij obrazowanie.

Po oświetleniu laserowym fluorofory na receptorach AMPA i NMDA emitują fluorescencję.

Obrazowanie w bliskiej podczerwieni minimalizuje autofluorescencję, poprawiając klarowność sygnału.

Skanowanie w wysokiej rozdzielczości zapewnia ponadto wyraźne różnicowanie sygnałów fluorescencyjnych, umożliwiając precyzyjną wizualizację pobliskich receptorów AMPA i NMDA w ciele migdałowatym.

Korzystając z oprogramowania do obrazowania, oblicz współczynnik intensywności fluorescencji AMPA/NMDA w określonym obszarze zainteresowania jako marker uczenia się i pamięci.

Umieść szkiełka na interfejsie skanowania w bliskiej podczerwieni z tkanką skierowaną w dół. Obrazowanie wielu slajdów jednocześnie za pomocą narzędzia do zaznaczania. Zobrazuj slajdy przy użyciu najwyższych ustawień jakości, z rozdzielczością 21 mikrometrów. Z przesunięciem 0 nanometrów zaimportuj obrazy do oprogramowania do analizy obrazu, aby wyświetlić i oznaczyć do półilościowej analizy białek.

Po otwarciu oprogramowania do analizy obrazu wybierz obszar roboczy, do którego obraz został zeskanowany. Następnie otwórz zeskanowany obraz w oprogramowaniu do analizy obrazu, aby wyświetlić skan i dostosować długości fal, kontrast, jasność i powiększenie wyświetlane bez zmiany surowego obrazu lub całkowitej emisji ilościowej.

Po zidentyfikowaniu kluczowych regionów do oceny ilościowej wybierz kartę Analiza u góry strony, a następnie wybierz opcję Rysuj prostokąt, aby narysować prostokąt nad obszarem, który zostanie określony ilościowo. Aby wyświetlić rozmiar prostokąta, wybierz pozycję Kształty w lewym dolnym rogu ekranu. Następnie wybierz pozycję Kolumny w prawym dolnym rogu. Następnie dodaj kolumny Wysokość i Szerokość, aby zidentyfikować rozmiar kształtu. Na koniec nazwij kształt i powtórz. Po próbkowaniu wszystkich regionów kontynuuj łączenie i analizowanie danych dostępnych na karcie Kolumny.

13:50

Znakowanie białek synaptycznych po zatopieniu Immunogold w kulturach warstw hipokampa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:43

Immunohistochemiczna wizualizacja aktywności neuronów hipokampa po uczeniu przestrzennym w mysim modelu zaburzeń neurorozwojowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:45

Przygotowanie ostrych wycinków z grzbietowego hipokampa do zapisu całych komórek i rekonstrukcji neuronów w zakręcie zębatym dorosłych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:35

Szybka metoda obrazowania fluorescencyjnego o wysokiej rozdzielczości w półgrubych przekrojach mózgu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:59

Kwantyfikacja rozmieszczenia białka presynaptycznego w mózgu myszy za pomocą immunofluorescencji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:06

Wykonywanie podwójnej fluorescencji hybrydyzacji in situ w celu wykrycia ekspresji genów w skrawkach mózgu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:13

Obrazowanie uwalniania neuroprzekaźników za pomocą komórkowych neuroprzekaźników fluorescencyjnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:04

In vivo (in vivo) Obrazowanie optyczne guzów mózgu i zapalenia stawów za pomocą fluorescencyjnych nanopęcherzyków SapC-DOPS

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:01

Ilościowa metoda autoradiograficzna do oznaczania regionalnych szybkości syntezy białek mózgowych in vivo

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:18

Kwantyfikacja niejednorodnego rozmieszczenia białka synaptycznego w mózgu myszy za pomocą immunofluorescencji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026