Obrazowanie żywych komórek migracji jądrowej gleju Mullera podczas regeneracji siatkówki danio pręgowanego

0 wyświetleń5:50 min • June 17th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od osadzonego w agarozie eksplantatu grzbietowej siatkówki transgenicznego danio pręgowanego, zamontowanego we fluorodywie z pożywką.

Siatkówka wykazuje uszkodzenie fotoreceptorów wywołane światłem i zawiera komórki glejowe Mullera lub MGC z jądrami eksprymującymi GFP.

Umieść naczynie w komorze mikroskopu wielofotonowego.

Korzystając z oświetlenia jasnego pola, skup się na siatkówce.

Przełącz w tryb fluorescencji, aby zlokalizować MGC.

Skonfiguruj stos z od warstwy komórek zwojowych lub GCL do zewnętrznej warstwy jądrowej lub ONL.

Rozpocznij obrazowanie na żywo.

Uszkodzone fotoreceptory uwalniają TNF-α, aktywując MGC.

Jądra MGC migrują zasadniczo w wewnętrznej warstwie jądrowej lub INL w celu replikacji swojego DNA.

Następnie jądra migrują wierzchołkowo do ONL, aby przejść mitozę, wytwarzając neuronalne komórki progenitorowe.

Po mitozie jądra MGC i komórki progenitorowe migrują zasadniczo z powrotem do INL.

Komórki progenitorowe namnażają się, migrują do miejsca urazu i różnicują się w fotoreceptory, umożliwiając regenerację siatkówki.

Przeanalizuj przechwycone obrazy, aby zobrazować migrację jądrową.

W oprogramowaniu do akwizycji obrazów otwórz okna A1 MP GUI, TiPad, A1 Compact GUI i ND Acquisition. W przypadku obrazowania wielofotonowego upewnij się, że opcja IR NDD jest wybrana w oknie A1 Compact GUI. Następnie w polu ustawień wybierz IR-DM dla pierwszego lustra dichroicznego i sprawdź, czy filtr pasmowoprzepustowy jest ustawiony na 525 do 50, aby uzyskać fluorescencję GFP.

Następnie włącz laser IR w oknie GUI A1 MP. Zajmie to kilka minut, zanim laser będzie gotowy. Następnie ustaw długość fali na 910 nanometrów, aby wzbudzić fluorescencję GFP i wyrównaj laser, klikając przycisk Automatyczne wyrównanie.

Po umieszczeniu hodowli siatkówki na stoliku mikroskopu wielofotonowego należy upewnić się, że oświetlenie pomieszczenia i sprzętu jest wyłączone przed otwarciem migawki, aby uniknąć prześwietlenia lampy fotopowielacza. Aby zmniejszyć poziom hałasu, mikroskop należy umieścić w zaciemnionym otoczeniu.

Uzyskuje obrazy o polu widzenia 300 na 300 pikseli przy powiększeniu 2, które jest ustawiane w oknie Obszar skanowania, oraz o czasie przebywania pikseli wynoszącym 4,8 mikrosekundy na piksel wybranym w oknie kompaktowego graficznego interfejsu użytkownika A1. Z grubsza ustaw moc lasera, zmieniając obszar akwizycji w oknie graficznego interfejsu użytkownika A1 MP i wzmocnienie w oknie graficznego interfejsu użytkownika A1 Compact.

Teraz skoncentruj się na warstwie komórek zwojowych i ustaw górną płaszczyznę ogniskową stosu z w oknie podrzędnym Z w oknie Akwizycji ND. Przesuń płaszczyznę ogniskową przez poziom zewnętrznej warstwy jądrowej, która charakteryzuje się obecnością słabo oznaczonych komórek GFAP i GFP-dodatnich, które są okrągłe i powiększone w stosunku do ich odpowiedników w wewnętrznej warstwie jądrowej.

Ustaw tę płaszczyznę jako dolną część stosu z. Następnie ustaw rozmiar kroku z w zakresie od 0,7 do 1 mikrometra. Aby skonfigurować korekcję intensywności z, otwórz okno Korekcja intensywności Z i wybierz opcję From ND (Z ND), aby ustawić zakres stosu z. Następnie kliknij dolną płaszczyznę ogniskowej w oknie Korekcja intensywności Z i ustaw intensywność i wzmocnienie lasera.

Następnie kliknij strzałkę obok wartości z w oknie Korekcja intensywności Z, aby potwierdzić ustawienia, które są następnie wyświetlane w obszarze Ustawienia urządzenia w oknie Korekcja intensywności Z dla wybranej płaszczyzny ogniskowej. Powtórz proces dla środkowej i górnej płaszczyzny, zwiększając moc i wzmocnienie lasera.

Ustaw obszar akwizycji w oknie graficznego interfejsu użytkownika A1 MP i unikaj wybierania obszaru akwizycji większego niż 15 i wzmocnienia wyższego niż 126 na początku obrazowania, aby obejść fotowybielanie i zwiększony poziom szumów. Następnie wybierz względną korekcję intensywności w oknie Korekcja intensywności Z. W oknie podrzędnym szeregów czasowych okna Akwizycja ND ustaw czas trwania na osiem godzin, a interwał na brak opóźnienia. Następnie kliknij przycisk Uruchom korektę Z w oknie podrzędnym Z-Stack w oknie Akwizycja ND, aby uzyskać szeregi czasowe 3D.

06:27

Aktywacja komórek glejowych Müllera w indukowanym laserowo modelu zwyrodnienia i regeneracji siatkówki u danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:03

Przezźrenicowe dwufotonowe obrazowanie in vivo siatkówki myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

13:12

Ablacja za pośrednictwem nitroreduktazy/metronidazolu oraz platforma MATLAB (RpEGEN) do badania regeneracji nabłonka barwnikowego siatkówki danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:17

Znakowanie i obrazowanie komórek w rdzeniu przedłużonym rybki danio

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:31

Wielokolorowe obrazowanie poklatkowe transgenicznych rybek zebrafish: wizualizacja komórek macierzystych siatkówki aktywowanych przez ukierunkowaną ablację komórek neuronalnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:10

Wytwarzanie pierwotnych kultur komórek zwojowych siatkówki z zarodków danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:55

Wsteczne znakowanie komórek zwojowych siatkówki u dorosłych danio pręgowanego za pomocą barwników fluorescencyjnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:31

Nowy paradygmat uszkodzeń spowodowanych światłem do wykorzystania w badaniach nad regeneracją siatkówki u dorosłych danio pręgowanych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:53

Zwyrodnienie i regeneracja siatkówki wywołane przez metylonitromocznik (MNU) u danio pręgowanego: charakterystyka histologiczna i funkcjonalna

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:55

Hodowla dorosłych transgenicznych eksplantatów siatkówki danio pręgowanego do obrazowania żywych komórek za pomocą mikroskopii wielofotonowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026