Poklatkowe obrazowanie konfokalne dynamiki dendrytycznej neuronów w eksplantatach siatkówki myszy

0 wyświetleń3:15 min • June 17th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od żywego eksplantatu siatkówki myszy po urodzeniu zamontowanego na filtrze membranowym i umieszczonego w komorze inkubacyjnej pod mikroskopem konfokalnym.

Siatkówka jest transfekowana w celu ekspresji białka fluorescencyjnego w błonach interneuronów amakrynowych gwiazdotwórczych.

Umieść wstępnie zwilżoną próbkę masy na siatkówce, aby ją ustabilizować.

Napełnij komorę buforem.

Utrzymuj optymalny przepływ buforowy i temperaturę w komorze, aby zachować żywotność neuronów.

Umieść obiektyw zanurzony w wodzie w komorze obrazowania.

Rozpocznij obrazowanie epifluorescencyjne.

Światło lasera, skierowane przez obiektyw, wzbudza białko fluorescencyjne w komórkach amakrynowych.

Emitowana fluorescencja jest wychwytywana przez ten sam obiektyw, co pozwala na wizualizację znakowanych komórek amakrynowych.

Zidentyfikuj jaskrawo fluorescencyjną komórkę do obrazowania.

Ustaw parametry obrazowania.

Przechwytuj obrazy w wielu płaszczyznach Z, aby uzyskać wizualizację 3D pełnej morfologii dendrytycznej.

Wykonaj obrazowanie poklatkowe, aby śledzić zmiany w morfologii dendrytycznej w czasie.

Zmontować komorę inkubacyjną do obrazowania na żywo i napełnić ją natlenionym aCSF. Włącz pompę i regulator temperatury, upewniając się, że temperatura nie wzrośnie powyżej 34 stopni Celsjusza. Ustabilizowanie się temperatury w komorze może potrwać do godziny. Zaleca się ustawienie komory inkubacyjnej przed rozpoczęciem rozwarstwienia siatkówki. Stabilna temperatura w komorze pomaga zmniejszyć dryft próbki.

Aby przenieść płaski wzgórek siatkówki do komory perfuzyjnej, zatrzymaj pompę i usuń aCSF, który znajduje się w komorze. Następnie umieść krążek MCE z płaskim mocowaniem siatkówki w komorze inkubacyjnej. Wstępnie zwilż wzorzec próbki, aby złamać napięcie powierzchniowe, a następnie umieść ją na płaskim kopcu, upewniając się, że masa próbki jest umieszczona na papierze MCE, aby zmniejszyć dryft próbki. Napełnij komorę podgrzanym aCSF i cyrkuluj aCSF z prędkością około 1 mililitra na minutę.

Umieść końcówkę nosową z obiektywem zanurzającym 25 razy w wodzie w komorze obrazowania. Wykonaj badanie przesiewowe w poszukiwaniu oznaczonych komórek zainteresowania za pomocą światła epifluorescencyjnego i dostosuj głośność obrazowania, aby uchwycić interesujące cechy dendrytyczne.

Korzystając z tabeli przeglądowej, która identyfikuje zarówno przesycone, jak i nienasycone piksele, dostosuj moc lasera w taki sposób, aby żadne piksele nie były przesycone. Uzyskaj objętość obrazowania 3D i powtórz akwizycję z żądaną liczbą klatek na sekundę. Objętość obrazowania można regulować między poszczególnymi punktami czasowymi, aby skompensować dryft próbki.

10:12

Obrazowanie na żywo pierwotnych komórek kory mózgowej za pomocą systemu hodowli 2D

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:38

Wizualizacja i obrazowanie na żywo organelli oligodendrocytów w organotypowych wycinkach mózgu przy użyciu wirusa związanego z adenowirusem i mikroskopii konfokalnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:23

Obrazowanie na żywo w trybie poklatkowym i kwantyfikacja dynamiki szybkich gałęzi dendrytycznych w rozwoju neuronów Drosophila

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:13

Jednoczesne obrazowanie dynamiki mikrogleju i aktywności neuronalnej u wybudzonej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:59

Obrazowanie poklatkowe migracji radialnej neuronów korowych w transdukowanych wycinkach mózgu embrionalnego myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:43

Obrazowanie poklatkowe podziału nerwowych komórek macierzystych myszy za pomocą mikroskopii konfokalnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:21

Obrazowanie in vitro w czasie rzeczywistym rozgałęzień aksonalnych w neuronach korowych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:43

Długoterminowe obrazowanie poklatkowe eksplantatów ślimaka myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

16:45

Jednoczesne dwufotonowe obrazowanie in vivo wejść synaptycznych i celów postsynaptycznych w korze zaśledzinowej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

13:33

Poklatkowe obrazowanie konfokalne migrujących neuronów w organotypowej kulturze warstwowej embrionalnego mózgu myszy przy użyciu elektroporacji in utero

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026