RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Zacznij od znieczulonego szczura ze osadzonymi w czaszce.
Szczur ma wszczepioną w klatkę piersiową przeciwelektrodę z podskórnie tunelowanym przymocowanym wokół jednej ze osadzonych w czaszce.
do złącza.
Przyklej przezczaszkową elektryczną stymulację mózgu lub gniazdo elektrody tES do czaszki nad korą ruchową.
Uszczelnij zespół klejem, a następnie zabezpiecz go cementem dentystycznym.
Zmień położenie skóry i pozwól szczurowi dojść do siebie.
Napełnij gniazdo solą fizjologiczną.
Zakręć nasadkę elektrody tES zawierającą elektrodę stymulacyjną.
Podłącz urządzenie stymulujące do złączy.
Umieść szczura w klatce, która umożliwia swobodny ruch.
Zainicjuj stymulację anodową w celu wytworzenia pola elektrycznego w korze ruchowej, umożliwiając otwarcie kanału jonowego bramkowanego napięciem, napływ jonów dodatnich i depolaryzację neuronów.
Zwiększa to aktywność synaptyczną, wyzwalając uwalnianie ATP, które aktywuje mikroglej, kluczowy dla odpowiedzi immunologicznej.
Aktywacja neuronalna i mikrogleju podkreśla potencjał neuroterapeutyczny tES.
Zacznij od zeskrobania okostnej, tkanki łącznej czaszki, na boki skalpelem i dokładnie wytrzyj bawełnianymi wacikami. Przymocuj tkankę łączną w czterech rogach nacięcia za pomocą zacisków buldoga i pozwól im zwisać z boku, aby pole operacyjne było otwarte.
Następnie nałóż 0,9% soli fizjologicznej, aby oczyścić powierzchnię kości i tkankę za pomocą bawełnianych wacików. Następnie oczyść powierzchnię kości 3% nadtlenkiem wodoru. Użyj bawełnianego wacika, aby usunąć wszelkie pozostałości okostnej, gdy staną się widoczne. Ponieważ mocujące poprawią przyczepność konfiguracji, wybierz wiertło pasujące do rozmiaru. Umieść dwa otwory na zadziory na dwóch różnych płytkach kostnych, wstępnie nawiercając wiertarką ręczną, a następnie lekko dociskając pionowo wiertłem do kości.
W przypadku wszczepionej przeciwelektrody, jak pokazano na tym filmie, należy przebić trzeci otwór znajdujący się w prawej tylnej tylnej kości ciemieniowej w celu przyszłego zamocowania tunelizowanego. Umieść plastikowe w otworach na zadziory i dokręć, aż poczujesz pierwsze tarcie. Następnie wykonaj trzy dodatkowe obroty o 180 stopni.
Użyj kleszczyków, aby sprawdzić stabilność i dodaj jeszcze 1 obrót, jeśli nie jest wystarczająco dokładny. Włącz lutownicę i podgrzewaj przez około 5 minut. Nawiń wychodzący z tunelu tkankowego potylicznie wokół prawej ciemieniowej, a następnie przetnij go, pozostawiając około 1 centymetr za uzwojeniem.
Ostrożnie zdejmij izolację na końcu skalpelem, a następnie przymocuj nawinięty do i kości za pomocą kleju cyjanoakrylowego. Następnie nałóż niewielką ilość bezołowiowego lutu cynowego na złącze i na nieosłonięte przewody przeciwelektrody i połącz oba, krótko ściskając ze sobą obie wstępnie posortowane części, dotykając końcówki lutowniczej, aż lut cynowy się stopi.
Natychmiast wyjmij grot lutowniczy, aby uniknąć nadmiernego nagrzewania się metalu, co prowadzi do późniejszego uszkodzenia tkanki. Do stymulacji kory ruchowej użyj nasadki o średnicy 4 milimetrów. Podnieś wykonane na zamówienie gniazdo elektrody tES za pomocą wygiętych ząbkowanych kleszczyków i nałóż cienką warstwę kleju cyjanoakrylowego na dolną krawędź gniazda.
Wewnętrzna przyśrodkowa granica zębodołu powinna kończyć się bezpośrednio na szwie strzałkowym, a wewnętrzna granica ogonowa powinna kończyć się na wysokości bregmy. Następnie krótko dociśnij panewkę do kości, aż klej stwardnieje. I użyj światła, aby upewnić się, że kość w obszarze gniazda nie ma na sobie żadnego odblaskowego kleju.
Po umieszczeniu zębodołu na miejscu, a obszar przyszłej stymulacji jest wolny od kleju, uszczelnij boczną granicę gniazda do sąsiedniej tkanki za pomocą małej kropli kleju cyjanoakrylowego, aby uniknąć mostka płynu, który mógłby prowadzić do przetaczania prądu w tym miejscu. Następnie przykryj wszystkie klejem cyjanoakrylowym.
Następnie wymieszaj dwuskładnikowy dentystyczny cement akrylowy w małej silikonowej tubce lub szklance. Gdy tylko stanie się lepki, nałóż go szpatułką dentystyczną, aby uszczelnić pozostałe granice zębodołu do kości. Na koniec pokryj całe czaszki, przeciwelektrody i do jednej trzeciej gniazda dentystycznym cementem akrylowym. Po pokryciu całej kości i stwardnieniu cementu usuń zaciski buldoga i zmień położenie skóry.
Zacznij od napełnienia gniazda elektrody tES do połowy 0,9% solą fizjologiczną i usuń pęcherzyki powietrza. Przed katodowymi sesjami tDCS sprawdź chlorowanie. W razie potrzeby ponownie chlorować elektrodę srebrowo-chlorkową. Przed sesjami anodowego tDCS usuń ewentualny nadmiar osadów chlorku srebra z poprzednich stymulacji papierem ściernym, aby zapewnić dobrą przewodność podczas stymulacji. Następnie wkręć nasadkę elektrody tES.
Podłącz do dwóch złączy na głowicy. Następnie umieść gryzonia w klatce eksperymentalnej z podłączonymi do krętlika nad klatką, który pozwala na swobodny ruch. Włącz stymulator i dostosuj parametry stymulacji. Na koniec po zakończeniu stymulacji należy odłączyć, odkręcić nasadkę elektrody na głowicy, a następnie wyczyść i osusz gniazdo wacikiem.
Related Videos
11:11
Related Videos
9.3K Views
10:51
Related Videos
9K Views
11:54
Related Videos
14.6K Views