Analiza morfologii dendrytycznej w warstwach i kolumnach rdzenia Drosophila

0 wyświetleń4:27 min • June 17th, 2025

Zacznij od oczyszczonego glicerolem mózgu Drosophila w pożywce zapobiegającej blaknięciu.

Mózg zawiera neurony rdzenia ułożone w warstwy, które organizują połączenia synaptyczne i kolumny, które koordynują obwody neuronalne.

Kilka z tych neuronów jest oznaczonych zielonymi markerami fluorescencyjnymi, kontrastującymi z czerwonymi fluorescencyjnymi aksonami fotoreceptorów.

Ustaw mózg brzuszną stroną do góry. Umieść szkiełko nakrywkowe z małymi glinianymi plamami po bokach, aby zapobiec zgnieceniu próbki mózgu.

Pod mikroskopem uzyskaj stos obrazów w widoku poziomym, zawierający neuron oznaczony na zielono.

Usuń szkiełko nakrywkowe i zmień położenie mózgu, przednią stroną do góry.

Uchwyć stos obrazów przedstawiający widok z przodu tego samego neuronu.

Korzystając z oprogramowania, połącz te obrazy, usuń kanał fotoreceptora i zwizualizuj obraz 3D neuronu.

Prześledź akson, a następnie dendryty, podążając za każdą gałęzią do jej zakończenia, aby odwzorować organizację dendrytyczną w warstwach rdzenia i kolumnach.

Aby zamontować mózg w orientacji poziomej, przenieś mózg oczyszczony z glicerolu do 20-mikrolitrowej kropli środka mocującego zapobiegającego blaknięciu, osadzonej centralnie na szkiełku mikroskopowym. Następnie na szkiełku nakrywkowym przymocuj małe plamy gliny w czterech rogach, aby szkiełko nakrywkowe nie zmiażdżyło mózgu.

Teraz, pod mikroskopem preparacyjnym, ustaw mózgi w pozycji brzusznej do góry. Użyj wypukłej grzbietowej powierzchni mózgu jako punktu orientacyjnego, aby określić orientację próbki mózgu. Zapewni to horyzontalny widok neuronu. Następnie przymocuj szkiełko nakrywkowe.

Za pomocą mikroskopu konfokalnego, najlepiej wyposażonego w detektory GaAsP. Uzyskaj stos obrazów w widoku poziomym z obiektywem o dużej aperturze numerycznej i zoomem cyfrowym 2,5. Zdobądź co najmniej 180 sekcji optycznych, miej 512 pikseli kwadratowych i rozmiar kroku 0,2 mikrona.

Po zrobieniu pierwszego stosu obrazów usuń szkiełko nakrywkowe ze szkiełka i ustaw mózg w pozycji przedniej do góry, która zapewnia widok z przodu. Następnie, korzystając z tej samej techniki, utwórz nowy stos obrazów przedstawiający widok z przodu tych samych neuronów zobrazowanych w widoku poziomym. Pamiętaj również, aby zapisać lokalizację neuronu będącego przedmiotem zainteresowania w stosunku do rdzenia neuropil.

Identyfikacja tych samych neuronów jest możliwa przy mniejszym powiększeniu. Jeśli jednak sygnał zostanie utracony, ponieważ tkanka jest głęboka, po prostu wyobraź sobie brzuszną połowę mózgu.

Celem tej procedury jest prześledzenie neurytów i przypisanie punktów odniesienia do rejestracji. Najpierw otwórz ponownie połączony plik obrazu. Następnie przejdź do Edycja, a następnie Pokaż korektę wyświetlania i wyłącz kanał fotoreceptora, który jest czerwony.

Następnie wizualizuj obraz w trybie przewyższania. Jeśli komputer jest wyposażony w system stereografu, włącz stereo i użyj trybu Quad Buffer do wizualizacji obrazów 3D. Dodaj nowe filamenty. Przejdź do Surpass, a następnie Filamenty. I kliknij zakładkę oznaczoną "Pomiń automatyczne tworzenie, edytuj ręcznie". Następnie kliknij kartę Rysuj i wybierz AutoGłębokość.

Następnie wybierz Ustawienia. Przełącz opcję Linia i wprowadź odpowiednią liczbę pikseli, aby uzyskać lepszą wizualizację. Następnie przełącz opcję Pokaż dendryty, punkt początkowy i punkt rozgałęzienia, a następnie ustaw jakość renderowania na 100%. Teraz wybierz kartę Rysuj i rozpocznij śledzenie neurytów. Zacznij od aksonu, a następnie przejdź do dendrytów. Aksony i dendryty neuronów transmedulla powinny być łatwe do rozróżnienia.

Po prześledzeniu neurytów wróć do Ustawień i przełącz zarówno punkt początkowy, jak i punkt rozgałęzienia. Następnie przejdź do Przesuń, a następnie Eksportuj. Wybierz obiekty i zapisz filament jako plik programu Inventor.

11:56

Wizualizacja wzorca projekcji aksonalnej embrionalnych neuronów ruchowych u Drosophila

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:23

Obrazowanie na żywo w trybie poklatkowym i kwantyfikacja dynamiki szybkich gałęzi dendrytycznych w rozwoju neuronów Drosophila

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:20

Wykorzystanie elektroporacji poporodowej in vivo do badania morfologii neuronów ziarnistych móżdżku i rozwoju synaps

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:42

Analiza morfologiczna dendrytów i aksonów obwodowych neuronów sensorycznych larw Drosophila z wykorzystaniem mozaik genetycznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:49

Immunohistochemiczne znakowanie mikrotubul w dendrytach neuronów sensorycznych, tchawkach i mięśniach ściany ciała larwy Drosophila

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:33

Znakowanie pojedynczych komórek w ośrodkowym układzie nerwowym Drosophila melanogaster

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:41

Usuwanie tkanki mięśniowej Drosophila z filetów larwalnych w celu analizy immunofluorescencyjnej neuronów czuciowych i komórek naskórka

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:41

Analiza morfologii dendrytycznej w kolumnach i warstwach

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:13

Rozwarstwienie i barwienie immunofluorescencyjne neuronów ciała grzyba i fotoreceptorów w mózgach dorosłych Drosophila melanogaster

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:13

Analiza ilościowa złożoności neuronalnej arboryzacji dendrytycznej u Drosophila

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026