JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuronauka
0 wyświetleń • 4:27 min • June 17th, 2025
Zacznij od oczyszczonego glicerolem mózgu Drosophila w pożywce zapobiegającej blaknięciu.
Mózg zawiera neurony rdzenia ułożone w warstwy, które organizują połączenia synaptyczne i kolumny, które koordynują obwody neuronalne.
Kilka z tych neuronów jest oznaczonych zielonymi markerami fluorescencyjnymi, kontrastującymi z czerwonymi fluorescencyjnymi aksonami fotoreceptorów.
Ustaw mózg brzuszną stroną do góry. Umieść szkiełko nakrywkowe z małymi glinianymi plamami po bokach, aby zapobiec zgnieceniu próbki mózgu.
Pod mikroskopem uzyskaj stos obrazów w widoku poziomym, zawierający neuron oznaczony na zielono.
Usuń szkiełko nakrywkowe i zmień położenie mózgu, przednią stroną do góry.
Uchwyć stos obrazów przedstawiający widok z przodu tego samego neuronu.
Korzystając z oprogramowania, połącz te obrazy, usuń kanał fotoreceptora i zwizualizuj obraz 3D neuronu.
Prześledź akson, a następnie dendryty, podążając za każdą gałęzią do jej zakończenia, aby odwzorować organizację dendrytyczną w warstwach rdzenia i kolumnach.
Aby zamontować mózg w orientacji poziomej, przenieś mózg oczyszczony z glicerolu do 20-mikrolitrowej kropli środka mocującego zapobiegającego blaknięciu, osadzonej centralnie na szkiełku mikroskopowym. Następnie na szkiełku nakrywkowym przymocuj małe plamy gliny w czterech rogach, aby szkiełko nakrywkowe nie zmiażdżyło mózgu.
Teraz, pod mikroskopem preparacyjnym, ustaw mózgi w pozycji brzusznej do góry. Użyj wypukłej grzbietowej powierzchni mózgu jako punktu orientacyjnego, aby określić orientację próbki mózgu. Zapewni to horyzontalny widok neuronu. Następnie przymocuj szkiełko nakrywkowe.
Za pomocą mikroskopu konfokalnego, najlepiej wyposażonego w detektory GaAsP. Uzyskaj stos obrazów w widoku poziomym z obiektywem o dużej aperturze numerycznej i zoomem cyfrowym 2,5. Zdobądź co najmniej 180 sekcji optycznych, miej 512 pikseli kwadratowych i rozmiar kroku 0,2 mikrona.
Po zrobieniu pierwszego stosu obrazów usuń szkiełko nakrywkowe ze szkiełka i ustaw mózg w pozycji przedniej do góry, która zapewnia widok z przodu. Następnie, korzystając z tej samej techniki, utwórz nowy stos obrazów przedstawiający widok z przodu tych samych neuronów zobrazowanych w widoku poziomym. Pamiętaj również, aby zapisać lokalizację neuronu będącego przedmiotem zainteresowania w stosunku do rdzenia neuropil.
Identyfikacja tych samych neuronów jest możliwa przy mniejszym powiększeniu. Jeśli jednak sygnał zostanie utracony, ponieważ tkanka jest głęboka, po prostu wyobraź sobie brzuszną połowę mózgu.
Celem tej procedury jest prześledzenie neurytów i przypisanie punktów odniesienia do rejestracji. Najpierw otwórz ponownie połączony plik obrazu. Następnie przejdź do Edycja, a następnie Pokaż korektę wyświetlania i wyłącz kanał fotoreceptora, który jest czerwony.
Następnie wizualizuj obraz w trybie przewyższania. Jeśli komputer jest wyposażony w system stereografu, włącz stereo i użyj trybu Quad Buffer do wizualizacji obrazów 3D. Dodaj nowe filamenty. Przejdź do Surpass, a następnie Filamenty. I kliknij zakładkę oznaczoną "Pomiń automatyczne tworzenie, edytuj ręcznie". Następnie kliknij kartę Rysuj i wybierz AutoGłębokość.
Następnie wybierz Ustawienia. Przełącz opcję Linia i wprowadź odpowiednią liczbę pikseli, aby uzyskać lepszą wizualizację. Następnie przełącz opcję Pokaż dendryty, punkt początkowy i punkt rozgałęzienia, a następnie ustaw jakość renderowania na 100%. Teraz wybierz kartę Rysuj i rozpocznij śledzenie neurytów. Zacznij od aksonu, a następnie przejdź do dendrytów. Aksony i dendryty neuronów transmedulla powinny być łatwe do rozróżnienia.
Po prześledzeniu neurytów wróć do Ustawień i przełącz zarówno punkt początkowy, jak i punkt rozgałęzienia. Następnie przejdź do Przesuń, a następnie Eksportuj. Wybierz obiekty i zapisz filament jako plik programu Inventor.
Niniejszy artykuł szczegółowo opisuje metodę obrazowania neuronów mózgu Drosophila z wykorzystaniem mikroskopii konfokalnej. Głównym celem jest wizualizacja i śledzenie organizacji neuronów ciała włókienstych (medulla) oraz ich połączeń synaptycznych.
Metoda ta umożliwia wysokorozdzielczą wizualizację 3D morfologii neuronów w genetycznie modyfikowalnym systemie modelowym, wspierając walidację celu poprzez szczegółowe mapowanie strukturalne obwodów neuronalnych. Dzięki dostarczeniu ilościowych danych morfologicznych w określonych warstwach i kolumnach anatomicznych, metoda ta usprawnia ograniczanie ryzyka mechanistycznego w fazie wczesnego odkrywania leków poprzez wyjaśnienie zależności między strukturą a funkcją. Podejście to zwiększa pewność predykcyjną w wyborze celu, łącząc organizację dendrytów z wzorcami łączności synaptycznej istotnymi dla modeli chorób neuropsychiatrycznych.
Metoda ta integruje się z kontinuum odkryć – od wczesnej walidacji celu po identyfikację związku wiodącego – dostarczając danych z fenotypowania strukturalnego, które wspierają zrozumienie mechanizmów oraz modelowanie predykcyjne.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026