Adaptacja neuronalna do powtarzającego się kondycjonowania wstępnego hipoksyjnego u myszy

0 wyświetleń2:52 min • August 7th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Umieść mysz w szczelnej komorze indukcyjnej podłączonej do wlotu w celu kontrolowanego dostarczania tlenu.

Wystaw go na cykle wahań niskiego poziomu tlenu, zwane powtarzającym się kondycjonowaniem wstępnym hipoksyjnym lub RHP.

Z każdym cyklem zmniejszonej ilości tlenu poziom tlenu we krwi myszy spada, tworząc stan niedotlenienia.

Niektóre neurony w mózgu stopniowo się przystosowują, dostosowując swój metabolizm, aby przetrwać w środowisku o niskiej zawartości tlenu.

Bariera krew-mózg, która chroni mózg, pozostaje stabilna i zapobiega zapaleniu mózgu.

Wyjmij mysz z komory i pozwól na regenerację. Następnie wywołać udar niedokrwienny poprzez zablokowanie środkowej tętnicy mózgowej.

Zapobiega to przedostawaniu się krwi bogatej w tlen do mózgu, narażając neurony na ekstremalne obciążenie.

Bariera krew-mózg zostaje zakłócona, wywołując stan zapalny.

Jednak neurony trenowane przez RHP są lepiej przystosowane do warunków niskiego poziomu tlenu, dzięki czemu są bardziej odporne na uszkodzenia i zachowują swoją funkcję.

Sugeruje to, że RHP pomaga neuronom przystosować się i zmniejsza uszkodzenia mózgu spowodowane udarem niedokrwiennym i niedoborem tlenu.

Na początek podziel myszy na dwie grupy, grupę RHP, która otrzymuje ekspozycję na 8% i 11% tlenu, oraz grupę kontrolną, która jednocześnie otrzymuje ekspozycję na 21% tlenu. Zdejmij górną pokrywę filtra z każdej klatki i umieść klatkę z nienaruszonymi butelkami z jedzeniem i wodą w komorach podłączonych do odpowiednich zbiorników tlenu. Zamknij i zabezpiecz pokrywę komory.

Otwórz główny zawór gazowy zbiorników i ustaw początkowy przepływ dla każdej komory indukcyjnej na 2 litry na minutę lub LPM. Po pięciu minutach ekspozycji zmniejsz natężenie przepływu do 1 l/min przez pozostałą część ekspozycji. Pod koniec ekspozycji zmniejsz przepływ do zera LPM i zamknij zawór gazowy zbiorników.

Otwórz pokrywy komory i załóż górną pokrywę filtra na każdą klatkę. Umieścić koszyki w standardowej obudowie do czasu następnej ekspozycji na niedotlenienie. Po każdym użyciu spryskaj każdą komorę indukcyjną środkiem dezynfekującym i dezodorantem.

Wystaw zarówno myszy RHP, jak i kontrolne o tej samej porze dnia w ciągu dwóch tygodni protokołu. Następnie wykonaj przejściową niedrożność tętnicy środkowej mózgu lub TMCAO, jak opisano w tekście.

11:49

Ilościowa i czasowa kontrola mikrośrodowiska tlenu na poziomie pojedynczej wyspy trzustkowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:13

Modele eksperymentalne do badania neuroprotekcji kwaśnego kondycjonowania końcowego przeciwko niedokrwieniu mózgu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:00

Supramaksymalna intensywność ćwiczeń hipoksyjnych i ocena funkcji naczyń krwionośnych u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

16:27

Strategie badania neuroprotekcji indukowanej prekondycjonowaniem zimnem

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:09

Ustalenie mysiego modelu niedotlenionego i niedokrwiennego uszkodzenia mózgu u noworodków

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:45

Dostarczanie in vivo ostrej przerywanej hipoksji u noworodków gryzoni do głównych kultur neuronalnych komórek progenitorowych pochodzących ze strefy podkomorowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:48

Kwantyfikacja ochrony nerwowo-naczyniowej po powtarzającym się kondycjonowaniu wstępnym hipoksyjnym i przejściowym zamknięciu tętnicy środkowej mózgu u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:32

Oceny neurobehawioralne w mysim modelu niedotlenionego i niedokrwiennego uszkodzenia mózgu u noworodków

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:29

Ciągły elektroencefalogram wideo podczas niedotlenienia-niedokrwienia u nowonarodzonych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:58

Minimalizacja niedotlenienia w plastrach hipokampa od dorosłych i starzejących się myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026