Charakterystyka połączeń nerwowo-mięśniowych u myszy za pomocą połączonej mikroskopii konfokalnej i superrozdzielczej

0 wyświetleń4:07 min • June 17th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od chemicznie utrwalonych i przepuszczalnych mysich włókien mięśniowych umieszczonych w dołkach płytki wielodołkowej.

Inkubować w roztworze blokującym, aby zminimalizować niespecyficzne wiązanie przeciwciał.

Dodaj pierwszorzędowe przeciwciała skierowane przeciwko białku presynaptycznemu ulegającemu ekspresji w złączu nerwowo-mięśniowym lub NMJ.

Przemyć buforem w celu usunięcia niezwiązanych przeciwciał.

Inkubować z przeciwciałami drugorzędowymi sprzężonymi z fluoroforem skierowanymi przeciwko przeciwciałom pierwszorzędowym i neurotoksyną sprzężoną z fluoroforem, która wiąże się z postsynaptycznymi receptorami acetylocholiny.

Przemyć buforem w celu usunięcia niezwiązanych odczynników.

Umieść włókna na szkiełku z nośnikiem montażowym, umieść szkiełko nakrywkowe i zabezpiecz magnesami cylindrycznymi, aby spłaszczyć włókna.

Rozpocznij obrazowanie za pomocą mikroskopu konfokalnego STED.

Po naświetleniu laserowym znakowane białka fluoryzują.

Mikroskopia konfokalna nie jest w stanie wyraźnie rozpoznać drobniejszych struktur NMJ ze względu na ograniczoną rozdzielczość i rozprzestrzenianie się fluorescencji.

W przeciwieństwie do tego, mikroskopia STED wykorzystuje laser zubożający do tłumienia rozprzestrzeniania się fluorescencji, umożliwiając wyraźną wizualizację NMJ.

Po eutanazji zacznij drażnić mięśnie piszczelowe przednie w małych wiązkach włókien o szerokości około 1 milimetra za pomocą dwóch drobno ząbkowanych kleszczy. Następnie przenieś te wiązki mięśni na 24-dołkową płytkę zawierającą 1% Triton X-100 przygotowany w PBS i pozwól mu delikatnie mieszać przez godzinę w temperaturze pokojowej lub pięć godzin w temperaturze 4 stopni Celsjusza.

Po trzykrotnym umyciu próbek przez 5 minut PBS w temperaturze pokojowej, należy inkubować próbki z roztworem blokującym składającym się z 4% BSA przygotowanym w PBS z 1% Triton X-100 przez cztery godziny w temperaturze 4 stopni Celsjusza pod delikatnym mieszaniem. Następnie inkubować próbki przez noc z tym samym roztworem blokującym zawierającym pierwszorzędowe przeciwciała monoklonalne przeciwko neurofilamentowi M lub glikoproteinie pęcherzyków synaptycznych 2 w celu znakowania presynaptycznych końców aksonów lub stref aktywnych.

Następnego dnia umyj oznaczone wiązki mięśni trzy razy przez 5 minut PBS pod delikatnym pomieszaniem. Następnie inkubuj je z odpowiednimi przeciwciałami drugorzędowymi, umieszczając je na wytrząsarce na dwie godziny w temperaturze pokojowej. Po ponownym umyciu wiązek mięśniowych umieść je na szkiełku z podłożem montażowym. Następnie umieść na wierzchu szkiełko nakrywkowe ze szkła o stopniu 1,5 stopnia, a następnie cylindryczne magnesy po obu stronach szkiełka, aby wywrzeć nacisk i spłaszczyć mięśnie.

Aby uzyskać obrazy za pomocą mikroskopu konfokalnego, uruchom oprogramowanie mikroskopu i wybierz Maszyna jako tryb konfiguracji, a następnie zbierz stosy obrazów połączeń nerwowo-mięśniowych w każdej grupie eksperymentalnej zgodnie z ustawieniami wymienionymi w rękopisie tekstowym. Pod koniec sesji kliknij Otwórz w przeglądarce 3D i wybierz połączenie nerwowo-mięśniowe reprezentatywne dla grupy eksperymentalnej, aby zwizualizować etykietowanie 3D.

10:40

Pomiar funkcjonalności połączenia nerwowo-mięśniowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:41

Rozwarstwienie pojedynczych włókien mięśni szkieletowych do analiz immunofluorescencyjnych i morfometrycznych połączeń nerwowo-mięśniowych w całości

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:42

Wizualizacja cech morfologicznych połączenia nerwowo-mięśniowego w mięśniu brzuchatym łydki przyśrodkowym szczura

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:05

Disekcja i obrazowanie stref aktywnych w połączeniu nerwowo-mięśniowym Drosophila

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:09

Podskórne podawanie antagonistów muskarynowych oraz potrójne barwienie immunocytochemiczne mięśnia dźwigacza małżowiny usznej u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:12

Sekwencyjne fotoblaknięcie w celu wyznaczenia pojedynczych komórek Schwanna w złączu neuromięśniowym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:12

Rozwarstwienie mięśnia poprzecznego brzucha w celu analizy całego połączenia nerwowo-mięśniowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:18

Połączenie nerwowo-mięśniowe: pomiar wielkości synaps, fragmentacji i zmian gęstości białek synaptycznych za pomocą konfokalnej mikroskopii fluorescencyjnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

14:02

Obrazowanie superrozdzielcze w celu zbadania kolokalizacji białek i markerów synaptycznych w neuronach pierwotnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:03

Charakterystyka połączeń nerwowo-mięśniowych u myszy za pomocą połączonej mikroskopii konfokalnej i superrozdzielczej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026