Name: Funkcjonalne obrazowanie brunatnej tkanki tłuszczowej u myszy za pomocą 18F-FDG micro-PET/CT (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-11-23T12:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 53 s
Description: Poznaj nieinwazyjną metodę obrazowania brunatnej tkanki tłuszczowej u myszy za pomocą mikro-PET/CT z użyciem 18F-FDG. Technika ta pozwala mierzyć aktywność metaboliczną w odpowiedzi na stymulację zimnem.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Autorzy pragną podziękować Laurze Diaz, Kevinowi Phillipsowi, Willi A. Hsueh oraz Kingowi C. Li za pomocne uwagi i wsparcie techniczne przy opracowywaniu tej metody.

1. Przygotowanie zwierząt i traktowanie zimnem
<ol>
 <li>Zlokalizuj i sprawdź chłodnię o temperaturze 4 °C, która została zatwierdzona do przetrzymywania myszy laboratoryjnych.</li>
 <li>Wychłodź klatki dla zwierząt przez noc w chłodni. Klatki należy złożyć bez paszy i ściółki, ale z butelką wody.</li>
 <li>W dniu eksperymentu rano umieszczaj myszy pojedynczo w każdej z wcześniej wychłodzonych klatek w odstępach 30 min. Każda mysz w osobnej klatce powinna pozostać w chłodni przez prawie 4 hr przed transportem do laboratorium obrazowania. Upewnij się, że myszy są na czczo, ale mają dostęp do wody.</li>
 <li>Po 4 hr od zabiegu chłodzenia transportuj po jednym zwierzęciu co 30 min do laboratorium obrazowania. Można to osiągnąć, wypełniając pojemnik styropianowy lodem i kładąc wcześniej wychłodzoną klatkę na lodzie wewnątrz pudełka. Przykryj luźno pudełko styropianowe.</li>
</ol>
2. Konfiguracja procesu obrazowania Micro-PET/CT
W niniejszym protokole obrazowanie micro-PET/CT jest realizowane przy użyciu systemu Siemens Inveon Dedicated PET (dPET) oraz systemu Inveon Multimodality (MM) (CT/SPECT) w trybie dokowania. Zwierzę jest wprowadzane przez wejście systemu MM, najpierw skanowane w tomografii komputerowej (CT) w celu uzyskania punktów odniesienia anatomicznych, a następnie przesuwane do centrum dPET w celu statycznego obrazowania F18 PET. Aby umożliwić komputerowi sterującemu automatyczne wykonywanie tych sekwencyjnych zadań, przed właściwą sesją obrazowania w oprogramowaniu Inveon Acquisition Workplace (IAW) programuje się następujący „przepływ pracy” (workflow).
<ol>
 <li>Akwizycja CT: W przypadku pełnoobszarowego skanowania CT ustaw prąd na 500 uA, napięcie na 80kV, czas ekspozycji na 200 msec oraz 240 kroków dla obrotu o 240°. Dla detektora promieni rentgenowskich wybierz rozdzielczość „low system magnification” z osiowym polem obrazowania 78 mm i trybem pojedynczego stołu. Wybierz „real time reconstruction”, stosując metodę „Common Cone-Beam Reconstruction”, aby komputer host komunikował się z dedykowanym komputerem do rekonstrukcji w czasie rzeczywistym (Cobra) w celu zainicjowania zadania.</li>
 <li>Akwizycja emisji PET: W opcji „acquire by time” ustaw „fixed scan time” na 600 sec (10 min). Jako „study isotope” wybierz F-18 i ustaw „energy level” w zakresie 350-650 keV.</li>
 <li>Histogram emisji PET: Ustaw „dynamic frame” na „black”, aby przetwarzać dane jako jedną klatkę przez cały czas trwania w celu uzyskania skanu statycznego. Jako typ histogramu wybierz „3D” i zaznacz opcję „no scatter correction”.</li>
 <li>Rekonstrukcja PET: Jako algorytm rekonstrukcji zastosuj dwuwymiarową metodę Ordered Subset Expectation Maximization (OSEM2D).</li>
</ol>
3. Wstrzyknięcie FDG
<ol>
 <li>Zamów kliniczny pakiet 18F-FDG (10 mCi) od regionalnego dostawcy tak, aby dotarł do laboratorium obrazowania ok. 30 min przed planowaną pierwszą iniekcją. Postępuj zgodnie z procedurami bezpieczeństwa instytutu podczas odbierania i monitorowania przesyłki zawierającej materiały radioaktywne (RAM).</li>
 <li>Stosując osłonę blatu typu L-block, odmierz odpowiednią ilość FDG i przygotuj rozcieńczenia w sterylnej soli fizjologicznej. Rozcieńczone stężenie aktywności FDG dla każdej iniekcji powinno wynosić 200-300 μCi/100 ul. Pobierz roztwór FDG do strzykawki 1 ml z igłą 26G 1/2 cala i zmierz radioaktywność całej zawartości strzykawki za pomocą kalibratora dawek.</li>
 <li>Zwierzę, które zostało właśnie przetransportowane z chłodni (patrz Krok 1.4), poddaj iniekcji 100 μl roztworu FDG drogą doszprytnową (i.p.). Zapisz czas iniekcji. Ponownie zmierz radioaktywność pozostałą w strzykawce za pomocą kalibratora dawek.</li>
 <li>Umieść zwierzę z powrotem w zimnej klatce wewnątrz styropianowej lodówki z lodem. Inkubuj zwierzę w niskiej temperaturze (~ 4 °C) przez 1 hr w celu wychwytu FDG.</li>
 <li>Oblicz podaną aktywność FDG dla każdej myszy według następującego wzoru: Podana aktywność (μCi) = aktywność w strzykawce przed iniekcją - aktywność w strzykawce po iniekcji</li>
</ol>
4.	Obrazowanie Micro-PET/CT
<ol>
 <li>Obrazowanie micro-PET/CT rozpoczyna się 1 hr po wstrzyknięciu FDG lub 5 hr po zabiegu krioterapii. Umieść zwierzę w komorze indukcyjnej do znieczulenia z 3% izofluranem w tlenie.</li>
 <li>Po wprowadzeniu w stan znieczulenia zwierzę przenosi się na podkładkę micro-CT (łoże dla zwierząt), z głową spoczywającą w stożkowej masce twarzowej, która nieprzerwanie podaje izofluran (2%) z przepływem 2 L/min. Pod zwierzęciem umieszcza się elektryczną matę grzewczą (BioVet, m2m Imaging Corp.), aby pomóc w utrzymaniu temperatury ciała.</li>
 <li>Wsuń zwierzę do otworu skanera MM, aktywuj ikonę „laser” na pasku narzędzi i za pomocą touchpada przesuń łoże tak, aby klatka piersiowa zwierzęcia znajdowała się na przecięciu poziomych i pionowych linii laserowych. W oknie „Laser Align” wybierz jako „first scan type” skan CT oraz opcję „PET acquisition included in workflow”.</li>
 <li>Otwórz okno „Scout View” i wykonaj przeglądową radiografię rentgenowską (scout view). Użyj oprogramowania IAW, aby dostosować pozycję łoża zwierzęcia tak, aby centralne pole widzenia CT znajdowało się w centrum ciała myszy (wątroba). W razie potrzeby powtórz ten krok.</li>
 <li>Uruchom „workflow” ustanowiony w kroku 2. Gdy pojawią się opcje, wybierz odpowiedni plik macierzy transformacji 3D PET-CT do wykorzystania w rekonstrukcji CT oraz wybierz niedawno utworzony plik normalizacji dla rekonstrukcji PET bez korekcji atenuacji. IAW rozpocznie następnie sekwencyjne skanowanie CT i PET zgodnie z programem.</li>
 <li>Po zakończeniu całego procesu, co może zająć 20-25 min, krótko oceń jakość pozyskanych obrazów CT i PET za pomocą ASIPro VM, oprogramowania do analizy micro-PET zainstalowanego razem z IAW. Zarchiwizuj dane obrazowe na urządzeniu do przechowywania danych lub prześlij je przez sieć na stację roboczą do analizy poobrazowej (patrz krok 5) w celu dalszej analizy.</li>
 <li>Wyjmij zwierzę z systemów obrazowania i umieść je w czystej klatce z normalnym dostępem do pokarmu i wody w celu rekonwalescencji w temperaturze pokojowej. Systemy są teraz gotowe dla kolejnego zwierzęcia w kolejce. Należy pamiętać, że opieka i obchodzenie się ze zwierzętami po obrazowaniu powinny być zgodne z regulaminem instytutu dotyczącym „obsługi zwierząt laboratoryjnych wstrzykniętych materiałami promieniotwórczymi (RAM)”. Należy również zwrócić uwagę, że zużyte igły/strzykawki, podkłady chłonne, rękawiczki oraz cała ściółka i odchody powinny być traktowane jako odpady promieniotwórcze i utylizowane zgodnie z odpowiednimi przepisami instytutu dotyczącymi utylizacji odpadów RAM.</li>
</ol>
5. Analiza po obrazowaniu
<ol>
 <li>Otwórz oprogramowanie Inveon Research Workplace (IRW) (Siemens) i ręcznie zaimportuj zestawy danych CT oraz PET. Współrejestruj obrazy CT i PET w oknie „Registration”, korzystając z narzędzi z funkcją „General analysis”, a następnie w oknie „Review” upewnij się, że obrazy CT i PET są idealnie dopasowane we wszystkich trzech wymiarach.</li>
 <li>W oknie „Region of Interest (ROI) Quantification”, opierając się na referencjach z współrejestrowanych obrazów CT, zidentyfikuj BAT w obszarze międzyłopatkowym szyi (najbardziej dominująca indukowana zimnem tkanka BAT u dorosłych myszy) i wyznacz objętość zainteresowania (VOI) dla BAT na zestawie danych PET. Jako „Quantification Type” wybierz „Voxel Intensity” i zapisz średnią radioaktywność wewnątrz VOI w jednostkach Bq/ml. Współczynnik kalibracji przeliczający zliczenia na sekundę na Bq/ml został wcześniej ustalony poprzez skanowanie fantoma o znanej radioaktywności.</li>
 <li>Wychwyt FDG w BAT określa się jako procent podanej dawki na gram tkanki (%ID/g) z korekcją na rozpad. Podana dawka jest wynikiem kroku 3.5, jednak przeliczona na jednostkę becquerela (Bq) (1 μCi = 37,000 Bq); przyjmujemy, że 1 ml tkanki odpowiada 1 g.</li>
</ol>

<ol><li>Cypess, A. M., Kahn, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+and+importance+of+brown+adipose+tissue+in+energy+homeostasis%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Pediatr%22%5BJournal%5D)">The role and importance of brown adipose tissue in energy homeostasis.</a> Curr. Opin. Pediatr. 22, 478-484 (2010).</li>
<li>Cannon, B., Nedergaard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brown+adipose+tissue%3A+function+and+physiological+significance%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Brown adipose tissue: function and physiological significance.</a> Physiol. Rev. 84, 277-359 (2004).</li>
<li>Collins, S., Surwit, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+beta-adrenergic+receptors+and+the+control+of+adipose+tissue+metabolism+and+thermogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Recent+Prog.+Horm.+Res%22%5BJournal%5D)">The beta-adrenergic receptors and the control of adipose tissue metabolism and thermogenesis.</a> Recent Prog. Horm. Res. 56, 309-328 (2001).</li>
<li>Ouellet, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Outdoor+temperature%2C+age%2C+sex%2C+body+mass+index%2C+and+diabetic+status+determine+the+prevalence%2C+mass%2C+and+glucose-uptake+activity+of+18F-FDG-detected+BAT+in+humans%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Endocrinol.+Metab%22%5BJournal%5D)">Outdoor temperature, age, sex, body mass index, and diabetic status determine the prevalence, mass, and glucose-uptake activity of 18F-FDG-detected BAT in humans.</a> J. Clin. Endocrinol. Metab. 96, 1115-1125 (2011).</li>
<li>Cypess, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+importance+of+brown+adipose+tissue+in+adult+humans%5BTitle%5D)+AND+%22N.+Engl.+J.+Med%22%5BJournal%5D)">Identification and importance of brown adipose tissue in adult humans.</a> N. Engl. J. Med. 360, 1509-1517 (2009).</li>
<li>Fruhbeck, G., Becerril, S., Sainz, N., Garrastachu, P., Garcia-Velloso, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BAT%3A+a+new+target+for+human+obesity%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Pharmacol.+Sci%22%5BJournal%5D)">BAT: a new target for human obesity.</a> Trends Pharmacol. Sci. 30, 387-396 (2009).</li>
<li>Cypess, A. M., Kahn, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brown+fat+as+a+therapy+for+obesity+and+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Endocrinol.+Diabetes+Obes%22%5BJournal%5D)">Brown fat as a therapy for obesity and diabetes.</a> Curr. Opin. Endocrinol. Diabetes Obes. 17, 143-149 (2010).</li>
<li>Virtanen, K. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+brown+adipose+tissue+in+healthy+adults%5BTitle%5D)+AND+%22N.+Engl.+J.+Med%22%5BJournal%5D)">Functional brown adipose tissue in healthy adults.</a> N. Engl. J. Med. 360, 1518-1525 (2009).</li>
<li>van Marken Lichtenbelt, W. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cold-activated+brown+adipose+tissue+in+healthy+men%5BTitle%5D)+AND+%22N.+Engl.+J.+Med%22%5BJournal%5D)">Cold-activated brown adipose tissue in healthy men.</a> N. Engl. J. Med. 360, 1500-1508 (2009).</li>
<li>Cohade, C., Mourtzikos, K. A., Wahl, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((%22USA-Fat%22%3A+prevalence+is+related+to+ambient+outdoor+temperature-evaluation+with+18F-FDG+PET%2FCT%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Nucl.+Med%22%5BJournal%5D)">"USA-Fat": prevalence is related to ambient outdoor temperature-evaluation with 18F-FDG PET/CT.</a> J. Nucl. Med. 44, 1267-1270 (2003).</li>
<li>Garcia, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reduction+of+brown+fat+2-deoxy-2-%5BF-18%5Dfluoro-D-glucose+uptake+by+controlling+environmental+temperature+prior+to+positron+emission+tomography+scan%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Imaging+Biol%22%5BJournal%5D)">Reduction of brown fat 2-deoxy-2-[F-18]fluoro-D-glucose uptake by controlling environmental temperature prior to positron emission tomography scan.</a> Mol. Imaging Biol. 8, 24-29 (2006).</li>
<li>Saito, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+incidence+of+metabolically+active+brown+adipose+tissue+in+healthy+adult+humans%3A+effects+of+cold+exposure+and+adiposity%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">High incidence of metabolically active brown adipose tissue in healthy adult humans: effects of cold exposure and adiposity.</a> Diabetes. 58, 1526-1531 (2009).</li>
<li>Agrawal, A., Nair, N., Baghel, N. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+approach+for+reduction+of+brown+fat+uptake+on+FDG+PET%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Radiol%22%5BJournal%5D)">A novel approach for reduction of brown fat uptake on FDG PET.</a> Br. J. Radiol. 82, 626-631 (2009).</li>
<li>Soderlund, V., Larsson, S. A., Jacobsson, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reduction+of+FDG+uptake+in+brown+adipose+tissue+in+clinical+patients+by+a+single+dose+of+propranolol%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Nucl.+Med.+Mol.+Imaging%22%5BJournal%5D)">Reduction of FDG uptake in brown adipose tissue in clinical patients by a single dose of propranolol.</a> Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 34, 1018-1022 (2007).</li>
<li>Zhao, J., Cannon, B., Nedergaard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thermogenesis+is+beta3-+but+not+beta1-adrenergically+mediated+in+rat+brown+fat+cells%2C+even+after+cold+acclimation%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Thermogenesis is beta3- but not beta1-adrenergically mediated in rat brown fat cells, even after cold acclimation.</a> Am. J. Physiol. 275, 2002-2011 (1998).</li>
<li>Rowland, D. J., Garbow, J. R., Laforest, R., Snyder, A. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Registration+of+%5B18F%5DFDG+microPET+and+small-animal+MRI%5BTitle%5D)+AND+%22Nucl.+Med.+Biol%22%5BJournal%5D)">Registration of [18F]FDG microPET and small-animal MRI.</a> Nucl. Med. Biol. 32, 567-5672 (2005).</li>
</ol>

Nie zgłoszono żadnych konfliktów interesów.

W niniejszym badaniu opracowano metodę obrazowania opartą na mikro-PET/CT do wykrywania aktywności BAT u dorosłych myszy, która wymaga jedynie ekspozycji na zimno oraz jednego wstrzyknięcia komercyjnie dostępnego 18F-FDG. Cała procedura może zostać przeprowadzona w jeden dzień, stosując sekwencję traktowania i obrazowania rozpoczynaną co 30 minut, aż do momentu opracowania i obrazowania wszystkich zwierząt. W opisanych warunkach eksperymentalnych, przy użyciu jednego systemu obrazowania, tego samego dnia można...

<table><tbody><tr><td>System obrazowania Micro-PET/CT</td><td>Siemens Medical Solutions USA, Inc.</td><td>Dedykowany system PET Inveon oraz multimodalny system CT/SPECT Inveon (podłączone)</td><td></td></tr><tr><td>Propranolol</td><td>Sigma</td><td>P0884</td><td></td></tr><tr><td>BRL 37344</td><td>Sigma</td><td>B169</td><td></td></tr><tr><td>&lt;sup&gt;18&lt;/sup&gt;F-FDG</td><td>Cyclotope Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Samce myszy szczepu C57BL/6J</td><td>Jackson Laboratory</td><td>000664</td><td>wiek 3-4 miesiące</td></tr></tbody></table>

obrazowanie funkcjonalne brunatnej tkanki tłuszczowej u myszy z wykorzystaniem micro-pet/ct z 18f-fdg

Functional Imaging of Brown Fat in Mice with 18F-FDG micro-PET/CT

Brunatna tkanka tłuszczowa (BAT) różni się od białej tkanki tłuszczowej (WAT) swoistą lokalizacją oraz brązowo-czerwoną barwą, wynikającą z bogatego unaczynienia i wysokiej gęstości mitochondriów. BAT odgrywa kluczową rolę w wydatkowaniu energii i termogenezie bezdrżeniowej u noworodków ssaków, jak i u osobników dorosłych 1. Termogeneza zapośredniczona przez BAT jest ściśle regulowana przez układ współczulny, głównie poprzez receptor β-adrenergiczny 2, 3. Niedawne badania wykazały, że aktywność BAT u dorosłych ludzi jest ujemnie skorelowana z indeksem masy ciała (BMI) oraz innymi parametrami cukrzycowymi 4-6. Zaproponowano zatem BAT jako potencjalny cel terapii przeciwotyżeniowych i przeciwcukrzycowych, koncentrujących się na modulacji bilansu energetycznego 6-8. Choć opracowano kilka metod pozytonowej tomografii emisyjnej (PET) opartych na ekspozycji na zimno w celu wykrywania BAT u ludzi 9-13, w zasadzie nie istnieje ustandaryzowany protokół obrazowania i ilościowej oceny BAT w modelach małych zwierząt, takich jak myszy. W niniejszej pracy opisujemy solidną metodę obrazowania PET/CT do funkcjonalnej oceny BAT u myszy. W skrócie, dorosłe myszy C57BL/6J były poddawane działaniu zimna w warunkach na czczo przez 4 godziny, po czym otrzymały jedną dawkę 18F-fluorodeoksyglukozy (FDG). Myszy pozostawały w zimnie przez dodatkową godzinę po wstrzyknięciu FDG, a następnie były skanowane za pomocą systemu mikro-PET/CT dedykowanego małym zwierzętom. Pozyskane obrazy PET zostały zarejestrowane wspólnie z obrazami CT w celu odniesienia anatomicznego, a następnie przeanalizowano wychwyt FDG w obszarze międzyłopatkowym BAT, aby przedstawić aktywność BAT. Ten ustandaryzowany protokół ekspozycji na zimno i obrazowania został zwalidowany poprzez badanie aktywności BAT podczas interwencji farmakologicznych, na przykład poprzez supresję aktywacji BAT po podaniu propranololu, antagonisty receptora β-adrenergicznego 14, 15, lub wzmocnienie aktywacji BAT przez agonistę β3, BRL37344 16. Opisana tutaj metoda może być stosowana do przesiewania leków/związków modulujących aktywność BAT lub do identyfikacji genów/szlaków zaangażowanych w rozwój i regulację BAT w różnych badaniach przedklinicznych i podstawowych.

Przykład obrazowania micro-PET/CT tkanki tłuszczowej brunatnej (BAT) myszy przedstawiono na Rysunku 1. Podczas gdy obrazowanie CT dostarcza informacji anatomicznych, obrazowanie PET koduje rozkład i ilość wychwytu 18F-FDG w całym organizmie. Dane obrazowe te można przeglądać oddzielnie (Rysunek 1A i 1B), w formie fuzji (Rysunek 1C) lub zaprezentować za pomocą funkcji 3D, takiej jak maksymalna projekcja intensywności (MIP, 1D). Za pomocą narzędzia do obrazowani...

Opisano metodę obrazowania funkcjonalnego brunatnej tkanki tłuszczowej (BAT) u myszy, w której pobór 18F-fluorodeoksygukozy (FDG) przez BAT stymulowany zimnem jest oceniany nieinwazyjnie przy użyciu standaryzowanego protokołu micro-PET/CT. Metoda ta jest wiarygodna i czuła w wykrywaniu różnic w aktywności BAT w modelach mysich.

Obrazowanie funkcjonalne brunatnej tkanki tłuszczowej u myszy z wykorzystaniem micro-PET/CT z 18F-FDG

Tkanka tłuszczowa brunatna (BAT) różni się od tkanki tłuszczowej białej (WAT) specyficzną lokalizacją oraz brązowo-czerwoną barwą, wynikającą z bogatego unaczynienia i wysokiego...

Ogólnym celem niniejszej procedury jest nieinwazyjny pomiar aktywności brunatnej tkanki tłuszczowej u żywych myszy przy użyciu znormalizowanego protokołu mikro PET CT. Osiąga się to poprzez uprzednie poddanie zwierzęcia działaniu niskiej temperatury (4 °C) przez cztery godziny w celu indukcji aktywności brunatnej tkanki tłuszczowej. Następnie wstrzykuje się fluor fluor-18 FTG, a zwierzę inkubuje się w temperaturze 4 °C przez kolejną jedną godzinę, aby umożliwić wychwyt znacznika.Następnie, przy użyciu systemu obrazowania dedykowanego dla małych zwierząt, wykonuje się sekwencję obrazowania mikro CT i mikro PET. Na koniec, przy użyciu oprogramowania do post-processingu obrazów, nabyte obrazy PET są korejestrowane z obrazami CT, a następnie analizowane pod kątem wychwytu FDG w obszarze międzyłopatkowym w celu oceny aktywności tkanki brunatnej. Tkanka tłuszczowa brunatna odgrywa kluczową rolę w wydatkowaniu energii i termogenezie u ssaków, zarówno u osobników młodych, jak i dorosłych.Chociaż w badaniach klinicznych wykorzystywano obrazowanie do wykrywania indukowanego kodowaniem BAT u ludzi, niniejszy film prezentuje zestandaryzowany protokół obrazowania i kwantyfikacji BAT u małych zw

functional-imaging-of-brown-fat-in-mice-with-18f-fdg-micro-petct

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Obrazowanie funkcjonalne tkanki brązowej u myszy z mikro-PET/TK z użyciem 18F-FDG

Ten artykuł opisuje multimodalność obrazowania tkanek nowotworowych za pomocą diagnostyki PET i CT przy użyciu radioznacznika 18F-FDG. Tkanka nowotworowa o wysokiej aktywności glikolitycznej wychwytuje więcej 18F-FDG.

Skan PET/CT oparty na FDG: metoda wykorzystania radioznacznika do nieinwazyjnego obrazowania metabolizmu guza

W tym raporcie wideo pokazujemy zastosowanie obrazowania luminescencyjnego Cerenkov (CLI) do międzyłopatkowej brązowej tkanki tłuszczowej u myszy w warunkach aktywowanych i depresyjnych.

Obrazowanie luminescencyjne Carenkowa brązowej tkanki tłuszczowej między łopatkami

Przedstawiona tutaj metoda wykorzystuje 18pozytonowej tomografii emisyjnej/tomografii komputerowej (PET-CT) F-Fluorodeoxyglucose (18F-FDG) oraz rezonansu magnetycznego (MRI) oddzielonego tłuszczem i wodą, z których każdy jest skanowany po 2 godzinach ekspozycji na warunki termoneutralne (24 °C) i zimne (17 °C) w celu zmapowania brązowej tkanki tłuszczowej (BAT) u dorosłych ludzi.

Ludzkie brązowe magazyny tkanki tłuszczowej automatycznie segmentowane za pomocą pozytonowej tomografii emisyjnej/tomografii komputerowej i zarejestrowanych obrazów rezonansu magnetycznego

To badanie opisuje protokół, który wykorzystuje obrazowanie 18F-FDG i pozytonowej tomografii emisyjnej/tomografii komputerowej (PET/CT), wraz z modelowaniem kinetycznym, do ilościowego określenia in vivo, w czasie rzeczywistym wychwytu 18F-FDG do tkanek.

Określanie kinetyki metabolizmu glukozy za pomocą 18F-FDG Micro-PET/CT

Korzystając z darmowego, otwartego oprogramowania, opracowaliśmy analityczne podejście do ilościowego określania całkowitej i regionalnej objętości brunatnej tkanki tłuszczowej (BAT) oraz aktywności metabolicznej BAT przy użyciu 18F-FDG PET/CT.

Kwantyfikacja całego ciała i regionu aktywnej ludzkiej brunatnej tkanki tłuszczowej przy użyciu 18F-FDG PET/CT

Funkcjonalne obrazowanie i ilościowe określanie termogenicznych magazynów tłuszczu u myszy przy użyciu podejścia opartego na obrazowaniu mikro-PET/MR.

Wizualizacja i kwantyfikacja brązowych i beżowych tkanek tłuszczowych u myszy za pomocą obrazowania [18F]FDG Micro-PET/MR

Tutaj prezentujemy eksperymentalny protokół obrazowania do ilościowego oznaczania funkcji i morfologii serca za pomocą pozytonowej tomografii emisyjnej/tomografii komputerowej o wysokiej rozdzielczości dla małych zwierząt. Pod uwagę brane są zarówno myszy, jak i szczury, omawiając różne wymagania dotyczące środków kontrastowych w tomografii komputerowej dla tych dwóch gatunków.

Pozytonowa tomografia emisyjna serca o wysokiej rozdzielczości/tomografia komputerowa dla małych zwierząt

Tutaj prezentujemy protokół pomiaru aktywności brunatnej tkanki tłuszczowej po posiłku u ludzi i zwierząt laboratoryjnych.

Termografia w podczerwieni do wykrywania zmian w aktywności brunatnej tkanki tłuszczowej

Światło / ciemność testu transformacji jest jednym z najczęściej stosowanych testów do pomiaru lęku zachowań w myszy. Poniżej prezentujemy film, który pokazuje szczegółowe procedury, w jaki sposób przeprowadzenia testu.

Światło / ciemność test przejścia dla Myszy

W celu oceny nowych terapii komórkami macierzystymi istotne jest nieinwazyjne śledzenie wstrzykniętych komórek in vivo. W tym filmie dowiedzą się Państwo, jak znakować ludzkie mezenchymalne i embrionalne komórki macierzyste za pomocą środków kontrastowych opartych na tlenku żelaza w celu późniejszego obrazowania MR in vivo.

Znakowanie hESC i hMSC nanocząsteczkami tlenku żelaza w celu nieinwazyjnego śledzenia in vivo za pomocą obrazowania MR

Poznaj nieinwazyjną metodę obrazowania brunatnej tkanki tłuszczowej u myszy za pomocą mikro-PET/CT z użyciem 18F-FDG. Technika ta pozwala mierzyć aktywność metaboliczną w odpowiedzi na stymulację zimnem.

Obrazowanie funkcjonalne brunatnej tkanki tłuszczowej u myszy z wykorzystaniem micro-PET/CT z ¹⁸F-FDG

Przeglądaj więcej filmów