Name: Test wysiłkowy serca indukowany przez dobutaminę i monitorowany przez cewnikowanie serca u myszy (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-02-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 15 min 45 s
Description: Poznaj protokół testu wysiłkowego serca indukowanego dobutaminą i monitorowanego przez cewnikowanie u myszy. Ta metoda pozwala wykryć subkliniczną chorobę serca u myszy z otyłością wywołaną dietą wysokotłuszczową.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Dziękujemy dr Helio Salgado, Renacie Lataro i Mauro de Oliveira, School of Medicine of Ribeirão Preto, University of Sao Paulo oraz dr Benowi Janssenowi, Cardiovascular Research Institute Maastricht, Maastricht University, za hojną pomoc podczas procesu konfiguracji.
Ta praca była wspierana przez grant FONDECYT nr 11090114 dla S.D.C.

Protokół został zatwierdzony przez Komisję Etyki Facultad de Medicina Clinica Alemana-Universidad del Desarrollo.
I. Przygotowanie naparu z dobutaminy
<ol>
 <li>Rozpuścić 10 mg dobutaminy w 20 ml sterylnej wody destylowanej, w celu otrzymania roztworu podstawowego 500 μg/ml dobutaminy. Podwielokrotność porcji i przechowywać w temperaturze -20 °C. To rozwiązanie może być używane przez co najmniej 3 miesiące. </li>
 <li>Rozmrozić podwielokrotność roztworu podstawowego dobutaminy w temperaturze pokojowej. </li>
 <li>Rozcieńczyć roztwór podstawowy dobutaminy w sterylnym 0,9% NaCl, w celu otrzymania roztworu roboczego dobutaminy, którego stężenie oblicza się za pomocą wzoru: dobutamina (μg/ml) = masa ciała x 0,2. </li>
 <li>Napełnij strzykawkę o pojemności 1 ml 29Gx1/2" roztworem roboczym dobutaminy. </li>
 <li>Wprowadzić igłę strzykawki do rurki PE-10 o średnicy 20 cm. </li>
 <li>Wyregulować strzykawkę w pompie infuzyjnej zgodnie z instrukcjami producenta. </li>
 <li>Ustaw napar rampowy w formacie krok po kroku ze wzrostem o 10 μl/min na każdy krok, dla 6 kroków. </li>
</ol>
II. Przygotowanie czujnika ciśnienia
<ol>
 <li>Aby zminimalizować dryft sygnału, zanurz czujnik ciśnienia w sterylnej wodzie o temperaturze 37 °C na co najmniej 15 minut. Nie zanurzaj cewnika na głębokość większą niż 0.5 cm, aby zapobiec wpływowi ciśnienia hydrostatycznego na czujnik ciśnienia. </li>
 <li>Elektronicznie skalibruj czujnik ciśnienia przy 25 i 100 mmHg. Wejście elektryczne (Volt) jest przekształcane na sygnał ciśnienia (mmHg). </li>
 <li>Ustaw częstotliwość próbkowania na 2 k/s i użyj dolnoprzepustowego filtra z odcięciem przy 100 Hz. Ustaw sygnał ciśnienia na zero mmHg. </li>
 <li>Zaznacz cewnik w odległości 15 mm od końcówki. Odległość do dotarcia do serca od punktu wprowadzenia oszacowano za pomocą echokardiografii, wykrywając obecność cewnika w lewej komorze. </li>
</ol>
III. Przygotowanie myszy do cewnikowania
<ol>
 <li>Waga C57BL/6 samców myszy, 30-32 tygodnie. </li>
 <li>Wstrzyknąć dootrzewnowo 60 μg/kg ketaminy i 4 μg/kg ksylazyny1.
 Uwaga: Można zastosować inne środki znieczulające, na przykład: 350 - 450 μg/kg avertyny, 50 μg/kg pentobarbitalu lub 1,5 - 2% izofluranu2-3. </li>
 <li>Ogol szyję elektryczną maszynką do golenia.</li>
 <li>Umieść znieczuloną mysz w pozycji leżącej na ogrzanej izotermicznej płycie grzewczej. Zabezpiecz jego kończyny taśmą papierową.</li>
 <li>Wykonaj uszczypnięcie palca u nogi, aby potwierdzić całkowitą sedację. </li>
 <li>Delikatnie włóż sondę doodbytniczą, aby monitorować temperaturę ciała. Zaleca się stosowanie sondy wazelinizowanej. </li>
 <li>Jeśli temperatura ciała waha się od 37 °C ± 0.5 °C, wyreguluj ją za pomocą płyty grzewczej. </li>
 <li>Umieść pysk myszy w pobliżu źródła tlenu.</li>
 <li>Umieść obszar szyi myszy pod mikroskopem stereoskopowym. </li>
</ol>
IV. Akwizycja danych
<ol>
 <li>W oprogramowaniu LabChartPro 7 wybierz jeden kanał do rejestracji ciśnienia i jeden kanał do rejestracji tętna (HR). W przypadku tych ostatnich wybierz opcję "Pomiary cykliczne" i ustaw pomiar jako stawkę. </li>
 <li>Dla kanału ciśnieniowego ustaw zakres skali: od 0 do 150 mmHg.</li>
 <li>Dla kanału tętna ustaw zakres skali: od 200 do 600 uderzeń na minutę. </li>
 <li>Naciśnij Start, aby rozpocząć rejestrację. </li>
 <li>Wstaw uwagi wskazujące na wykonane zabiegi, na przykład: podanie znieczulenia, rozpoczęcie infuzji dobutaminy, stężenie dobutaminy, zmiany w oddychaniu. </li>
</ol>
V. Cewnikowanie serca4,5
<ol>
 <li>Wykonaj małe nacięcie po prawej stronie w pobliżu szczęki. Nożyczkami oddziel tkankę łączną skórno-mięśniową. </li>
 <li>Wykonaj rozwarstwienie podłużne (1,5 - 2 cm) po prawej stronie tchawicy. Oddziel tkankę łączną, tłuszcz i mięśnie za pomocą zakrzywionych kleszczy, aby odsłonić prawą tętnicę szyjną w pobliżu tchawicy. </li>
 <li>Umieść ekspander po prawej stronie zwierzęcia, aby odsłonić tętnicę szyjną. Pulsacyjne ciśnienie generowane przez serce ułatwia identyfikację tętnicy. Żyła szyjna, która jest ciemnoczerwona, znajduje się po prawej stronie. </li>
 <li>Oddziel tętnicę od sąsiednich tkanek za pomocą zakrzywionych kleszczy. Nerw błędny, który przypomina białą nić, leży wzdłuż tętnicy. </li>
 <li>Wytnij 20 cm kawałek jedwabnej nici 6/0 i "podwój" go.</li>
 <li>Przełóż "podwójną" nić pod tętnicą od lewej do prawej. Odetnij nić, aby uzyskać oddzielne końce.</li>
 <li>Przełóż trzecią nić (10 cm) poniżej tętnicy.</li>
 <li> Zawiąż ciasny węzeł w nici umieszczonej blisko głowy, a luźny w bardziej dystalnej nici. </li>
 <li>Zawiąż luźny węzeł w środkowej nici i przymocuj prawy koniec środkowej nici do poduszki grzewczej za pomocą taśmy papierowej. </li>
 <li>Utrzymuj wilgotną tętnicę szyjną, upuszczając sterylne 0,9% NaCl. Osusz nadmiar płynu patyczkami kosmetycznymi.</li>
 <li>Rozciągnij dolną nić za pomocą zacisku hemostatu. </li>
 <li>Ustal pozycję nożyczek hemostatu, ściskając skórę brzucha, rozciągając górną nić, aby zablokować przepływ krwi. Sprawdź, czy tkanka łączna wokół tętnicy została usunięta. Tętnica powinna być pełna krwi i pozbawiona pulsu. Zapobiegaj wytwarzaniu przez gwinty siły momentu obrotowego na tętnicy. </li>
 <li>Wykonaj nacięcie przekroju poprzecznego w pobliżu dna tętnicy za pomocą mikronożyczek Vannas. Krople krwi zostaną rozlane.</li>
 <li>Wprowadzić cewnik do tętnicy szyjnej. Pamiętaj, aby przedstawić cały czujnik ciśnienia. Sprawdź, czy nie ma utraty krwi. </li>
 <li>Delikatnie wyreguluj środkowy węzeł nici, aby utrzymać cewnik na miejscu. Nie ściskaj zbyt mocno, czujnik ciśnienia jest bardzo delikatny. </li>
 <li>Uwolnij nożyczki hemostatu z brzucha zwierzęcia. </li>
 <li>Przytrzymaj cewnik ręką i naciśnij środkową nić, aby uniknąć utraty krwi. Uwaga: tętnica powinna być pełna krwi. </li>
 <li>Rozpocznij rejestrowanie sygnałów ciśnienia. </li>
 <li>Gdy cewnik znajduje się w środku, sygnał ciśnienia tętniczego waha się od 60-70 do 100-120 mmHg. Kształt sygnału ciśnienia pokazano na rysunku 1.A. Uwaga: jeśli jesteś zainteresowany, w tym punkcie czasowym możesz zarejestrować ciśnienie tętnicze, jeśli sygnał jest stabilny przez co najmniej 5 minut. Wartości HR uzyskano z przebiegów ciśnienia z uwzględnieniem interwału 30 sekund nagrywania sygnału. Możliwe jest również zastosowanie metody EKG do bezpośredniego pomiaru tętna, zgodnie z celami badania. </li>
 <li>Delikatnie popchnij cewnik do góry, aby zaobserwować zmianę kształtu sygnału ciśnienia (rysunek 1.B). Gdy cewnik znajdzie się w lewej komorze, sygnał ciśnienia waha się od 0 do 100-120 mmHg. Jeśli trudno jest przesunąć cewnik, ściśnij klatkę piersiową zwierzęcia dwoma palcami. </li>
 <li>Stale kontroluj częstość oddechów, temperaturę ciała, poziom znieczulenia i sygnał ciśnienia. Wszystkie z nich powinny pozostać stabilne. </li>
</ol>
VI. Napar z dobutaminy
<ol>
 <li>W przypadku kaniulacji żyły szyjnej należy pamiętać o odklejeniu tkanki tłuszczowej wokół żyły, aby zapobiec jej perforacji. Zabieg chirurgiczny niedrożności żył jest podobny do zabiegu pokazanego w przypadku tętnicy szyjnej.</li>
 <li>Wprowadzić rurkę PE-10 do żyły. Upewnij się, że przepływ krwi nie jest zablokowany, przesuwając tłok strzykawki do tyłu. </li>
 <li>Wlew dobutaminy zaczyna się od 10 μl/min, a kończy 60 μl/min. Na każdym etapie szybkość infuzji jest utrzymywana przez 2 minuty6. </li>
 <li>Po ostatniej dawce dobutaminy należy poddać zwierzę eutanazji za pomocą przedawkowania znieczulenia. </li>
</ol>
VII. Analiza danych 
<ol>
 <li>Do analizy danych wybierz sekcję zarejestrowanych danych, która Cię interesuje. Pamiętaj, aby wziąć pod uwagę przedział czasu, w którym sygnał ciśnienia jest stabilny. </li>
 <li>Wybierz ikonę Setup (Konfiguracja) w module Blood Pressure (Ciśnienie krwi). Wskaż wybrany typ sygnału ciśnienia.</li>
 <li>Oprogramowanie LabChartPro 7 automatycznie wyświetla średnie, maksymalne i minimalne wartości tętna, ciśnienia skurczowego (Pmax), ciśnienia rozkurczowego (Pmin), ciśnienia końcoworozkurczowego (EDP), maksymalnego rozwoju nadciśnienia (dP/dtmax) i maksymalnego rozwoju podciśnienia (dP/dtmin). Ponadto parametry serca mogą być przedstawione na śladzie ciśnienia. </li>
</ol>

<ol><li>Hart, C. Y., Burnett, J. C., Redfield, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+avertin+versus+xylazine-ketamine+anesthesia+on+cardiac+function+in+normal+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Heart+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Effects of avertin versus xylazine-ketamine anesthesia on cardiac function in normal mice.</a> Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 281, H1938-H1945 (2001).</li>
<li>Janssen, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+anesthetics+on+systemic+hemodynamics+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Heart+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Effects of anesthetics on systemic hemodynamics in mice.</a> Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 287, H1618-H1624 (2004).</li>
<li>Lorenz, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+practical+guide+to+evaluating+cardiovascular%2C+renal%2C+and+pulmonary+function+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Regul.+Integr.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">A practical guide to evaluating cardiovascular, renal, and pulmonary function in mice.</a> Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 282, R1565-R1582 (2002).</li>
<li>Lorenz, J. N., Robbins, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+intraventricular+pressure+and+cardiac+performance+in+the+intact+closed-chest+anesthetized+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Measurement of intraventricular pressure and cardiac performance in the intact closed-chest anesthetized mouse.</a> Am. J. Physiol. 272, H1137-H1146 (1997).</li>
<li>Nemoto, S., DeFreitas, G., Carabello, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+catheterization+technique+in+a+closed-chest+murine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Contemp.+Top.+Lab+Anim.+Sci%22%5BJournal%5D)">Cardiac catheterization technique in a closed-chest murine model.</a> Contemp. Top. Lab Anim. Sci. 42, 34-38 (2003).</li>
<li>Daniels, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+cardiac+functional+reserve+in+type+2+diabetic+db%2Fdb+mice+is+associated+with+metabolic%2C+but+not+structural%2C+remodelling%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiol.+%28Oxf%29%22%5BJournal%5D)">Impaired cardiac functional reserve in type 2 diabetic db/db mice is associated with metabolic, but not structural, remodelling.</a> Acta Physiol. (Oxf). 200, 11-22 (2010).</li>
<li>De Celle, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+structural+and+functional+consequences+of+cardiac+ischaemia-reperfusion+injury+in+vivo+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Long-term structural and functional consequences of cardiac ischaemia-reperfusion injury in vivo in mice.</a> Exp. Physiol. 89, 605-615 (2004).</li>
<li>Huntgeburth, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transforming+growth+factor+beta+oppositely+regulates+the+hypertrophic+and+contractile+response+to+beta-adrenergic+stimulation+in+the+heart%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Transforming growth factor beta oppositely regulates the hypertrophic and contractile response to beta-adrenergic stimulation in the heart.</a> PLoS One. 6, e26628(2011).</li>
<li>Reddy, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+function+in+young+and+old+Little+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gerontol.+A.+Biol.+Sci.+Med.+Sci%22%5BJournal%5D)">Cardiac function in young and old Little mice.</a> J. Gerontol. A. Biol. Sci. Med. Sci. 62, 1319-1325 (2007).</li>
<li>Christoffersen, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+lipid+accumulation+associated+with+diastolic+dysfunction+in+obese+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Cardiac lipid accumulation associated with diastolic dysfunction in obese mice.</a> Endocrinology. 144, 3483-3490 (2003).</li>
</ol>

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Test wysiłkowy serca wywołany dobutaminą i monitorowany za pomocą cewnikowania serca jest pracochłonny. Niemniej jednak, postępując zgodnie z opisanym tutaj protokołem i przy krótkim czasie treningu, możliwa jest ocena sześciu parametrów hemodynamicznych w jednym eksperymencie, który trwa około godziny.
Krytycznymi etapami przedstawionego tutaj protokołu są kaniulacje naczyń krwionośnych. Jeśli chodzi o kaniulację tętnicy szyjnej, wykonane nacięcie powinno być wystarczająco głębokie, aby przer...

<table><tbody><tr><td colspan="4">Reodczynniki</td></tr><tr><td>PE-50/10</td><td>Warner Instruments</td><td>64-0752</td><td></td></tr><tr><td>Nić jedwabna 6/0 HR17</td><td>Tagum</td><td>SN0713K</td><td></td></tr><tr><td>Xylacin 20 mg/ml</td><td>Laboratorio Centrovet Ketamina</td><td></td><td></td></tr><tr><td>100 mg/ml</td><td>Drag Pharma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chlorek sodu 0,9%</td><td>Lab Sanderson S.A.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chlorowodorek dobutaminy</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D0676</td><td></td></tr><tr><td>Strzykawka U-100 Insulina 29G x &frac12; "</td><td>Terumo Medical Co.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kleszcze do preparowania Micro 11,5 cm Style 7</td><td>Lawton Medizintechnik</td><td>09-0959</td><td></td></tr><tr><td>Graefe Kleszcze Cvd 0,7 mm 7 cm</td><td>Lawton Medizintechnik</td><td>62-0263</td><td></td></tr><tr><td>Zaciski Dieffenbach buldog Cl Str 38 mm </td><td>Lawton Medizintechnik</td><td>60-010</td><td></td></tr><tr><td>Nożyczki Vannas 8 cm Str Fh</td><td>Lawton Medizintechnik</td><td>63-1400</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Equipment</td></tr><tr><td>SPR-671 MiKro-Tip Cewnik ciśnieniowy</td><td>Instrumenty Millar</td><td>840-6719</td><td></td></tr><tr><td>PCU-2000 Jednostka kontroli ciśnienia</td><td>Instrumenty Millar</td><td>880-0129</td><td></td></tr><tr><td>PowerLab 4/30</td><td>ADinstruments Pty Ltd.</td><td>ML866</td><td></td></tr><tr><td>LabChartPro 7 </td><td>ADinstruments Sp. z o.o.</td><td>MLU260/7</td><td></td></tr><tr><td>Legato200 Pompa infuzyjna</td><td>KdScientific</td><td>KD-KDS210P</td><td></td></tr><tr><td>TCAT-2LV Regulator temperatury i izotermiczna płyta grzewcza</td><td>PhysiTemp instruments Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zaopatrzenie w tlen medyczny</td><td>Indura</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sonda doodbytnicza </td><td>ADinstruments Pty Ltd.</td><td></td><td></td>MLT1404</tr><tr><td>Mikroskop trójokularowy, oświetlacz osiowy</td><td>LW Scientific</td><td>Z2B-TRI-ETNE, ILP-1502-LTS1, ILP-1502-DGGF</td><td></td></tr></tbody></table>

test wysiłkowy serca indukowany przez dobutaminę i monitorowany przez cewnikowanie serca u myszy

Cardiac Stress Test Induced by Dobutamine and Monitored by Cardiac Catheterization in Mice

Dobutamina jest agonistą β-adrenergicznym o wyższym powinowactwie do receptora wyrażonego w sercu (β1) niż do receptorów wyrażonych w tętnicach (β2). Podawany ogólnoustrojowo zwiększa zapotrzebowanie na pracę serca. W ten sposób dobutamina demaskuje nieprawidłowy rytm lub obszary niedokrwienne potencjalnie zagrożone zawałem. 
Monitorowanie czynności serca podczas testu wysiłkowego serca może być przeprowadzone za pomocą ekokardografii lub cewnikowania serca. Ta ostatnia jest inwazyjną, ale dokładniejszą i bardziej pouczającą techniką niż pierwsza.
Test stresu serca wywołany dobutaminą i monitorowany przez cewnikowanie serca przeprowadzone w sposób opisany tutaj pozwala w jednym eksperymencie na pomiar następujących parametrów hemodynamicznych: tętno (HR), ciśnienie skurczowe, ciśnienie rozkurczowe, ciśnienie końcoworozkurczowe, maksymalny wzrost nadciśnienia (dP/dtmax) i maksymalny rozwój podciśnienia (dP/dtmin), w warunkach wyjściowych i przy rosnących dawkach dobutaminy.
Zgodnie z oczekiwaniami, u normalnych myszy zaobserwowaliśmy zależny od dawki dobutaminy wzrost HR, dP/dtmax i dP/dtmin. Co więcej, przy najwyższej badanej dawce (12 ng / g / min) dekompensacja serca u otyłych myszy wywołanych dietą wysokotłuszczową została zdemaskowana.

Sygnał ciśnienia tętniczego jest definiowany przez ciśnienie skurczowe i rozkurczowe. Gdy czujnik ciśnienia znajduje się w lewej komorze, kształt fali jej ciśnienia (LVP) charakteryzuje się spadkiem ciśnienia rozkurczowego do zera oraz pojawieniem się skurczu lewego przedsionka przed skurczem komory (Rycina 1). W warunkach bazowych u prawidłowych myszy znieczulonych ketaminą i ksylazyną odnotowano HR na poziomie 280 ± 24, Pmax 107 ± 8, Pmin 5 ± 1, EDP 14 ± 2, dP/dtmax 608...

Opisujemy protokół przeprowadzania testu wysiłkowego serca wywołanego przez dobutaminę i monitorowanego przez cewnikowanie serca u normalnych myszy. Pokazujemy również jego zastosowanie do demaskowania subklinicznej choroby serca u otyłych myszy wywołanych dietą wysokotłuszczową.

Test wysiłkowy serca indukowany przez dobutaminę i monitorowany przez cewnikowanie serca u myszy

Dobutamine is a &beta;-adrenergic agonist with an affinity higher for receptor expressed in the heart (&beta;1) than for receptors expressed in the ...

Test wysiłkowy serca indukowany przez dobutaminę i monitorowany przez cewnikowanie serca u myszy. W tym filmie przedstawimy krok po kroku opis testu wysiłkowego serca wywołanego przez dobutaminę i monitorowanego za pomocą cewnikowania serca wykonanego u normalnych myszy. Pokażemy również jego zastosowanie do demaskowania subklinicznej choroby serca u otyłych myszy wywołanych dietą wysokotłuszczową.Znieczuloną mysz umieszcza się na płytce regulowanej termicznie. Tlen podawany jest przez plastikową rurkę, a temperatura ciała jest monitorowana za pomocą sondy doodbytniczej do cewnikowania serca. W procedurze zamkniętej klatki piersiowej wykorzystuje się tętnicę szyjną, ponieważ dostęp przez czujnik ciśnienia w końcówce cewnika jest wystarczająco dobry, aby wejść do tętnicy w celu pomiaru ciśnienia tętniczego.Cewnik wprowadza się około 10 milimetrów. Przebieg ciśnienia tętniczego wygląda tak. Aby zmierzyć ciśnienie w komorze cewnik powinien podążać ścieżką prostoliniową ER i przechodzić przez zastawkę aortalną do komory komorowej.Fala ciśnienia zmienia się, gdy czujnik ciśnienia wchodzi do komory komorowej w celu podania dobutaminy. Do żyły szyjnej wprowadza się plastikową rurkę. Lek j

cardiac-stress-test-induced-dobutamine-monitored-cardiac

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Test wysiłkowy serca indukowany dobutaminą i monitorowany za pomocą cewnikowania serca u myszy

Ten artykuł opisuje pomiar funkcji lewej komory myszy za pomocą analizy ciśnienia/objętości przy różnych częstościach akcji serca.

Cewnikowanie serca u myszy w celu pomiaru zależności objętości ciśnienia: badanie efektu Bowditcha

Celem tego protokołu jest nieinwazyjna ocena zmian strukturalnych i funkcjonalnych w mysim modelu choroby serca powstałych w wyniku poprzecznego zwężenia aorty, przy użyciu echokardiografii w trybie B i M oraz obrazowania dopplerowskiego kolorem/falą tętna.

Ocena zmian morfologicznych i czynnościowych serca w mysim modelu poprzecznego zwężenia aorty za pomocą obrazowania echokardiograficznego

Ten protokół zawiera szczegółowy opis podejścia echokardiograficznego do kompleksowego fenotypowania funkcji serca i zastawki serca u myszy.

Podejścia echokardiograficzne i protokoły do kompleksowej charakterystyki fenotypowej choroby zastawkowej serca u myszy

Podczas operacji niedokrwienia mięśnia sercowego/reperfuzji u myszy, prawidłowe umieszczenie ligatury okluzyjnej jest zazwyczaj potwierdzane przez widoczną obserwację bladości mięśnia sercowego. W tym artykule metoda elektrokardiograficznego potwierdzania niedokrwienia i reperfuzji, w celu uzupełnienia obserwowanej bladości mięśnia sercowego, została zademonstrowana u samców myszy C57Bl / 6.

Potwierdzenie niedokrwienia mięśnia sercowego i uszkodzenia reperfuzyjnego u myszy za pomocą elektrokardiografii powierzchniowej

Ostry zawał mięśnia sercowego u myszy wywołuje ostre, ale nie do końca scharakteryzowane zmiany w funkcjonowaniu lewej komory (LV). Cewnikowanie lewej dawki u myszy poddawanych niedrożności tętnic wieńcowych służy jako nowatorska metoda oceny funkcji lewej komory w czasie rzeczywistym.

Analiza ciśnienia i objętości w czasie rzeczywistym ostrego zawału mięśnia sercowego u myszy

Tutaj opisujemy prostą i powtarzalną metodę, która może wywołać zawał mięśnia sercowego lub uszkodzenie niedokrwienno-reperfuzyjne mięśnia sercowego u myszy poprzez precyzyjne podwiązanie lewej przedniej zstępującej tętnicy wieńcowej za pomocą mikromanipulacji.

Indukcja zawału mięśnia sercowego i uszkodzenia niedokrwienno-reperfuzyjnego mięśnia sercowego u myszy

Elektrokardiogram (EKG) jest kluczową zmienną do zrozumienia elektrofizjologii serca. Ćwiczenia fizyczne mają korzystne działanie, ale mogą być również szkodliwe w kontekście chorób układu krążenia. Manuskrypt ten przedstawia metodę rejestrowania EKG w czasie rzeczywistym podczas ćwiczeń, która może służyć do zbadania jego wpływu na elektrofizjologię serca u myszy.

Monitorowanie elektrokardiogramu w czasie rzeczywistym podczas treningu na bieżni u myszy

Obecny protokół opisuje metody ekspresji transgenu w sercach szczurów i myszy poprzez bezpośrednie wstrzyknięcie wirusa do mięśnia sercowego pod kierunkiem echokardiografii. Wyjaśniono również metody oceny podatności serca na komorowe zaburzenia rytmu serca poprzez programowaną stymulację elektryczną izolowanych serc z perfuzją Langendorffa.

Ekspresja transgenu wirusa w sercach gryzoni i ocena ryzyka arytmii serca

Obecny protokół opisuje zmodyfikowany widok długiej osi przymostkowej dla szybkiej i precyzyjnej lokalizacji lewej przedniej tętnicy zstępującej. Podejście to zostało zaprojektowane tak, aby było prostsze i bardziej przyjazne dla użytkownika, a jednocześnie ułatwiało badanie dynamicznych zmian w rezerwie przepływu wieńcowego po niedokrwieniu mięśnia sercowego i reperfuzji u myszy.

Dynamiczne oceny rezerwy przepływu wieńcowego po reperfuzji niedokrwiennej mięśnia sercowego u myszy

Skuteczna izolacja żyły płucnej za pomocą kriobalonu zależy od całkowitej niedrożności żyły płucnej. Punkt okluzji można skutecznie przewidzieć poprzez bezpośrednią analizę przebiegu fali ciśnienia w żyle płucnej podczas napełniania balonu przy użyciu prostej i powtarzalnej techniki.

Bezpośrednie monitorowanie ciśnienia dokładnie przewiduje niedrożność żyły płucnej podczas ablacji kriobalonowej

Poznaj protokół testu wysiłkowego serca indukowanego dobutaminą i monitorowanego przez cewnikowanie u myszy. Ta metoda pozwala wykryć subkliniczną chorobę serca u myszy z otyłością wywołaną dietą wysokotłuszczową.

Test wysiłkowy serca indukowany przez dobutaminę i monitorowany przez cewnikowanie serca u myszy

Przeglądaj więcej filmów