Name: Uszkodzenie balonu naczyniowego i podanie śródświetlne w tętnicy szyjnej szczura (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-23T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 41 s
Description: Poznaj model uszkodzenia balonem tętnicy szyjnej szczura do badania hiperplazji neointymalnej i remodelowania naczyń. Ta metoda pozwala oceniać mechanizmy chorób sercowo-naczyniowych oraz testować nowe terapie in vivo.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Jesteśmy wdzięczni doktorowi Clowesowi za pierwsze opracowanie i opisanie tej metody. Jesteśmy również wdzięczni dr Tulisowi za jego szczegółowy protokół, który był fundamentalnie pomocny w naszej poprzedniej, obecnej i przyszłej pracy. Praca ta była wspierana przez granty R01HL097111 i R01HL123364 z NIH dla MT oraz przez grant American Heart Association 14GRNT18880008 dla MT.
Chcielibyśmy podziękować Rachel Newton za jej fachowe wsparcie techniczne i cenną pomoc podczas procesu filmowania.

UWAGA: Wykorzystanie zwierząt do następujących eksperymentów zostało zweryfikowane i zatwierdzone przez Instytucjonalny Komitet ds. Opieki nad Zwierzętami i Ich Wykorzystywania (IACUC).
1. Procedury przedoperacyjne
<ol style="margines po lewej: 40px;">
	<li>Wysterylizuj narzędzia chirurgiczne przed użyciem.
	<ol>
		<li>Wszystkie narzędzia chirurgiczne należy sterylizować w autoklawie 24 godziny lub krócej przed zabiegiem. Jeśli tego samego dnia przeprowadza się wiele operacji, należy wysterylizować narzędzia za pomocą suchego sterylizatora kulkowego między operacjami.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Przefiltruj i wysterylizuj roztwór soli fizjologicznej przed użyciem.</li>
	<li>Zważyć szczura i obliczyć dawkę leków znieczulających (ketamina 80 mg/kg i ksylazyna 7 mg/kg).</li>
	<li>Leki znieczulające należy podawać dootrzewnowo (i.p.).
	<ol>
		<li>Sprawdź adekwatność sedacji przez uszczypnięcie palca u nogi w ciągu 5-10 minut. Podać dodatkową małą dawkę leków (ketamina 7 mg/kg i ksylazyna 0,6 mg/kg), jeśli sedacja nie jest pełna.</li>
		<li>Upewnij się, że igła jest wystarczająco głęboka, aby dostarczyć leki dootrzewnowo, ponieważ niedostarczenie całego roztworu leku do jamy otrzewnej spowoduje nieodpowiednią sedację. 
		UWAGA: Owrzodzenia i wypadanie włosów na skórze w miejscu wstrzyknięcia będą widoczne kilka dni po zabiegu, z powodu niezamierzonego podskórnego (s.c.) wstrzyknięcia roztworu leku.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Wstrzyknąć podskórnie 3 ml sterylnego roztworu soli fizjologicznej (s.c.). Za pomocą sterylnego bawełnianego wacika nałóż niewielką ilość maści okulistycznej na oba oczy, aby zapobiec wysuszeniu rogówki.</li>
	<li>Przygotuj sprzęt grzewczy. Wstępnie podgrzej poduszki grzewcze w kuchence mikrofalowej lub łaźni wodnej.</li>
	<li>Połóż zwierzę na wznak na platformie chirurgicznej.
	<ol>
		<li>Usuń włosy w brzusznej okolicy szyi. Nałóż depilator za pomocą bawełnianego wacika, odczekaj 30 sekund i całkowicie zetrzyj gazą.</li>
		<li>Przetrzyj szyję peelingiem powidonowo-jodowym i 70% etanolem.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Załóż środki ochrony osobistej, w tym fartuch, osłonę włosów, maskę chirurgiczną i okulary. Na koniec załóż sterylne rękawice chirurgiczne przed przystąpieniem do pracy ze sterylnymi narzędziami chirurgicznymi i materiałami.</li>
	<li>Ułóż szczura sterylnym prześcieradłem chirurgicznym, pozostawiając odsłonięty tylko obszar szyi.</li>
</ol>
2. Zabiegi chirurgiczne
<ol style="margines po lewej: 40px;">
	<li>Podczas zabiegu chirurgicznego należy sprawdzać głębokość sedacji zwierzęcia poprzez uszczypnięcie palca u nogi co 15 minut. Jeśli zwierzę zareaguje na uszczypnięcie palca, dodaj dodatkową małą dawkę (10% dawki początkowej) ketaminy i ksylazyny.</li>
	<li>Wypreparuj lewą tętnicę szyjną wspólną (CCA)
	<ol>
		<li>Za pomocą skalpela wykonaj proste podłużne nacięcie na środku szyi. Przybliżona długość nacięcia skóry wynosi 1,5-2 cm, w celu wyizolowania 1,5-2 cm części tętnicy. Długość może się różnić w zależności od celu badania.</li>
		<li>Tępo wypreparuj tkankę łączną ze skóry. Trzymaj końcówki kleszczy w górze i upewnij się, że nie przekłuwasz skóry ani tkanki znajdującej się pod spodem.</li>
		<li>Wypreparuj warstwy mięśni wzdłuż lewej strony tchawicy.</li>
		<li>Otwierając warstwę mięśniową, wizualizuj lewe CCA z ściśle przyczepionym nerwem błędnym. Tępo wypreparuj wzdłuż lewej tętnicy szyjnej z najwyższą ostrożnością, aby oddzielić nerw błędny przy minimalnym rozciąganiu.</li>
		<li>Rozciąć CCA dystalnie aż do rozwidlenia. Ostrożnie wypreparuj rozwidlenie i dwie gałęzie - tętnicę szyjną wewnętrzną (ICA) i tętnicę szyjną zewnętrzną (ECA).</li>
		<li>Kontynuuj sekcję wokół CCA, aż około część 1,5-2 cm tętnicy zostanie odizolowana od otaczających tkanek.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Kontuzja balonu
	<ol>
		<li>Na stałe wykonać ligaturę na ECA w odległości około 5 mm od rozwidlenia. Trwale podwiązuje się gałąź potyliczna ECA, która jest zbliżona do rozwidlenia ECA i ICA. Również trwale podwiązują inne gałęzie, jeśli występują, znajdujące się między rozwidleniem a ligaturą ECA – na przykład gałąź tarczycy górnej. Szew używany do wszystkich ligatur to jedwab 4-0. Zatrzask na bliższym końcu CCA i dystalnym końcu ICA. 
		UWAGA: Teraz przepływ krwi został zatrzymany na stałe przez podwiązanie (w ECA) lub tymczasowo przez przycinanie (w CCA i ICA). Zawartość światła w obszarze bifurkacji została odizolowana od krążenia ogólnoustrojowego.</li>
		<li>Wykonaj nacięcie arteriotomii na ECA za pomocą małych mikro nożyczek. Upewnij się, że nacięcie znajduje się blisko dystalnego węzła szwu. Oczyść krew solą fizjologiczną i wacikami.</li>
		<li>Wprowadzić nienapompowany cewnik balonowy 2F do światła ECA. Przesunąć cewnik balonowy proksymalnie do światła CCA. Przesuwaj cewnik proksymalnie, aż jego końcówka dotrze do miejsca, w którym pozostaje klips.</li>
		<li>Podłącz urządzenie do pompowania balonów do żeńskiej blokady typu luer na 3-kierunkowym kurku i podłącz męską blokadę typu luer 3-kierunkowego kranu do cewnika balonowego.</li>
		<li>Powoli napompuj balon pod ciśnieniem około 1,5 atm, aby rozszerzyć tętnicę szyjną do 1,5-krotności średnicy.</li>
		<li>Delikatnie pociągnij balon obrotowo z powrotem do rozwidlenia.</li>
		<li>Opróżnij balon i przesuń go z powrotem do bliższego końca. Napompuj go ponownie i powtórz procedurę odciągania jeszcze dwa razy.</li>
		<li>Wyjmij cewnik balonowy ze światła tętnicy.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Doświetlne podawanie odczynników (np. siRNA, leków) 
	UWAGA: W tym przypadku użytym odczynnikiem był roztwór zawierający cząsteczki lentiwirusa kodujące albo shRNA ukierunkowane na cząsteczkę interakcji zrębowej 1 (STIM1), albo nieukierunkowaną kontrolę shRNA. STIM1 jest pojedynczym transbłonowym białkiem retikulum endoplazmatycznego (ER), które jest czujnikiem ER Ca2 + kontrolującym aktywację kanałów Ca2 + błony komórkowej i jest regulowane w górę podczas dedyferencjacji naczyń mięśni gładkich do proliferacyjnego fenotypumigracyjnego 12,30-33.
	<ol>
		<li>Podłączyć wewnątrznaczyniowy cewnik naigłowy do strzykawki (24 G, 1,6 cm). Odessać 30 μl roztworu odczynników do testowania. Wprowadzić cewnik do tego samego nacięcia w ECA.</li>
		<li>Wsuń końcówkę cewnika do CCA i zawiąż kawałek szwu pojedynczym węzłem na ECA, aby zamocować cewnik i tymczasowo zamknąć nacięcie.</li>
		<li>Wstrzyknąć roztwór odczynnika testowego do światła CCA. Roztwór należy przechowywać w świetle naczynia przez 30 minut. Utrzymuj odsłoniętą tkankę wilgotną solą fizjologiczną i przykryj ją kawałkiem mokrej gazy.</li>
		<li>Po inkubacji odessać pozostały roztwór. Poluzuj ten pojedynczy węzeł i wyjmij cewnik.</li>
		<li>Przywiąż ECA kawałkiem szwu proksymalnie do nacięcia arteriotomii. Spraw, aby węzeł był jak najbliżej rozwidlenia.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Zamknij ranę.
	<ol>
		<li>Ponieważ uraz balonu i wprowadzenie cewnika może spowodować wyciek lub przebicie naczynia krwionośnego, zdejmij zacisk z ICA i sprawdź, czy nie ma wycieku. Jeśli zaobserwuje się krwawienie, nałóż kawałek gazy i delikatnie dociśnij, aby zatrzymać krwawienie.</li>
		<li>Zdejmij drugi zacisk z CCA.</li>
		<li>Upewnij się, że nie ma śladów krwawienia, a następnie usuń wszystkie zaciski i inne narzędzia chirurgiczne. Odetnij nadmiar szwów.</li>
		<li>Zamknij ranę za pomocą szwów skórnych (4-0 jedwab). Wymaz ze wszystkich stron zamkniętej rany za pomocą Povidon-Jodine lub innego środka antyseptycznego/bakteriobójczego/wirusobójczego. Wstrzyknąć 3 ml jałowego roztworu soli fizjologicznej s.c.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. Zabiegi pooperacyjne
<ol style="margines po lewej: 40px;">
	<li>Trzymaj szczura na poduszce grzewczej po operacji. Należy podać szczurowi jedną dawkę 0,05 mg/kg buprenorfiny we wstrzyknięciu domięśniowym (i.m.). Podczas procedury rekonwalescencji należy utrzymywać wilgotność oczu i pyska zwierząt. Monitoruj zwierzę, dopóki się nie obudzi i nie zacznie poruszać.</li>
	<li>Umieść zwierzę w czystej klatce bez ściółki, aż w pełni wyzdrowieje. Po wyzdrowieniu zwierzę zostanie zwrócone do pomieszczenia dla zwierząt i umieszczone indywidualnie.</li>
</ol>

<ol><li>Landzberg, B. R., Frishman, W. H., Lerrick, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathophysiology+and+pharmacological+approaches+for+prevention+of+coronary+artery+restenosis+following+coronary+artery+balloon+angioplasty+and+related+procedures%5BTitle%5D)+AND+%22Progress+in+Cardiovascular+Diseases%22%5BJournal%5D)">Pathophysiology and pharmacological approaches for prevention of coronary artery restenosis following coronary artery balloon angioplasty and related procedures.</a> Progress in Cardiovascular Diseases. 39, 361-398 (1997).</li>
<li>Muller, D. W., Ellis, S. G., Topol, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+models+of+coronary+artery+restenosis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Coll.+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Experimental models of coronary artery restenosis.</a> J. Am. Coll. Cardiol. 19, 418-432 (1992).</li>
<li>Clowes, A. W., Reidy, M. A., Clowes, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kinetics+of+cellular+proliferation+after+arterial+injury.+I.+Smooth+muscle+growth+in+the+absence+of+endothelium%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Investigation%3A+A+Journal+of+Technical+Methods+and+Pathology%22%5BJournal%5D)">Kinetics of cellular proliferation after arterial injury. I. Smooth muscle growth in the absence of endothelium.</a> Laboratory Investigation: A Journal of Technical Methods and Pathology. 49, 327-333 (1983).</li>
<li>Clowes, A. W., Reidy, M. A., Clowes, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+stenosis+after+arterial+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Investigation%3A+A+Journal+of+Technical+Methods+and+Pathology%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of stenosis after arterial injury.</a> Laboratory Investigation: A Journal of Technical Methods and Pathology. 49, 208-215 (1983).</li>
<li>Clowes, A. W., Clowes, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kinetics+of+cellular+proliferation+after+arterial+injury.+IV.+Heparin+inhibits+rat+smooth+muscle+mitogenesis+and+migration%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Kinetics of cellular proliferation after arterial injury. IV. Heparin inhibits rat smooth muscle mitogenesis and migration.</a> Circulation Research. 58, 839-845 (1986).</li>
<li>Li, G., Chen, S. J., Oparil, S., Chen, Y. F., Thompson, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+in+vivo+evidence+demonstrating+neointimal+migration+of+adventitial+fibroblasts+after+balloon+injury+of+rat+carotid+arteries%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Direct in vivo evidence demonstrating neointimal migration of adventitial fibroblasts after balloon injury of rat carotid arteries.</a> Circulation. 101, 1362-1365 (2000).</li>
<li>Kiechl, S., Willeit, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+natural+course+of+atherosclerosis.+Part+II%3A+vascular+remodeling%5BTitle%5D)+AND+%22Bruneck+Study+Group.+Arteriosclerosis%2C+Thrombosis%2C+and+Vascular+Biology%22%5BJournal%5D)">The natural course of atherosclerosis. Part II: vascular remodeling.</a> Bruneck Study Group. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 19, 1491-1498 (1999).</li>
<li>Yamamoto, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Derivation+of+rat+embryonic+stem+cells+and+generation+of+protease-activated+receptor-2+knockout+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Transgenic+Research%22%5BJournal%5D)">Derivation of rat embryonic stem cells and generation of protease-activated receptor-2 knockout rats.</a> Transgenic Research. 21, 743-755 (2012).</li>
<li>Intengan, H. D., Schiffrin, E. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+remodeling+in+hypertension%3A+roles+of+apoptosis%2C+inflammation%2C+and+fibrosis%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertension%22%5BJournal%5D)">Vascular remodeling in hypertension: roles of apoptosis, inflammation, and fibrosis.</a> Hypertension. 38, 581-587 (2001).</li>
<li>Meng, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complex+hemodynamics+at+the+apex+of+an+arterial+bifurcation+induces+vascular+remodeling+resembling+cerebral+aneurysm+initiation%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Complex hemodynamics at the apex of an arterial bifurcation induces vascular remodeling resembling cerebral aneurysm initiation.</a> Stroke. 38, 1924-1931 (2007).</li>
<li>Sun, C. K., Shao, P. L., Wang, C. J., Yip, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Study+of+vascular+injuries+using+endothelial+denudation+model+and+the+therapeutic+application+of+shock+wave%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Rranslational+Research%22%5BJournal%5D)">Study of vascular injuries using endothelial denudation model and the therapeutic application of shock wave: a review.</a> American Journal of Rranslational Research. 3, 259-268 (2011).</li>
<li>Zhang, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orai1-mediated+I+%28CRAC%29+is+essential+for+neointima+formation+after+vascular+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Orai1-mediated I (CRAC) is essential for neointima formation after vascular injury.</a> Circulation Research. 109, 534-542 (2011).</li>
<li>Ollinger, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bilirubin%3A+a+natural+inhibitor+of+vascular+smooth+muscle+cell+proliferation%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Bilirubin: a natural inhibitor of vascular smooth muscle cell proliferation.</a> Circulation. 112, 1030-1039 (2005).</li>
<li>Levitzki, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PDGF+receptor+kinase+inhibitors+for+the+treatment+of+restenosis%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+Research%22%5BJournal%5D)">PDGF receptor kinase inhibitors for the treatment of restenosis.</a> Cardiovascular Research. 65, 581-586 (2005).</li>
<li>Asahara, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Local+delivery+of+vascular+endothelial+growth+factor+accelerates+reendothelialization+and+attenuates+intimal+hyperplasia+in+balloon-injured+rat+carotid+artery%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Local delivery of vascular endothelial growth factor accelerates reendothelialization and attenuates intimal hyperplasia in balloon-injured rat carotid artery.</a> Circulation. 91, 2793-2801 (1995).</li>
<li>Lee, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alpha-lipoic+acid+inhibits+fractalkine+expression+and+prevents+neointimal+hyperplasia+after+balloon+injury+in+rat+carotid+artery%5BTitle%5D)+AND+%22Atherosclerosis%22%5BJournal%5D)">Alpha-lipoic acid inhibits fractalkine expression and prevents neointimal hyperplasia after balloon injury in rat carotid artery.</a> Atherosclerosis. 189, 106-114 (2006).</li>
<li>Ji, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroRNA+expression+signature+and+antisense-mediated+depletion+reveal+an+essential+role+of+MicroRNA+in+vascular+neointimal+lesion+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">MicroRNA expression signature and antisense-mediated depletion reveal an essential role of MicroRNA in vascular neointimal lesion formation.</a> Circulation Research. 100, 1579-1588 (2007).</li>
<li>Merlet, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((miR-424%2F322+regulates+vascular+smooth+muscle+cell+phenotype+and+neointimal+formation+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+Research%22%5BJournal%5D)">miR-424/322 regulates vascular smooth muscle cell phenotype and neointimal formation in the rat.</a> Cardiovascular Research. 98, 458-468 (2013).</li>
<li>Huang, J., Niu, X. L., Pippen, A. M., Annex, B. H., Kontos, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adenovirus-mediated+intraarterial+delivery+of+PTEN+inhibits+neointimal+hyperplasia%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%2C+Thrombosis%2C+And+Vascular+Biology%22%5BJournal%5D)">Adenovirus-mediated intraarterial delivery of PTEN inhibits neointimal hyperplasia.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, And Vascular Biology. 25, 354-358 (2005).</li>
<li>Gonzalez-Cobos, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Store-independent+Orai1%2F3+channels+activated+by+intracrine+leukotriene+C4%3A+role+in+neointimal+hyperplasia%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Store-independent Orai1/3 channels activated by intracrine leukotriene C4: role in neointimal hyperplasia.</a> Circulation Research. 112, 1013-1025 (2013).</li>
<li>Guzman, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Local+intraluminal+infusion+of+biodegradable+polymeric+nanoparticles.+A+novel+approach+for+prolonged+drug+delivery+after+balloon+angioplasty%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Local intraluminal infusion of biodegradable polymeric nanoparticles. A novel approach for prolonged drug delivery after balloon angioplasty.</a> Circulation. 94, 1441-1448 (1996).</li>
<li>Lipke, E. A., West, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Localized+delivery+of+nitric+oxide+from+hydrogels+inhibits+neointima+formation+in+a+rat+carotid+balloon+injury+model%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">Localized delivery of nitric oxide from hydrogels inhibits neointima formation in a rat carotid balloon injury model.</a> Acta Biomaterialia. 1, 597-606 (2005).</li>
<li>Osterrieder, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+angiotensin+II+in+injury-induced+neointima+formation+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertension%22%5BJournal%5D)">Role of angiotensin II in injury-induced neointima formation in rats.</a> Hypertension. 18, II60-II64 (1991).</li>
<li>Powell, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibitors+of+angiotensin-converting+enzyme+prevent+myointimal+proliferation+after+vascular+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Inhibitors of angiotensin-converting enzyme prevent myointimal proliferation after vascular injury.</a> Science. 245, 186-188 (1989).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Does+the+new+angiotensin+converting+enzyme+inhibitor+cilazapril+prevent+restenosis+after+percutaneous+transluminal+coronary+angioplasty%3F+Results+of+the+MERCATOR+study%3A+a+multicenter%2C+randomized%2C+double-blind+placebo-controlled+trial.+Multicenter+European+Research+Trial+with+Cilazapril+after+Angioplasty+to+Prevent+Transluminal+Coronary+Obstruction+and+Restenosis+%28MERCATOR%29+Study+Group%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Does the new angiotensin converting enzyme inhibitor cilazapril prevent restenosis after percutaneous transluminal coronary angioplasty? Results of the MERCATOR study: a multicenter, randomized, double-blind placebo-controlled trial. Multicenter European Research Trial with Cilazapril after Angioplasty to Prevent Transluminal Coronary Obstruction and Restenosis (MERCATOR) Study Group.</a> Circulation. 86, 100-110 (1992).</li>
<li>Faxon, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+high+dose+angiotensin-converting+enzyme+inhibition+on+restenosis%3A+final+results+of+the+MARCATOR+Study%2C+a+multicenter%2C+double-blind%2C+placebo-controlled+trial+of+cilazapril%5BTitle%5D)+AND+%22The+Multicenter+American+Research+Trial+With+Cilazapril+After+Angioplasty+to+Prevent+Transluminal+Coronary+Obstruction+and+Restenosis+%28MARCATOR%29+Study+Group.+J+Am+Coll+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Effect of high dose angiotensin-converting enzyme inhibition on restenosis: final results of the MARCATOR Study, a multicenter, double-blind, placebo-controlled trial of cilazapril.</a> The Multicenter American Research Trial With Cilazapril After Angioplasty to Prevent Transluminal Coronary Obstruction and Restenosis (MARCATOR) Study Group. J Am Coll Cardiol. 25, 362-369 (1995).</li>
<li>Geurts, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Knockout+rats+via+embryo+microinjection+of+zinc-finger+nucleases%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Knockout rats via embryo microinjection of zinc-finger nucleases.</a> Science. 325, 433(2009).</li>
<li>Tesson, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Knockout+rats+generated+by+embryo+microinjection+of+TALENs%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Knockout rats generated by embryo microinjection of TALENs.</a> Nature Biotechnology. 29, 695-696 (2011).</li>
<li>Li, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heritable+gene+targeting+in+the+mouse+and+rat+using+a+CRISPR-Cas+system%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Heritable gene targeting in the mouse and rat using a CRISPR-Cas system.</a> Nature Biotechnology. 31, 681-683 (2013).</li>
<li>Potier, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evidence+for+STIM1-+and+Orai1-dependent+store-operated+calcium+influx+through+ICRAC+in+vascular+smooth+muscle+cells%3A+role+in+proliferation+and+migration%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+Journal+%3A+Official+Publication+Of+The+Federation+Of+American+Societies+For+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Evidence for STIM1- and Orai1-dependent store-operated calcium influx through ICRAC in vascular smooth muscle cells: role in proliferation and migration.</a> FASEB Journal : Official Publication Of The Federation Of American Societies For Experimental Biology. 23, 2425-2437 (2009).</li>
<li>Aubart, F. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+interference+targeting+STIM1+suppresses+vascular+smooth+muscle+cell+proliferation+and+neointima+formation+in+the+rat.+Molecular+Therapy%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+Of+The+American+Society+Of+Gene+Therapy%22%5BJournal%5D)">RNA interference targeting STIM1 suppresses vascular smooth muscle cell proliferation and neointima formation in the rat. Molecular Therapy.</a> The Journal Of The American Society Of Gene Therapy. 17, 455-462 (2009).</li>
<li>Berra-Romani, R., Mazzocco-Spezzia, A., Pulina, M. V., Golovina, V. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ca2%2B+handling+is+altered+when+arterial+myocytes+progress+from+a+contractile+to+a+proliferative+phenotype+in+culture.+American+journal+of+physiology%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Physiology%22%5BJournal%5D)">Ca2+ handling is altered when arterial myocytes progress from a contractile to a proliferative phenotype in culture. American journal of physiology.</a> Cell Physiology. 295, C779-C790 (2008).</li>
<li>Bisaillon, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Essential+role+for+STIM1%2FOrai1-mediated+calcium+influx+in+PDGF-induced+smooth+muscle+migration.+American+journal+of+physiology%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Physiology%22%5BJournal%5D)">Essential role for STIM1/Orai1-mediated calcium influx in PDGF-induced smooth muscle migration. American journal of physiology.</a> Cell Physiology. 298, C993-C1005 (2010).</li>
<li>Tulis, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+carotid+artery+balloon+injury+model%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+In+Molecular+Medicine%22%5BJournal%5D)">Rat carotid artery balloon injury model.</a> Methods In Molecular Medicine. 139, 1-30 (2007).</li>
<li>Zhang, W., Trebak, M. Balloon Injury in Rats as a Model for Studying TRP Channel Contribution to Vascular Smooth Muscle Remodeling. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aZhang%2C+W+%22T+TRP+Channels+in+Drug+DiscoveryMethods+in+Pharmacology+and+Toxicology%22">T TRP Channels in Drug DiscoveryMethods in Pharmacology and Toxicology</a>. Szallasi, A., Bíró, T. , Humana Press. 101-111 (2012).</li>
<li>Tulis, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histological+and+morphometric+analyses+for+rat+carotid+balloon+injury+model%29%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+In+Molecular+Medicine%22%5BJournal%5D)">Histological and morphometric analyses for rat carotid balloon injury model).</a> Methods In Molecular Medicine. 139, 31-66 (2007).</li>
<li>Advanced Sterilization Products. How to use Cidex OPA solution. , Available at: 
 <a target="_blank" href="http://www.hopkinsmedicine.org/hse/forms/cidexopa/OPAHowToUse.pdf">http://www.hopkinsmedicine.org/hse/forms/cidexopa/OPAHowToUse.pdf</a> (2014).</li>
</ol>

Autorzy oświadczają, że nie mają konkurencyjnych interesów finansowych.

Uraz balonika szyjnego szczura został dobrze opisany przez Tulisa w 2007 roku, 34. Wszystkie szczegóły tej procedury zostały kompleksowo omówione przez dr Tulisa. Czytelnikom, którzy są zainteresowani wykonaniem tej procedury, zdecydowanie zaleca się zapoznanie się z protokołem Tulisa. Jest jednak jedna rzecz, z którą się nie zgadzamy z dr Tulisem: zamiast napełniać balon solą fizjologiczną lub jakimkolwiek płynem, zasugerowaliśmy, aby napompować go powietrzem. Zgodnie z naszym osobistym doświadczeniem, pompowanie płynem z trudem ...

Cewniki balonowe są urządzeniami medycznymi używanymi w procedurze angioplastyki, w celu poszerzenia niedrożnego miejsca (miejsc) miażdżycy lub skrzepliny w naczyniu krwionośnym. Zwężone światło naczynia jest zmuszane do otwarcia się przez napompowany balon, a dopływ krwi zostanie przywrócony sekwencyjnie, aby złagodzić objawy niedokrwienia, takie jak dławica piersiowa, zawał mięśnia sercowego i ból nóg. Niemniej jednak wielki sukces angioplastyki został zniweczony przez powikłania pooperacyjne, takie jak wynik siły powodującej barotraumę naczyniową (uszkodzenie balonu), a mianowicie przebudowę ściany naczynia i w wielu przypadkach ponowne zwężenie światła naczynia (restenoza)1.
Opracowano wiele modeli zwierzęcych naśladujących procedurę angioplastyki, aby pomóc badaczom zrozumieć mechanizmy leżące u podstaw przebudowy ścian naczyń związanych z uszkodzeniem balonu2. Spośród wszystkich gatunków zwierząt wykorzystywanych do modelowania, szczur jest najczęściej wykorzystywany. W porównaniu z królikami, psami i świniami, zaletami szczurów są ich niski koszt, względna łatwość użycia i obecna wiedza na temat fizjologii szczurów. Chociaż myszy mają dodatkową przewagę w szerokim zakresie genetycznie modyfikowanych szczepów, naczynie myszy jest zbyt małe, aby wprowadzić cewnik balonowy. W ciągu ostatnich trzech dekad eksperymentalne badania na szczurach pozwoliły naukowcom lepiej zrozumieć mechanizmy molekularne i komórkowe leżące u podstaw powstawania neointima i przebudowy naczyń krwionośnych3-6. Oprócz uszkodzenia balonu, przebudowa naczyń krwionośnych jest również zaangażowana w większość głównych chorób naczyniowych, takich jak miażdżyca7,8, nadciśnienie9 i tętniak10. W związku z tym wiedza uzyskana dzięki modelowi uszkodzenia balonu jest ogólnie korzystna dla ogólnych badań nad chorobami ściany naczyniowej.
Ogólnym celem modelu uszkodzeń balonów szczurów jest nie tylko dalsze zrozumienie chorób naczyniowych, ale także przetestowanie siły działania nowych środków do kontroli chorób11,12. Obecne kliniczne leczenie farmakologiczne restenozy jest stosowane za pomocą stentów uwalniających lek umieszczanych przez światło naczynia zaraz po angioplastyce. W modelach zwierzęcych skutecznym, a jednocześnie bardziej ekonomicznym sposobem testowania nowych czynników jest dobrze opracowana metoda lokalnej perfuzji śródświetlnej. Czynniki kandydujące, które zostały przetestowane za pomocą tej metody, obejmują leki małocząsteczkowe13,14, cytokiny lub czynniki wzrostu15,16, środki manipulujące genami (klony cDNA, siRNA itp.)17-20 oraz nowe preparaty farmaceutyczne21,22.
Jak dotąd, model uszkodzenia balonu szczura pozostaje jednym z najbardziej użytecznych modeli do badania chorób/zaburzeń naczyniowych. Jest to podstawowy krok od łóżka do łóżka pacjenta, zwykle jako pierwszy krok przejścia od in vitro do in vivo, ale nie powinien być ostatnim. Wyniki eksperymentów na szczurach muszą zostać rozważone i dokładniej scharakteryzowane przed translacją do użytku klinicznego u ludzi, ze względu na różnice w łożyskach naczyniowych i anatomii naczyń, a także wewnętrzne różnice gatunkowe między człowiekiem a szczurem23-26. Niemniej jednak jest to nadal niezbędne narzędzie w translacyjnych badaniach medycznych. Podczas gdy takie badania były kiedyś ograniczone przez brak genetycznie modyfikowanych szczurów, nie stanowią już problemu, odkąd nowe podejścia genomiczne, takie jak nukleazy palców cynkowych27,TALEN-28 i CRISPR-Cas29, sprawiły, że szczury z nokautem stały się łatwo dostępne.

<table><tbody><tr><td>Cewniki do embolektomii balonowej Fogarty'ego, 2 francuskie&nbsp;</td><td>Edwards Lifesciences, Niemcy</td><td>&nbsp; 120602F Płytka</td><td></td></tr><tr><td>operacyjna Deltaphase - Zawiera 2 pady i 2 izolatory</td><td>Braintree Scientific, Inc.</td><td>Źródło światła LED 39OP</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Fisher Scientific</td><td>12-563-501&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Kleszczyki do komarów Hartmann 4" zakrzywiona</td><td>pasieka Medical, Inc. San Diego, CA</td><td>gS 22.1670</td><td></td></tr><tr><td>Zwijacz Crile 4" dwustronna</td><td>pasieka Medical, Inc.</td><td>gS 34.1934</td><td></td></tr><tr><td>Inne narzędzia chirurgiczne</td><td>Roboz Surgical Instrument Company, Inc., Gaithersburg, MD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dożylne obwodowe (IV) Kaniula, 24 G</td><td>BD</td><td>381312</td><td></td></tr><tr><td>Ketamina HCl, 100 mg/ml, 10 ml</td><td>Ketaset- Patterson Vet</td><td>07-803-6637&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Ksylazyna (AnaSed), 20 mg / ml, 20 ml</td><td>Ketaset- Patterson Vet</td><td>07-808-1947</td><td></td></tr><tr><td>Buprenex, 0,3 mg / 1 ml (5 ampułek / pudełko)</td> <td>Ketaset - Patterson Vet</td><td>07-850-2280</td><td></td></tr><tr><td>Balsam do depilacji olejkiem Nair - 9 uncji</td><td>Amazon/Walmart/CVS</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Urządzenie do pompowania</td><td>Demax Medical</td><td>DID30</td><td></td></tr><tr><td>D300 3-kierunkowy kran</td><td>B.Braun Medical Inc.</td><td></td><td></td>4599543</tr><tr><td>Maść na sztuczne łzy&nbsp;</td><td>Rugby Laboratories, Duluth, GA</td><td>N/A</td><td></td></tr></tbody></table>

uszkodzenie balonu naczyniowego i podanie śródświetlne w tętnicy szyjnej szczura

Vascular Balloon Injury and Intraluminal Administration in Rat Carotid Artery

Model uszkodzenia balonu tętnicy szyjnej u szczurów jest dobrze znany od ponad dwóch dekad. Pozostaje ważną metodą badania mechanizmów molekularnych i komórkowych zaangażowanych w dedyferencjację naczyń gładkich, tworzenie neointima i przebudowę naczyń. Samce szczurów Sprague-Dawley są najczęściej wykorzystywanymi zwierzętami w tym modelu. Samice szczurów nie są preferowane, ponieważ hormony żeńskie chronią przed chorobami naczyniowymi, a tym samym wprowadzają odmianę do tej procedury. Lewa tętnica szyjna jest zwykle uszkodzona, a prawa tętnica szyjna służy jako kontrola negatywna. Uraz lewej tętnicy szyjnej jest spowodowany przez napompowany balon, który obnaża śródbłoneki rozszerza ścianę naczynia. Po urazie można ocenić potencjalne strategie terapeutyczne, takie jak stosowanie związków farmakologicznych i transfer genów lub shRNA. Zazwyczaj w przypadku transferu genów lub shRNA, uszkodzona część światła naczynia jest lokalnie transdukowana przez 30 minut za pomocą cząsteczek wirusa kodujących białko lub shRNA w celu dostarczenia i ekspresji w uszkodzonej ścianie naczynia. Pogrubienie neointymalne reprezentujące proliferacyjne komórki mięśni gładkich naczyń krwionośnych zwykle osiąga szczyt po 2 tygodniach od urazu. W tym momencie naczynia są najczęściej pobierane w celu analizy komórkowej i molekularnej szlaków sygnalizacji komórkowej, a także ekspresji genów i białek. Naczynia mogą być również zbierane we wcześniejszych punktach czasowych w celu określenia początku ekspresji i/lub aktywacji określonego białka lub szlaku, w zależności od zamierzonych celów doświadczalnych. Naczynia można scharakteryzować i ocenić za pomocą barwienia histologicznego, immunohistochemii, testów białek/mRNA i testów aktywności. Nienaruszona prawa tętnica szyjna tego samego zwierzęcia jest idealną kontrolą wewnętrzną. Wywołane urazem zmiany parametrów molekularnych i komórkowych można ocenić, porównując uszkodzoną tętnicę z wewnętrzną prawą tętnicą kontrolną. Podobnie, metody terapeutyczne można ocenić, porównując uszkodzoną i leczoną tętnicę z kontrolną tylko uszkodzoną tętnicą.

Dwa tygodnie po urazie pobiera się tętnice szyjne, wykonuje ich przekroje i poddaje analizie morfologicznej. Tętnice są przecinane w poprzek i barwione H&amp;E (Ryciny 1, 2B, C oraz 3). Ściana tętnicy szyjnej szczura zawiera cztery warstwy błony sprężystej, które widoczne są jako różowe linie. Obszar między najbardziej zewnętrzną błoną, błoną sprężystą zewnętrzną (EEL), a najbardziej wewnętrzną błoną, błoną sprężystą wewnętrzną (IEL), stanowi warstwa mięśni gładkich błony środkowej (Rycina 1</str...

Ten protokół wykorzystuje cewnik balonowy do spowodowania uszkodzenia śródświetlnego tętnicy szyjnej szczura i wywołania przerostu neointimalu. Jest to dobrze ugruntowany model do badania mechanizmów przebudowy naczyń krwionośnych w odpowiedzi na uraz. Jest również szeroko stosowany do określania ważności potencjalnych podejść terapeutycznych.

Uszkodzenie balonu naczyniowego i podanie śródświetlne w tętnicy szyjnej szczura

The carotid artery balloon injury model in rats has been well established for over two decades. It remains an important method to study the molecular and ...

Ogólnym celem tej procedury jest zapewnienie platformy in vivo do badania molekularnych podstaw chorób naczyniowych u szczurów. Lewa tętnica szyjna jest odsłonięta i tymczasowo odcięta od krwiobiegu. Drugim krokiem jest wprowadzenie cewnika balonowego do światła i wykonanie urazu balonu.Następnie odczynnik testowy jest wprowadzany do światła uszkodzonego naczynia. Ostatnim krokiem jest podwiązanie tętnicy szyjnej zewnętrznej i przywrócenie przepływu krwi. Ostatecznie uszkodzona tętnica jest pobierana dwa tygodnie później i wykorzystywana do zbadania morfologicznych i komórkowych odpowiedzi na uraz oraz względnego działania badanego czynnika.Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania dotyczące molekularnych mechanizmów przebudowy mięśni gładkich, która zachodzi podczas chorób sercowo-naczyniowych, takich jak restenozy, miażdżyca i nadciśnienie. Ogólnie rzecz biorąc, osoby, które dopiero zaczynają korzystać z tej metody, będą miały trudności ze zlokalizowaniem blokującej tętnicy szyjnej. A przy wprowadzaniu cewnika balonowego do światła tętnicy, należy użyć sterylnej techniki.Wszystkie narzędzia chirurgiczne powinny być sterylizowane w autoklawie lub sterylizowane suchymi

vascular-balloon-injury-intraluminal-administration-rat-carotid

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Hiperplazja neointimy jest główną przyczyną zwężenia w żyłach arteryalizowanych. Proponujemy nowy protokół, w którym żyła zewnętrzna szyjna prawa jest przeszczepiana z wykorzystaniem techniki mankietowej do tętnicy szyjnej wspólnej u szczurów Sprague Dawley. Przeżywalność w momencie uśmiercenia zwierząt wynosiła 100 %.

Szkolenie z zaawansowanej techniki mikrosurgicalnej: Interpozycja przeszczepu z żyły szyjnej zewnętrznej w tętnicy szyjnej wspólnej u szczurów

W tym filmie pokazujemy zabieg chirurgiczny kaniulacji lewej tętnicy szyjnej na modelu szczurzym.

Kaniulacja tętnicy szyjnej w modelu szczurzym

Obustronna niedrożność tętnicy szyjnej w połączeniu z niedociśnieniem ogólnoustrojowym powoduje globalne niedokrwienie mózgu u szczura, powodując uszkodzenie hipokampa z powtarzalnym nasileniem. Zwierzęta są upośledzone z przewidywalnymi wzorcami uszkodzeń mózgu, szybko wracają do zdrowia, a wskaźniki śmiertelności są stosunkowo niskie.

Okluzja / niedociśnienie 2-naczyniowe: szczurzy model globalnego niedokrwienia mózgu

Te badania donoszą o odwracalnym przyczepianiu wektorów genów adenowirusa do bezpowłokowych metalowych powierzchni stentów i modelowych dysków siatkowych. Przedłużone uwalnianie cząstek wirusa kompetentnych do transdukcji, uzależnione od hydrolizy środków sieciujących stosowanych do immobilizacji wektorów, skutkuje trwałą, specyficzną dla miejsca ekspresją transgenu w komórkach naczyniowych i stentowanych tętnicach.

Naczyniowy transfer genów z metalowych powierzchni stentów przy użyciu wektorów adenowirusowych połączonych przez hydrolizowalne środki sieciujące

Opisany poniżej model uszkodzenia balonu szyjnego u szczura pozwala badaczom ocenić leki lub terapie, które negują przerost tętnic wywołany urazem. Opisano szczegółowe przygotowanie przedoperacyjne, zabieg chirurgiczny i opiekę pooperacyjną nad zwierzęciem.

Model uszkodzenia balonu szyjnego szczura do testowania terapii przeciwnaczyniowej

To badanie opisuje inwazyjną procedurę indukcji przyspieszonej miażdżycy u myszy. W porównaniu z innymi metodami wykorzystującymi urazy wywołane elektrycznością lub kriogenicznością, uraz wywołany mechanicznie naśladuje ludzki stan restenozy po terapiach rewaskularyzacyjnych i jest idealny do badania zaangażowanych mechanizmów molekularnych.

Indukcja przyspieszonej miażdżycy u myszy: model "urazu drutowego"

Zrozumienie komórkowych i molekularnych mechanizmów reendotelializacji po uszkodzeniu po denudacji tętnic ma ogromne znaczenie w zapobieganiu zakrzepicy i restenozie tętnic. W tym miejscu opisujemy protokół powtarzalnego uszkodzenia aorty brzusznej po obnażeniu tętnic. Procedura została opracowana w celu zbadania podstawowych mechanizmów regulujących regenerację śródbłonka przy użyciu modeli mysich.

Powtarzalne uszkodzenie denunacji tętnic przez podnerkowe zaciskanie aorty brzusznej w modelu mysim

To badanie demonstruje technikę tworzenia minimalnie inwazyjnego i łatwego do odtworzenia modelu niedokrwienia rdzenia kręgowego u szczurów. Różne stopnie deficytu motorycznego kończyn tylnych mogą być wytwarzane przez kontrolowanie czasu zgryzu aorty.

Powtarzalny deficyt motoryczny po niedrożności aorty w szczurzym modelu niedokrwienia rdzenia kręgowego

Ogólnym celem tej procedury jest dostarczenie wysoce powtarzalnej techniki oceny in vivo naruszenia bariery krew-mózg w szczurzych modelach udaru niedokrwiennego.

Ocena in vivo przerwania bariery krew-mózg w szczurzym modelu udaru niedokrwiennego

Uszkodzenie balonu tętnicy szyjnej szczura naśladuje zabieg angioplastyki klinicznej wykonywany w celu przywrócenia przepływu krwi w naczyniach miażdżycowych. Model ten indukuje reakcję na uszkodzenie tętnicy poprzez rozdęcie ściany tętnicy i obnażenie warstwy wewnętrznej komórek śródbłonka, ostatecznie powodując przebudowę i reakcję hiperplastyczną błony wewnętrznej.

Segmentowe uszkodzenie balonu tętnicy szyjnej szczura z kontrolowanym ciśnieniem z okołoprzybytkowym zastosowaniem terapeutycznym

Protokół przedstawia model gryzonia przeżywającego do testowania interwencji balonem venoplasty (VB) w żyłach głębokich niezakrzepowych, zakrzepowych i pozakrzepowych.

Model balonu do Vena Cava Vena Cava Gryzonia

Poznaj model uszkodzenia balonem tętnicy szyjnej szczura do badania hiperplazji neointymalnej i remodelowania naczyń. Ta metoda pozwala oceniać mechanizmy chorób sercowo-naczyniowych oraz testować nowe terapie in vivo.

Uszkodzenie balonu naczyniowego i podanie śródświetlne w tętnicy szyjnej szczura

Przeglądaj więcej filmów