-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Długotrwałe, ciągłe monitorowanie EEG w modelach chorób człowieka u małych gryzoni przy użyciu sy...
Długotrwałe, ciągłe monitorowanie EEG w modelach chorób człowieka u małych gryzoni przy użyciu sy...
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Long-term Continuous EEG Monitoring in Small Rodent Models of Human Disease Using the Epoch Wireless Transmitter System

Długotrwałe, ciągłe monitorowanie EEG w modelach chorób człowieka u małych gryzoni przy użyciu systemu nadajników bezprzewodowych Epoch

Full Text
26,197 Views
08:43 min
July 21, 2015

DOI: 10.3791/52554-v

Andrew Zayachkivsky1, Mark J. Lehmkuhle2, F. Edward Dudek2

1Department of Neurosurgery,Yale University School of Medicine, 2Department of Neurosurgery,University of Utah

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Tutaj demonstrujemy użycie bezprzewodowej technologii umożliwiającej elektroencefalogram (EEG) w modelach chorób ludzkich noworodków gryzoni. Dzięki telemetrii nie ma obciążających połączeń, co pozwala na naturalne zachowania.

Ogólnym celem tej procedury jest skuteczne wszczepienie epickiego nadajnika w celu rejestrowania wysokiej jakości EEG u gryzoni, takich jak szczury i myszy. Osiąga się to poprzez uprzednie odsłonięcie i osuszenie powierzchni czaszki. Drugim krokiem jest wywiercenie otworów w czaszce, w które można wprowadzić nadajnik, elektrody i wszelkie potrzebne kostne.

Następnie wprowadzane są kostne i wyrównywane są elektrody nadajnika. Ostatnim krokiem jest włożenie elektrod i przymocowanie nadajnika do czaszki za pomocą klejów akrylowych. Ostatecznie oprogramowanie do akwizycji wideo, filmów i przeglądania danych służy do monitorowania aktywności EEG 24 7 w celu uchwycenia wszystkich zdarzeń EEG, takich jak drgawki i skoki międzynapadowe.

Wizualna demonstracja tej metody ma kluczowe znaczenie, ponieważ etapy implantacji są trudne do nauczenia. Rozmiar czaszki gryzonia powoduje złożoną, ale możliwą do przeszkolenia procedurę chirurgiczną. Głównym celem tej prezentacji jest uproszczenie tej procedury implantacji i uczynienie jej łatwą do odtworzenia.

Po raz pierwszy wpadliśmy na pomysł tej metody, gdy mieliśmy trudności z wykonaniem długoterminowych zapisów elektrograficznych ze zwierzęcych modeli padaczki. Podczas napadów konwulsyjnych nagrania przewodowe są podatne na artefakty elektryczne i niepożądane obciążenie interfejsu czaszki z elektrodą. Przewodowe systemy nagrywania mogą zawieść, ponieważ zwierzę gryzie linkę i drapie implant.

Ten bezprzewodowy system rozwiązuje wszystkie te problemy, zapewniając jednocześnie do sześciu miesięcy ciągłych, nieprzerwanych zapisów EEG. Przygotowując się do zabiegu, należy w pełni wysterylizować nadajnik, namoczyć go w 70% etanolu, wypłukać w sterylnej soli fizjologicznej i zanurzyć w sterylnej soli fizjologicznej. Zostaw go tam, dopóki nie będzie potrzebny.

Ostatnim przygotowaniem jest upewnienie się, że wszystko w miejscu operacji jest wysterylizowane. Spryskaj i przetrzyj otoczenie i sprzęt 70% etanolem. Po znieczuleniu zwierzęcia należy potwierdzić brak reakcji na uszczypnięcie palca u nogi przed rozpoczęciem operacji, podczas gdy zwierzę jest znieczulone.

Rób to co 15 minut. Znieczulone zwierzę powinno być najpierw unieruchomione w pozycji w ramie stereotaktycznej. Używaj nauszników, ale nie zaciskaj ich zbyt mocno, ponieważ skóra młodych szczeniąt jest bardzo miękka.

Po zabezpieczeniu nałóż stożek nosowy, aby dostarczyć 3% fluoru iso. Aby zwierzę było ciepłe, trzymaj pod nim poduszkę grzewczą o temperaturze 37 stopni Celsjusza. Dla dorosłych zwierząt Nasmaruj również oczy.

Teraz wysterylizuj miejsce nacięcia Najpierw oczyść skórę głowy 70% etanolem, a następnie Betadine pocieraj skórę okrężnymi ruchami. Następnie udrapuj zwierzę. Zacznij od bardzo ostrożnego wykonania nacięcia na skórze głowy, nieco za uszami, wzdłuż linii środkowej.

Przedłuż nacięcie o około dwa centymetry. Młode szczenięta mają bardzo miękką czaszkę. Wykonaj również to nacięcie tylko jednym cięciem, aby szybciej się zagoiło.

W ten sposób odsłoń czaszkę. Następnie, za pomocą klipsów do tętniaka, chwyć czaszkę i odsłoń oraz osusz obszar, w którym zostanie przymocowany nadajnik. Należy pamiętać, że u młodych szczeniąt kości czaszki nie są zrośnięte.

Następnie osusz czaszkę, do której zostanie przymocowany nadajnik Aby uzyskać silne połączenie adhezyjne, użyj pisaka do elektrokoagulacji, aby zatrzymać krwawienie na czaszce. Teraz, korzystając z anatomicznych punktów orientacyjnych i atlasu mózgu, zidentyfikuj lokalizację czaszki, aby umieścić otwór na wiertło do nagrywania. Następnie za pomocą wiertła Dremel i wiertła utwórz dwa otwory w miejscu nagrywania o średnicy nie większej niż 300 mikronów.

Następnie nad móżdżkiem i za Lambdą umieść otwór na dziób. W przypadku elektrody referencyjnej sprawdź, czy przewody nadajnika są wyrównane z otworami wiertła. Jeśli nie, sprawdź dopasowanie nadajnika i delikatnie zegnij elektrody, aby zrównały się z otworami za pomocą kleszczyków z cienką końcówką.

Teraz przytnij je za pomocą nożyczek chirurgicznych do żądanej długości. Powinny one sięgać powyżej opony twardej w przypadku zapisów EEG lub przenikać w dół do określonych struktur mózgu. Teraz bez powlekania elektrody nałóż wystarczającą ilość cyjanoakrylanu na nadajnik, aby całkowicie go pokryć.

Tylko nie doklejaj kleju do elektrod. Jeśli nadajnik ma wykonywać nagrania powierzchniowe, opuść nadajnik do otworów i po prostu przytrzymaj go w miejscu przez około minutę, lekko naciskając. Jeśli nagranie ma być pobrane z głębokich struktur mózgu, zamontuj nadajnik na uchwycie kaniuli i umieść go na ramieniu stereotaktycznym.

Bardzo ważne jest, aby umieścić elektrody przetwornika w otworach wiertła bez zanieczyszczenia klejem. Zanieczyszczenie spowoduje pogorszenie sygnału. Następnie dodaj więcej żelu cyjanoakrylowego, aby wzmocnić mocowanie nadajnika.

Klej nakładać okrężnymi kółkami, pokrywając ścianki nadajnika. Upewnij się, że nie zakrywasz anteny. Następnie nałóż 100 mikrolitrów akceleratora chemicznego wokół podstawy nadajnika ze strzykawki.

Nie dopuść do kontaktu z otaczającymi tkankami. Aby usunąć przyspieszacz, dokładnie umyj obszar pół mililitra sterylnej soli fizjologicznej. Teraz zszyj skórę wokół nadajnika, nie zakrywając jej.

Górna część nadajnika powinna być uzewnętrzniona. Aby uzyskać dobrą transmisję sygnału, użyj nici Vicryl lub jedwabiu. Podczas pracy z delikatnymi szczeniętami skóra powinna być odpowiednio napięta wokół nadajnika i otaczającego go kleju.

Teraz przenieś zwierzę z ramy na ciepły koc W celu powrotu do zdrowia szczegóły opieki pooperacyjnej znajdują się w protokole tekstowym. Przenieś pojedyncze wszczepione zwierzę do komory nagraniowej. Tylko jedno wszczepione zwierzę może być monitorowane w tym samym czasie, ale inne nieimplantowane zwierzęta mogą być z nim.

Aby skonfigurować rejestrator, należy podłączyć zasilacz do bazy odbiornika. Następnie podłącz bazę do systemu akwizycji danych za pomocą BNC. Teraz umieść klatkę na podstawie odbiornika sygnału.

Lampka sygnalizacyjna powinna się zaświecić. Dane mogą być teraz rejestrowane. Najpierw podłącz bazę odbiornika do konwertera reklam i podłącz konwerter do komputera.

Korzystając z ustawień oprogramowania, ustaw częstotliwość próbkowania nagrania na 500 na sekundę. Nadajnik wysyła sygnały EEG o częstotliwości od 0,1 do 100 Hz z odchyleniem ośmiu decybeli na VE na każdym końcu Ustawienie odpowiedniej częstotliwości próbkowania, która jest wyższa niż nyquist, ma kluczowe znaczenie. Zalecamy 500 próbek na sekundę, podczas gdy zwierzęta są rejestrowane z zegarka pod kątem oznak stresu i odwodnienia.

Szczenięta nie powinny przebywać w komorze dłużej niż dwie godziny. Nadajnik został zaprojektowany z minimalnie szkodliwą obudową, a zapis o długiej żywotności baterii może być wykonywany nieprzerwanie przez sześć miesięcy, w zależności od pojemności baterii. Myszy w wieku 12 lat i starsze bardzo dobrze tolerowały nadajnik, podobnie jak szczury w wieku 6 lat.

Przyczepienie cyjanoakrylanu do czaszki nie utrudniało rozwoju, umożliwiając ciągłe gromadzenie danych przez cały okres rozwoju zwierzęcia do dorosłości Po opanowaniu tej techniki można wykonać w ciągu kilku minut, jeśli zostanie wykonana prawidłowo. Pamiętaj, że ważne jest, aby elektrody były wolne od zanieczyszczenia klejem Zgodnie z tą procedurą. Inne metody, takie jak ilościowa analiza wykrywania napadów, mogą być przeprowadzone w celu uzyskania odpowiedzi na dodatkowe pytania, takie jak czas, przebieg i nasilenie stanu padaczkowego.

Technika ta utoruje drogę naukowcom zajmującym się padaczką do badania napadów padaczkowych u noworodków i modeli udaru okołoporodowego u gryzoni.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Słowa kluczowe: ciągłe monitorowanie EEG modele małych gryzoni bezprzewodowy system nadajników Epoch zaburzenia neurologiczne padaczka napady padaczkowe badania przedkliniczne niedojrzałe gryzonie system telemetrii

Related Videos

Jednoczesna elektroencefalografia, pomiar stężenia mleczanu w czasie rzeczywistym i optogenetyczna manipulacja aktywnością neuronalną w korze mózgowej gryzoni

10:45

Jednoczesna elektroencefalografia, pomiar stężenia mleczanu w czasie rzeczywistym i optogenetyczna manipulacja aktywnością neuronalną w korze mózgowej gryzoni

Related Videos

20.7K Views

Długotrwały ciągły monitoring elektroencefalograficzny u młodego gryzonia

02:34

Długotrwały ciągły monitoring elektroencefalograficzny u młodego gryzonia

Related Videos

465 Views

Nieskrępowana radiotelemetria EEG: zewnątrzoponowe i głębokie śródmózgowe stereotaktyczne umieszczenie elektrod EEG

06:58

Nieskrępowana radiotelemetria EEG: zewnątrzoponowe i głębokie śródmózgowe stereotaktyczne umieszczenie elektrod EEG

Related Videos

19.9K Views

Akwizycja elektroencefalograficzna o dużej gęstości w modelu gryzoni przy użyciu tanich zasobów typu open source

12:39

Akwizycja elektroencefalograficzna o dużej gęstości w modelu gryzoni przy użyciu tanich zasobów typu open source

Related Videos

16.6K Views

Pilokarpinowy model padaczki skroniowej i monitorowanie EEG z wykorzystaniem systemu radiotelemetrycznego u myszy

10:08

Pilokarpinowy model padaczki skroniowej i monitorowanie EEG z wykorzystaniem systemu radiotelemetrycznego u myszy

Related Videos

20.7K Views

Jednoczesne monitorowanie wideo-EEG-EKG w celu identyfikacji dysfunkcji neurosercowej w mysich modelach padaczki

11:54

Jednoczesne monitorowanie wideo-EEG-EKG w celu identyfikacji dysfunkcji neurosercowej w mysich modelach padaczki

Related Videos

26.8K Views

Wykorzystanie bezprzewodowego systemu wideo-EEG do monitorowania wyładowań padaczkowych po bocznym urazowym uszkodzeniu mózgu wywołanym płynem

09:16

Wykorzystanie bezprzewodowego systemu wideo-EEG do monitorowania wyładowań padaczkowych po bocznym urazowym uszkodzeniu mózgu wywołanym płynem

Related Videos

26.3K Views

Analiza długoterminowych zapisów elektrokardiograficznych w celu wykrycia arytmii u myszy

06:07

Analiza długoterminowych zapisów elektrokardiograficznych w celu wykrycia arytmii u myszy

Related Videos

4.2K Views

Przenośny system pomiarowy elektromiograficzny dla małych zwierząt w czasie rzeczywistym

05:00

Przenośny system pomiarowy elektromiograficzny dla małych zwierząt w czasie rzeczywistym

Related Videos

1.3K Views

Zabieg chirurgicznego wszczepienia implantu i konfiguracja okablowania do ciągłego, długoterminowego monitorowania EEG/EKG u królików

08:36

Zabieg chirurgicznego wszczepienia implantu i konfiguracja okablowania do ciągłego, długoterminowego monitorowania EEG/EKG u królików

Related Videos

939 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code