Name: Środki ostrożności i procedury operacyjne w laboratorium (a)BSL-4: 4. Procedury obrazowania medycznego (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-10-03T11:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 36 s
Description: Poznaj procedury obrazowania medycznego w laboratorium ABSL-4 z wykorzystaniem tomografii komputerowej. Ta metoda umożliwia bezpieczną, nieinwazyjną ocenę postępu choroby u zwierząt zakażonych patogenami wysokiego ryzyka.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Treść tej publikacji niekoniecznie odzwierciedla poglądy lub politykę Departamentu Zdrowia i Opieki Społecznej Stanów Zjednoczonych (DHHS) lub instytucji i firm powiązanych z autorami. Prace te zostały częściowo sfinansowane z głównego kontraktu Battelle Memorial Institute z amerykańskim Narodowym Instytutem Alergii i Chorób Zakaźnych (NIAID) na podstawie umowy nr 1. HHSN272200700016I. M.R.H., K.J., D.P., L.B. i J.W. wykonywali tę pracę jako pracownicy Battelle Memorial Institute. Podwykonawcami Battelle Memorial Institute, którzy wykonali te prace, są: R.B., pracownik Charles River Laboratories - Insourcing Solutions; L.K. i M.R.L., pracownicy MEDRelief Staffing Inc.; M.G.L. jako pracownik Lovelace Respiratory Research Institute, Inc.; oraz J.H.K. jako pracownik Tunnell Government Services, Inc.

Ten protokół jest zgodny z poniższymi wytycznymi dotyczącymi opieki nad zwierzętami. Zwierzęta były trzymane w placówce akredytowanej przez Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care International. Wszystkie procedury eksperymentalne zostały zatwierdzone przez Narodowy Instytut Alergii i Chorób Zakaźnych, Zakład Badań Klinicznych, Komitet ds. Opieki i Użytkowania Zwierząt i były zgodne z przepisami ustawy o dobrostanie zwierząt, polityką Publicznej Służby Zdrowia oraz zaleceniami Przewodnika dotyczącego opieki i użytkowania zwierząt laboratoryjnych.
1. Przygotuj tomograf komputerowy (po "zimnej stronie")
<ol>
	<li>Kondycjonuj lampę rentgenowską
	<ol>
		<li>Sprawdź, czy w pomieszczeniu skanowania nie ma żadnego pracownika, a tabela tematów jest pusta.</li>
		<li>Uruchom procedurę kondycjonowania rurki zgodnie ze specyfikacjami producenta skanera.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Wykonaj kalibrację powietrza
	<ol>
		<li>Upewnij się, że w polu skanowania nie ma żadnych obiektów.</li>
		<li>Procedurę kalibracji powietrza należy przeprowadzić zgodnie ze specyfikacją producenta skanera. Na wielu platformach kalibracja ta jest automatyczna lub półautomatyczna.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Wykonaj skanowanie kontroli jakości (po "gorącej stronie")
	<ol>
		<li>Wykonaj procedury wejścia do laboratorium skafandra ABSL-4 (szczegółowo opisane w odnośniku5) dodając dodatkowy krok. Jeśli procedury wiążą się z narażeniem na materiały radioaktywne, przypnij dozymetr do fartuchów pod kombinezonem ochronnym. Zwracaj dozymetr co 2 miesiące w celu obliczenia narażenia na promieniowanie.</li>
		<li>Umieść fantom tomografii komputerowej głowy i ciała, który jest wykonany z powietrza, wody i teflonu, w odpowiednim uchwycie na stole skanującym.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Wykonaj skanowanie kontroli jakości (po "zimnej stronie")
	<ol>
		<li>Od zimnej strony przesuń fantom do środka otworu6.</li>
		<li>Uzyskaj skan przy użyciu laboratoryjnie znormalizowanych parametrów kontroli jakości (QC), aby upewnić się, że skaner jest zgodny ze specyfikacjami producenta.</li>
		<li>Wykonaj komputerową analizę obrazów QC w celu obliczenia średnich i odchyleń standardowych natężenia sygnału w obszarach zainteresowania wyśrodkowanych na każdym rodzaju materiału (powietrze, woda lub teflon) zgodnie z protokołem producenta.</li>
		<li>Powiadom personel CM, że tomograf komputerowy jest gotowy do użycia.</li>
		<li>Zweryfikuj informacje o zwierzęciu (numer identyfikacyjny, wagę, datę urodzenia) z personelem CM.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Zarejestruj informacje o uczestniku w Bazie Danych Pacjenta.
	<ol>
		<li>Na konsoli tomografu komputerowego (po "zimnej stronie") uzyskaj dostęp do systemu informacji radiologicznej (RIS) skanera. Sprawdź, czy w usługach RIS są wypełnione szczegółowe informacje o harmonogramie skanowania.</li>
		<li>Wybierz bieżący przedmiot i dane demograficzne, takie jak numer identyfikacyjny, wiek, data urodzenia i data egzaminu, a następnie typ egzaminu powinien zostać automatycznie wypełniony.</li>
		<li>Ręcznie wprowadź wagę obiektu.</li>
		<li>Wybierz prawidłową orientację obiektu w gantry CT (np. głowa do przodu, stopy do przodu, leżące, na wznak).</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Przygotowanie miejsc pracy w laboratorium kombinezonów ABSL-4
<ol>
	<li>Przygotuj Komorę Bezpieczeństwa Biologicznego II (BSC) lub stół zstępujący w sali zabiegowej dla zwierząt. Włącz BSC (lub stół zstępujący) co najmniej 10 minut przed użyciem.
	<ol>
		<li>Oczyścić i zdezynfekować wewnętrzne powierzchnie BSC lub górną powierzchnię stołu zstępującego za pomocą zatwierdzonego środka dezynfekującego, takiego jak 5% roztwór dezynfekujący dwutorzędowego amoniaku (chlorek n-alkilo-dimetylobenzyloamoniowy, chlorek n-alkilodimetyloetylobenzyloamoniowy). Spryskać wewnętrzne powierzchnie BSC lub górną powierzchnię stołu zstępującego i wytrzeć powierzchnie do sucha po 10 minutach kontaktu. Spryskaj i przetrzyj powierzchnie 70% etanolem, aby usunąć resztki środka dezynfekującego.</li>
		<li>Umieść potrzebny sprzęt i materiały w BSC lub stole zstępującym, w tym skrzynkę indukcyjną do znieczulenia i rękawice do obchodzenia się ze zwierzętami.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Przygotuj łóżko tomografu komputerowego.
	<ol>
		<li>Ustaw urządzenie do przytrzymywania zwierząt na łóżku tomografii komputerowej.</li>
		<li>Ustaw monitor parametrów życiowych, aby wykrywać tętno i nasycenie tlenem. Jeśli sesja skanowania jest dłuższa niż 10 minut, monitoruj temperaturę.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Przygotuj maszynę do znieczulenia.
	<ol>
		<li>Sprawdź objętość izofluranu w waporyzatorze i w razie potrzeby dodaj więcej izofluranu.</li>
		<li>Wykonaj próbę szczelności, zwiększając ciśnienie w obwodzie oddechowym środka znieczulającego tlenem, sprawdzając, czy nie ulatnia się gaz i wizualnie sprawdzając maszynę do znieczulania pod kątem wycieków1.
		<ol>
			<li>Jeśli zostanie wykryty wyciek, określ jego źródło, rozwiąż problem i wykonaj kolejny test szczelności, aby sprawdzić, czy poprawki zostały prawidłowo wdrożone.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Zważ jednorazowy kanister do oczyszczania, który wychwytuje odpadowy gaz znieczulający. Jeśli kanister ma o ≥50 g więcej niż początkowa masa, należy wymienić kanister7.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. Transport zwierząt z sali zabiegowej dla zwierząt i przygotowanie indukcji znieczulenia w pomieszczeniu tomografu komputerowego (po "gorącej stronie")
<ol>
	<li>Przenieść klatkę, w której trzyma się świnkę morską, z jednego z pomieszczeń do przetrzymywania gryzoni przylegających do zestawu obrazowania do BSC klasy II.
	<ol>
		<li>Zweryfikuj identyfikator zwierzęcia.</li>
		<li>Wyjmij kartę klatki i trzymaj ją ze zwierzęciem.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Otwórz pokrywę klatki i załóż rękawice ze skóry zwierzęcej na rękawice kombinezonu nadciśnieniowego. Delikatnie podnieś świnkę morską, umieść zwierzę w pudełku indukcyjnym do znieczulenia i przykryj pudełko pokrywką.</li>
	<li>Wyjąć pudełko indukcyjne znieczulenia zawierające zwierzę z BSC klasy II i umieścić je na wózku transportowym.</li>
	<li>Za pomocą wózka zabierz zwierzę do pomieszczenia tomografu komputerowego.</li>
	<li>W pomieszczeniu tomografu komputerowego natychmiast podłącz kanister do znieczulenia i urządzenie do znieczulenia do skrzynki indukcyjnej. Włącz gazowy tlen do skrzynki indukcyjnej i ustaw parownik tak, aby dostarczał 4% izofluranu w celu wstępnej indukcji znieczulenia8.</li>
	<li>Monitoruj zwierzę podczas indukcji znieczulenia pod kątem odpowiedniej głębokości znieczulenia (np. brak reakcji na bodźce zewnętrzne, napięcie mięśniowe, stabilne tempo oddychania i serca)8.</li>
	<li>Wyłącz znieczulenie do skrzynki indukcyjnej, gdy świnka morska jest w pełni znieczulona.</li>
</ol>
4. Ułóż obiekt na łóżku do obrazowania w tomografie komputerowym (po "gorącej stronie")
<ol>
	<li>Wyjmij znieczuloną świnkę morską z pudełka indukcyjnego i umieść na łóżku do obrazowania.
	<ol>
		<li>Umieść świnkę morską na poduszce do trzymania w pozycji leżącej.</li>
		<li>Nałóż maść okulistyczną w oba oczy, aby chronić nabłonek rogówki przed wysuszeniem.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Podać podtrzymujące znieczulenie izofluranem.
	<ol>
		<li>Umieść stożek nosowy na śwince morskiej i włącz gaz, aby dostarczyć 1 l/min tlenu do stożka nosowego8.</li>
		<li>Ustaw waporyzator tak, aby dostarczał 2-3% izofluranu do świnki morskiej przez stożek nosowy.</li>
		<li>Gdy pacjent osiągnie pożądaną płaszczyznę znieczulenia (brak ruchu, ~60 oddechów na minutę), zmniejsz ustawienie parownika, aby dostarczyć 1,0-1,5% izofluranu w celu utrzymania znieczulenia.</li>
		<li>Monitoruj parametry życiowe, w tym temperaturę ciała, tętno i częstość oddechów. Jeśli częstość oddechów zacznie przyspieszać lub zwalniać, zwiększ lub zmniejsz zawartość procentową izofluranu, odpowiednio9.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>W razie potrzeby zapewnić dodatkowe źródło ciepła w celu utrzymania temperatury ciała świnki morskiej w zakresie od 37 do 39 °C, w zależności od oczekiwanej długości zbierania danych i głębokości utrzymywanego znieczulenia8,9.</li>
	<li>Przymocuj plastikową osłonę na górze poduszki do trzymania.</li>
	<li>Przesuń łoże obrazowania do probówki zabezpieczającej.</li>
</ol>
5. Ustawianie pola widzenia obrazu
<ol>
	<li>Aktywuj system laserowy (personel do obrazowania) po "zimnej stronie" pomieszczenia tomografu komputerowego, aby ustawić świnkę morską do badania TK. Użyj przycisków "in" i "out" tabeli, aby zakryć interesującą Cię anatomię pod celownikiem lasera.</li>
	<li>Aby ustawić pole widzenia, użyj przycisku lasera, aby ustawić punkt początkowy nad badaną anatomią.</li>
	<li>Skontaktuj się z personelem CM po "gorącej stronie", aby umieścić ołowianą osłonę między sobą a tomografem komputerowym.</li>
</ol>
6. Pobieranie obrazów
<ol>
	<li>Uzyskaj skan ankiety w celu umieszczenia plasterków dla obrazów badania CT zgodnie z protokołem producenta.</li>
	<li>Określ rozmieszczenie plasterków dla obrazów badania CT na obrazach ankietowych.</li>
	<li>Koordynuj działania z personelem "po gorącej stronie", jeśli ma być zastosowana iniekcja kontrastowa.</li>
	<li>Pobierz skan badania zgodnie z protokołem producenta.</li>
	<li>Rekonstrukcja obrazów TK na konsoli skanera zgodnie z protokołem producenta.</li>
	<li>Wysyłaj obrazy do systemu archiwizacji i komunikacji obrazów. Z tego systemu archiwizacji należy przeprowadzić dalsze analizy jakościowe i ilościowe zgodnie z protokołem producenta.</li>
</ol>
7. Odzyskiwanie po skanowaniu
<ol>
	<li>Przenieś świnkę morską z łóżka skanera do czystej klatki z mikroizolatorem z jedzeniem i smakołykami.</li>
	<li>Za pomocą wózka przetransportuj klatkę ze zwierzęciem z powrotem do jego pomieszczenia.</li>
	<li>Monitoruj zwierzę aż do całkowitego wyzdrowienia ze znieczulenia.</li>
	<li>Po całkowitym odzyskaniu umieść klatkę z powrotem w wentylowanych stojakach z filtrem HEPA (High Efficiency Particulate Air).</li>
</ol>
8. Dezynfekcja stanowiska skanera i sprzętu
<ol>
	<li>Zdezynfekować obszar wnęki skanera (np. powierzchnie, które miały bezpośredni kontakt ze zwierzęciem, łóżko skanera, podłoga w pomieszczeniu skanera, klamki) 5% podwójnym czwartorzędowym roztworem amoniowym przez czas kontaktu wynoszący 10 minut.</li>
	<li>Spłukać powierzchnie 70% roztworem etanolu po 10 minutach ekspozycji na podwójny czwartorzędowy roztwór amoniowy.</li>
	<li>Wytrzyj przedmioty, których nie można spryskać bezpośrednio podwójnym czwartorzędowym roztworem amoniowym (wrażliwy sprzęt elektroniczny), szmatką nasyconą podwójnym czwartorzędowym amoniem, a następnie szmatką nasączoną etanolem.</li>
</ol>

<ol><li>Jahrling, P. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+NIAID+Integrated+Research+Facility+at+Frederick%2C+Maryland%3A+a+unique+international+resource+to+facilitate+medical+countermeasure+development+for+BSL-4+pathogens%5BTitle%5D)+AND+%22Pathog+Dis%22%5BJournal%5D)">The NIAID Integrated Research Facility at Frederick, Maryland: a unique international resource to facilitate medical countermeasure development for BSL-4 pathogens.</a> Pathog Dis. , (2014).</li>
<li>de Kok-Mercado, F., Kutlak, F. M., Jahrling, P. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+NIAID+Integrated+Research+Facility+at+Fort+Detrick%5BTitle%5D)+AND+%22Appl+Biosafety%22%5BJournal%5D)">The NIAID Integrated Research Facility at Fort Detrick.</a> Appl Biosafety. 16, 58-66 (2011).</li>
<li>Keith, L., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKeith%2C+L+%22Preclinical+imaging+in+BSL-3+and+BSL-4+envrionments%3A+imaging+pathophysiology+of+highly+pathogenic+infectious+diseases%22">Preclinical imaging in BSL-3 and BSL-4 envrionments: imaging pathophysiology of highly pathogenic infectious diseases</a>. Moyer, B. R., Cheruvu, N. P. S., Hu, T. , Springer-Verlag. New York, NY. (2014).</li>
<li>Chosewood, L. C., Wilson, D. E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aChosewood%2C+LC+%22Biosafety+in+microbiological+and+biomedical+laboratories%22">Biosafety in microbiological and biomedical laboratories</a>. , 5th, U.S. Dept. of Health and Human Services. Washington, D.C. . Accessed Sept. 4, 2014 (2009)
 <a target="_blank" href="http://www.cdc.gov/biosafety/publications/bmbl5/.">http://www.cdc.gov/biosafety/publications/bmbl5/.</a> (2009).</li>
<li>Janosko, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Safety+precautions+and+operating+procedures+in+an+%28A%29BSL-4+laboratory%3A+1.+Laboratory+suite+entry+and+exit+procedures%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Safety precautions and operating procedures in an (A)BSL-4 laboratory: 1. Laboratory suite entry and exit procedures.</a> J Vis Exp. , (2016).</li>
<li>Diagnostic Radiology Committee Task Force on CT Scanner Phantoms. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Phantoms+for+evaluation+and+quality+assurance+of+CT+scanners%22">Phantoms for evaluation and quality assurance of CT scanners</a>. , American Association of Physicists in Medicine. Chicago, IL. (1977).</li>
<li>Collins, B. ACUP 712.01 Waste anesthetic gas scavenging systems. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCollins%2C+B+%22Institutional+Animal+Care+and+Use+Committee%22">Institutional Animal Care and Use Committee</a>. , Cornell University. Ithaca, NY. Available from: 
 <a target="_blank" href="http://www.research.cornell.edu/care/documents/ACUPs/ACUP712.pdf">http://www.research.cornell.edu/care/documents/ACUPs/ACUP712.pdf</a> (2013).</li>
<li>Gargiulo, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mice+anesthesia%2C+analgesia%2C+and+care%2C+Part+I%3A+anesthetic+considerations+in+preclinical+research%5BTitle%5D)+AND+%22ILAR+J%22%5BJournal%5D)">Mice anesthesia, analgesia, and care, Part I: anesthetic considerations in preclinical research.</a> ILAR J. 53, E55-E69 (2012).</li>
<li>Office of the Press Secretary. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Executive+order+13546.+Optimizing+the+security+of+Biological+Select+Agents+and+Toxins+in+the+United+States.+The+White+House%22">Executive order 13546. Optimizing the security of Biological Select Agents and Toxins in the United States. The White House</a>. , Washington, DC. Available from: 
 <a target="_blank" href="http://www.whitehouse.gov/the-press-office/executive-order-optimizing-security-biological-select-agents-and-toxins-united-stat">http://www.whitehouse.gov/the-press-office/executive-order-optimizing-security-biological-select-agents-and-toxins-united-stat</a> (2010).</li>
<li>Escaffre, O., Borisevich, V., Rockx, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathogenesis+of+Hendra+and+Nipah+virus+infection+in+humans%5BTitle%5D)+AND+%22J+Infect+Dev+Ctries%22%5BJournal%5D)">Pathogenesis of Hendra and Nipah virus infection in humans.</a> J Infect Dev Ctries. 7, 308-311 (2013).</li>
<li>Sueblinvong, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Critical+care+for+multiple+organ+failure+secondary+to+Ebola+virus+disease+in+the+United+States%5BTitle%5D)+AND+%22Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Critical care for multiple organ failure secondary to Ebola virus disease in the United States.</a> Crit Care Med. , (2015).</li>
<li>Mazur, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Safety+precautions+and+operating+procedures+in+an+%28A%29BSL-4+laboratory%3A+2.+General+practices%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Safety precautions and operating procedures in an (A)BSL-4 laboratory: 2. General practices.</a> J Vis Exp. , (2016).</li>
<li>Bohannon, J. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Safety+precautions+and+operating+procedures+in+an+%28A%29BSL-4+laboratory%3A+3.+Aerobiology%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Safety precautions and operating procedures in an (A)BSL-4 laboratory: 3. Aerobiology.</a> J Vis Exp. , (2016).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Poprzednie artykuły z tej serii kładły nacisk na obszerne szkolenie, dbałość o szczegóły, procedury bezpieczeństwa i dodatkowe kontrole inżynieryjne wymagane do bezpiecznej pracy w laboratorium o maksymalnym stopniu hermetyczności12,13. Bezpieczne wykonywanie pracy jest najwyższym priorytetem w tych laboratoriach. Filozofia ta jest jeszcze ważniejsza w przypadku pracy z żywymi zwierzętami ze względu na dodatkowe zagrożenia, takie jak możliwość zadawania przez zakażone zwierzęta ugryzień lub zadrapań lub genero...

Misją Zintegrowanego Ośrodka Badawczego Narodowego Instytutu Alergii i Chorób Zakaźnych (NIAID) w Fort Detrick w Frederick MD (IRF-Frederick) jest przeprowadzanie nowych badań nad chorobami zakaźnymi w celu zrozumienia klinicznych procesów chorobowych, które korelują z ciężkością choroby wywołanej przez mikroorganizmy. IRF-Frederick ma unikalną zdolność do wykonywania obrazowania medycznego w modelach zwierzęcych patogenów o wysokich konsekwencjach w laboratorium ABSL-41. Metody obrazowania dostępne dla badaczy obejmują: tomografię komputerową (CT), rezonans magnetyczny (MRI), pozytonową tomografię emisyjną (PET), tomografię komputerową pojedynczych fotonów (SPECT), ultrasonografię, promieniowanie rentgenowskie i fluoroskopię. Naukowcy wykorzystują dostępne możliwości obrazowania do monitorowania postępu choroby i oceny skuteczności interwencji, takich jak leczenie farmakologiczne i szczepienia, w badaniach podłużnych.
Metody obrazowania w IRF-Frederick zostały specjalnie zaprojektowane, aby utrzymać kluczowe komponenty sprzętu poza wysokim poziomem hermetyczności2,3 i dostępne do konserwacji i naprawy. Taka konstrukcja rozdziela zestaw obrazowania na "gorącą" (zawierającą patogen) i "zimną stronę". Aby osiągnąć tę separację, skonstruowano specjalnie zaprojektowane rurki, które rozszerzają przestrzeń o wysokim stopniu hermetyzacji do otworów każdej metody obrazowania (ryc. 1). Rurki te nie tylko zapewniają biologiczną hermetyczność, ale także chronią sprzęt do obrazowania przed gazami i chemikaliami używanymi do dekontaminacji laboratorium o wysokim stopniu hermetyzacji. Naukowcy i technolodzy zajmujący się obrazowaniem obsługują skanery po "zimnej stronie", podczas gdy pracownicy medycyny porównawczej (CM) zajmują się i monitorują zwierzęta po "gorącej stronie". Ponieważ personel CM musi ściśle współpracować z naukowcami zajmującymi się obrazowaniem, aby koordynować te eksperymenty, ta separacja może powodować problemy z komunikacją.
Po ocenie dostępnych opcji, pracownicy CM zostali wyposażeni w słuchawki Bluetooth, które przesyłają krótkofalowe fale radiowe o ultrawysokiej częstotliwości do telefonów używanych do dzwonienia do personelu obrazującego poza przechowalnią. Ze względu na konstrukcję obiektu, w każdym z pomieszczeń musiały zostać zainstalowane bezprzewodowe punkty dostępowe, aby zniwelować zakłócenia sygnału spowodowane warstwami cementu i stali między "gorącą" i "zimną stroną". W ten sposób komunikacja między personelem CM noszącym hałaśliwe skafandry nadciśnieniowe a personelem obrazującym na zewnątrz wysokiego poziomu hermetyczności jest teraz niezawodna. Kamery zostały również zainstalowane po gorącej stronie pomieszczeń do obrazowania, aby personel zajmujący się obrazowaniem mógł zobaczyć aktywność po "gorącej stronie". Dzięki kamerom personel zajmujący się obrazowaniem może kierować technikami CM w zakresie pozycjonowania zwierząt lub wszelkich zmian w protokole obrazowania w ostatniej chwili.
Wszystkie prace w laboratorium kombinezonów IRF-Frederick ABSL-4 wymagają od personelu noszenia skafandrów do hermetyzacji nadciśnieniowej4. Noszenie tych kombinezonów zmniejsza mobilność, a ciężkie lateksowe rękawice dołączone do kombinezonu oraz do trzech dodatkowych warstw rękawic pogarszają zręczność. W rezultacie procedury trwają dłużej, a zadania wymagające umiejętności motorycznych są znacznie trudniejsze. Wraz ze wzrostem poziomu bezpieczeństwa biologicznego obchodzenie się ze zwierzętami i manipulacje nimi stają się coraz trudniejsze i bardziej czasochłonne, szczególnie w przypadku małych zwierząt. Procedury w laboratorium ABSL-4 mogą trwać do 2-3 razy dłużej niż w laboratorium ABSL-2.
Celem tego artykułu jest wizualne pokazanie wyzwań związanych z obrazowaniem modeli zwierzęcych w środowisku ABSL-4 na przykładzie tomografii komputerowej świnki morskiej.

<table><tbody><tr><td>Micro-Chem Plus</td><td>Narodowe Laboratoria Chemiczne</td><td>255</td><td></td></tr><tr><td>Tomograf komputerowy</td><td>Philips Healthcare</td><td></td><td></td></tr><tr><td>CT fantom</td><td>Philips Healthcare</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Isovue-300 (odczynnik kontrastowy CT)</td><td>Bracco Diagnostics</td><td>NDC 0270-1315-30</td><td></td></tr><tr><td>Wentylowany stojak</td><td>Produkty laboratoryjne Klatka</td><td></td><td></td></tr><tr><td>z mikroizolatorem</td><td>Produkty</td><td></td><td></td>laboratoryjne</tr><tr><td>Szafa bezpieczeństwa biologicznego</td><td>Aparat</td> anestezjologiczny Nuaire <td></td><td></td></tr><tr><td>Skrzynka indukcyjna do znieczulenia</td><td></td> SurgiVet WWV9000 VetEquip <td></td><td></td></tr><tr><td>Maska anestezjologiczna</td><td>Henry Schein</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Henry Schein</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td> Kanister do usuwania gazów odlotowych <td></td></tr><tr><td></td><td>Fisher</td><td>F/AIR</td><td></td></tr><tr><td>Poduszka</td><td></td><td></td><td></td>przytrzymująca</tr><tr><td>Maść okulistyczna</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Monitor parametrów życiowych</td><td>Bionet</td><td>BM3Vet</td><td></td></tr><tr><td>Telefon komórkowy</td><td>Spectralink</td><td>8440</td><td></td></tr><tr><td>Słuchawka</td><td></td><td></td><td></td>Blue Tooth</tr><tr><td>Bezprzewodowe punkty</td><td></td><td></td><td></td>dostępowe</tr><tr><td>Sperian kombinezon nadciśnieniowy</td><td>Honeywell Safety Products</td><td>BSL 4-2</td><td></td></tr><tr><td>Rękawice do skafandrów zewnętrznych (lateks, Ansell Canners and Handlers)</td><td>Fisher</td><td>19-019-601</td><td></td></tr><tr><td>Rękawice do skafandrów zewnętrznych (nitryl/guma, MAPA)</td><td>Fisher</td><td>2MYU1</td><td></td></tr><tr><td>Scrubs</td><td>Cintas</td><td>60975/60976</td><td></td></tr><tr><td>Skarpety</td><td>Cintas</td><td>944</td><td></td></tr><tr><td>Taśma klejąca</td><td>Pack-N-Tape</td><td></td><td></td></tr><tr><td>51131069695 Ręczniki</td><td>Cintas</td><td>2720</td><td></td></tr><tr><td>Zip lubrykant</td><td>Amazon</td><td>B000GKBEJA</td><td></td></tr></tbody></table>

Środki ostrożności i procedury operacyjne w laboratorium (a)bsl-4: 4. procedury obrazowania medycznego

Safety Precautions and Operating Procedures in an (A)BSL-4 Laboratory: 4. Medical Imaging Procedures

Obrazowanie medyczne z wykorzystaniem modeli zwierzęcych do leczenia chorób ludzkich było wykorzystywane od dziesięcioleci; jednak do niedawna obrazowanie medyczne chorób wywołanych przez patogeny o wysokich konsekwencjach nie było możliwe. W 2014 roku National Institutes of Health, National Institute of Allergy and Infectious Diseases, Integrated Research Facility w Fort Detrick otworzyły placówkę Animal Biosafety Level 4 (ABSL-4) w celu oceny przebiegu klinicznego i patologii chorób zakaźnych u eksperymentalnie zakażonych zwierząt. Do tych ocen badacze mają dostęp do wielu metod obrazowania, w tym tomografii komputerowej (CT), rezonansu magnetycznego, pozytonowej tomografii emisyjnej i tomografii komputerowej z emisją pojedynczych fotonów. Celem tego artykułu jest opisanie procesu bezpiecznego uzyskiwania obrazu CT żywej świnki morskiej w obiekcie ABSL-4. Procedury te obejmują obchodzenie się ze zwierzęciem, znieczulenie oraz przygotowanie i monitorowanie zwierzęcia do czasu wyzdrowienia z sedacji. Omówimy również przygotowanie sprzętu do obrazowania, przeprowadzanie kontroli jakości, metody komunikacji ze strony "gorącej" (zawierającej patogeny) na "zimną" oraz przenoszenie zwierzęcia z pomieszczenia przetrzymywania do pracowni obrazowania.

Ścisłe przestrzeganie wszystkich procedur bezpieczeństwa oraz standardowych procedur operacyjnych dotyczących obchodzenia się ze zwierzętami jest niezbędne do bezpiecznej pracy w laboratorium poziomu ABSL-4. Przenoszenie zainfekowanych zwierząt wewnątrz boksu indukcyjnego z pomieszczenia zabiegowego do zestawu obrazującego minimalizuje ryzyko skażenia wspólnych korytarzy. Dzięki stosowaniu wymaganych procedur, podczas prowadzenia badań w standardzie ABSL-4 w IRF-Frederick nie odnotowano ż...

Tutaj prezentujemy przegląd procedur przygotowania i obchodzenia się ze zwierzętami wymaganych do bezpiecznego przeprowadzenia obrazowania medycznego w laboratorium o poziomie bezpieczeństwa biologicznego 4 dla zwierząt. Tomografia komputerowa pozorowanej zakażonej świnki morskiej ilustruje te procedury, które można wykorzystać do oceny choroby wywołanej przez patogen o wysokich konsekwencjach.

Środki ostrożności i procedury operacyjne w laboratorium (a)BSL-4: 4. Procedury obrazowania medycznego

Medical imaging using animal models for human diseases has been utilized for decades; however, until recently, medical imaging of diseases induced by ...

Ogólnym celem tej procedury obrazowania jest zaprezentowanie procedur bezpieczeństwa wymaganych do wykonania obrazowania medycznego zwierząt w placówce o 4. poziomie bezpieczeństwa biologicznego dla zwierząt. Dzięki obrazowaniu w środowisku o 4. poziomie bezpieczeństwa biologicznego dla zwierząt można nieinwazyjnie ocenić postęp choroby oraz zidentyfikować biomarkery pomocne w potencjalnych ocenach terapeutycznych i szczepionkowych. Ponieważ pomieszczenia do obrazowania są podzielone na strefę „gorącą” i „zimną”, zakażone zwierzęta są bezpiecznie obrazowane w strefie gorącej, podczas gdy większość sprzętu do obrazowania pozostaje na zewnątrz, w strefie zimnej, w celu łatwiejszej konserwacji.Naszym celem jest wykazanie, że możemy w bezpieczny sposób obrazować te modele zwierzęce śmiertelnych chorób wirusowych, oraz omówienie ograniczeń wynikających z pracy w takim środowisku. Procedury na zwierzętach będzie demonstrował Russ Byrum, kierownik laboratorium zwierzęcego w zintegrowanym ośrodku badawczym. Nasz technolog obrazowania, Chris Bartos, współpracuje z personelem medycyny porównawczej w celu koordynacji umieszczenia zwierzęcia w skanerze oraz pozyskiwania obrazów.Procedury z udziałem zwierząt zostały zatwierdzone przez Komitet ds. Opieki i Wykorzystania Zwierząt oraz Instytucjonalny Komitet ds. Bezpieczeństwa Biologicznego. Aby przygotować tomograf komputerowy, należy upewnić się, że w strefie gorącej i zimnej pomieszczenia do skanowania nie przebywa żaden członek personelu, a stół dla badanego jest pusty. Należy upewnić się, że obiekt reprezentujący gęstość głowy i ciała badanego, nazywany fantomem, wykonany z powietrza, wody i teflonu, jest umieszczony w odpowiednim uchwycie na stole skanującym, po stronie gorącej.Z zimnej strony sprawdź, czy fantom jest prawidłowo przymocowany do stołu. Przesuń fantom do centrum otworu gantry. Wykonaj skan fantomu, stosując laboratoryjne znormalizowane parametry kontroli jakości, aby upewnić się, że skaner spełnia specyfikacje producenta.Powiadom personel medycyny porównawczej, że tomograf komputerowy (CT) jest gotowy do użycia. Włącz stół z wyciągiem w pomieszczeniu zabiegowym dla zwierząt co najmniej dziesięć minut przed planowanym użyciem. Oczyść i zdezynfekuj powierzchnie stołu z wyciągiem, używając zatwierdzonego środka dezynfekującego, takiego jak 5% roztwór dezynfekcyjny na bazie podwójnych czwartorzędowych soli amoniowych.Spryskaj powierzchnie wewnętrzne, a po 10 minutach czasu kontaktu wytrzyj je do sucha, następnie spryskaj i wytrzyj powierzchnie 70% ethanolem, aby usunąć pozostałości środka dezynfekcyjnego. Umieść na stole z wyciągiem niezbędny sprzęt i materiały, w tym pudło do indukcji znieczulenia oraz rękawice do obsługi zwierząt. Zamocuj urządzenie do unieruchomienia zwierzęcia na stole skanera tomografii komputerowej, a następnie skonfiguruj monitor funkcji życiowych.Sprawdź objętość izofluranu w waporyzatorze i w razie potrzeby dolej go więcej. Wizualnie sprawdź maszynę do znieczulania pod kątem wycieków i w razie potrzeby usuń przyczynę każdego stwierdzonego wycieku. Zważ kanister do usuwania gazów, który wychwytuje zużyty gaz anestetyczny.Przenieś klatkę z kawią świnką z jednego z pomieszczeń dla gryzoni znajdujących się obok zestawu do obrazowania na stół z wyciągiem dolnym. Zweryfikuj numer identyfikacyjny zwierzęcia na karcie klatki. Otwórz pokrywę klatki i załóż ochronne skórzane rękawice dla zwierząt na rękawice kombinezonu nadciśnieniowego.Delikatnie podnieś świnkę morską. Umieść zwierzę w komorze indukcyjnej do znieczulenia i przykryj komorę pokrywą. Zdejmij rękawice do obsługi zwierząt oraz rękawice stroju ochronnego, oczyszczając je 5% roztworem dezynfekującym na bazie podwójnych czwartorzędowych soli amoniowych.Zdejmij pudełko do indukcji znieczulenia zawierające zwierzę oraz klatkę ze stołu z wyciągiem dolnym i umieść je na wózku transportowym. Za pomocą wózka przetransportuj zwierzę do pomieszczenia z tomografem komputerowym. W pomieszczeniu z tomografem natychmiast podłącz kanister do odprowadzania gazów oraz aparat do znieczulenia do pudełka do indukcji.Po rozpoczęciu znieczulenia zgodnie z protokołem tekstowym, w ciepłej strefie pomieszczenia ze skanerem CT, monitoruj zwierzę podczas indukcji znieczulenia w celu zapewnienia odpowiedniej głębokości znieczulenia, sprawdzając brak reakcji zwierzęcia na bodźce zewnętrzne oraz kontrolując napięcie mięśniowe. Wyjmij znieczuloną świnkę morską z komory indukcyjnej i umieść ją na poduszce stabilizującej w pozycji brzusznej na stole do obrazowania. W celu podtrzymania znieczulenia nałóż maskę nosową na świnkę morską i włącz dopływ tlenu z prędkością 1 L/min.Podawaj izofluran zgodnie z opisem w protokole tekstowym. Sprawdź, czy częstotliwość oddechów i tętno są stabilne. Wyłącz anestezję w komorze indukcyjnej, gdy świnka morska zostanie w pełni znieczulona.Nałóż maść okulistyczną do obu oczu, aby zapobiec wysychaniu nabłonka rogówki. Uruchom system laserowy po zimnej stronie pomieszczenia skanera CT, aby ustawić świnkę morską do badania tomograficznego. Użyj przycisków wysuwania i wsuwania stołu, aby objąć obszar anatomiczny zainteresowania obszarem celownika laserowego.Aby ustawić pole widzenia, należy użyć przycisku lasera do wyznaczenia punktu początkowego nad obszarem anatomicznym, który jest przedmiotem badania. Należy skontaktować się z personelem medycyny porównawczej znajdującym się po stronie „gorącej”, aby umieścili osłonę ołowianą pomiędzy sobą a skanerem tomografii komputerowej. Wykonaj skan orientacyjny w celu rozmieszczenia przekrojów dla obrazów badania CT zgodnie z protokołem producenta.Wyznacz rozmieszczenie przekrojów dla obrazów badania TK na obrazach przeglądowych. Ustal szczegóły z personelem odpowiedzialnym za stronę „gorącą” (hot side), jeśli stosowany jest wtrysk kontrastu. Wykonaj skan badawczy zgodnie z protokołem producenta, a następnie zrekonstruuj obrazy tomografii komputerowej na konsoli skanera, również zgodnie z protokołem producenta.Przesyłaj obrazy do systemu archiwizacji i komunikacji obrazowej (PACS). W razie potrzeby przeprowadź dalsze analizy jakościowe i ilościowe danych zapisanych w systemie archiwizacji. Przenieś świnkę morską z pomostu skanera do klatki typu mikroizolator z pokarmem, znajdującej się w pomieszczeniu z tomografem komputerowym.Po kontakcie ze zwierzęciem należy oczyścić nitrylowe rękawiczki. Korzystając z wózka, przetransportuj klatkę z powrotem do strefy bytowania w pomieszczeniu zabiegowym. Monitoruj zwierzę aż do pełnego wybudzenia z anestezji przed powrotem klatki do regałów z wentylacją HEPA.Zdezynfekuj zarówno stół z wyciągiem w pomieszczeniu zabiegowym dla zwierząt, jak i obszar zatoki skanera, używając 5% roztworu podwójnych czwartorzędowych soli amoniu. Przetrzyj powierzchnie 70% roztworem etanolu po 10 minutowej ekspozycji na roztwór podwójnych czwartorzędowych soli amoniu. Elementy takie jak czuły sprzęt elektroniczny, np. monitor i aparat do znieczulenia, których nie można spryskiwać bezpośrednio, przetrzyj ściereczką nasączoną podwójnymi czwartorzędowymi solemi amoniu, a następnie ściereczką nasączoną etanolem.Ścisłe przestrzeganie wszystkich procedur bezpieczeństwa oraz standardowych procedur operacyjnych dotyczących postępowania ze zwierzętami jest niezbędne dla bezpiecznej pracy w laboratorium ABSL4. Przenoszenie zainfekowanych zwierząt wewnątrz boksu indukcyjnego z pomieszczenia zabiegowego do zestawu obrazującego minimalizuje ryzyko kontaminacji wspólnych korytarzy. Wprowadzenie systemów komunikacji z wykorzystaniem telefonów Bluetooth z zestawami słuchawkowymi, umożliwiających personelowi ds. obrazowania znajdującemu się po stronie zimnej kontakt z personelem medycyny porównawczej po stronie gorącej, a także komunikacja wizualna, zmniejszają ryzyko błędów w komunikacji pomiędzy rozdzielonym personelem.Dzięki stosowaniu odpowiednich procedur nie odnotowano żadnych zakażeń laboratoryjnych ani kontaminacji krzyżowej zwierząt podczas prowadzenia badań na poziomie biosafety 4 dla zwierząt (ABSL4) w IRF Frederic. Patogeny wirusowe ABSL4 mogą wywoływać patologie związane z płucami, a tomografia komputerowa (CT) jest cennym narzędziem do monitorowania postępu choroby w zwierzęcych modelach infekcji. Obrazy CT powstają w wyniku absorpcji promieniowania rentgenowskiego przez tkanki.W tomografii komputerowej (CT) im większa gęstość obrazowanego obiektu, takiego jak kość, tym jaśniej się on wydaje. Gęste tkanki narządów, takie jak serce i wątroba, mają tendencję do wykazywania średniej intensywności, natomiast tkanki wypełnione powietrzem, takie jak zdrowe płuca, wydają się czarne. CT wykonuje wielokrotne radiogramy w zakresie 360 stopni, które są następnie rekonstruowane w trójwymiarowy obraz ciała.Po opanowaniu tej techniki, przy prawidłowym wykonaniu, procedura zajmuje około 30 minut. Stosując podobne procedury, można wykorzystać inne metody obrazowania, takie jak PET, SPECT i MRI, aby odpowiedzieć na dodatkowe pytania dotyczące patogenezy choroby, a być może nawet do obrazowania samego wirusa. Po obejrzeniu tego filmu powinni Państwo mieć dobre wyobrażenie o stopniu złożoności procedury oraz zasobach niezbędnych do przeprowadzenia obrazowania medycznego zwierząt laboratoryjnych w placówce o 4. poziomie bezpieczeństwa biologicznego (BSL-4).

safety-precautions-operating-procedures-an-bsl-4-laboratory-4-medical

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologia i infekcje

Chociaż badacze są ogólnie zaznajomieni z procedurami i środkami ostrożności wymaganymi do eksperymentów na poziomie bezpieczeństwa biologicznego 1 lub 2 (BSL-1/2), mogą nie być zaznajomieni z procedurami eksperymentalnymi w laboratoriach kombinezonów BSL-4. Ten artykuł zawiera szczegółową wizualną demonstrację systemów laboratoryjnych kombinezonu BSL-4 sprawdzania, procedur wejścia, przemieszczania i wychodzenia z laboratorium.

Środki ostrożności i procedury operacyjne w laboratorium (a) BSL-4: 1. Procedury wejścia i wyjścia z kombinezonu laboratoryjnego poziomu bezpieczeństwa biologicznego 4

Przeprowadzanie testów wirusowych w laboratorium BSL-4 jest bardziej skomplikowane w porównaniu do pracy w laboratorium BSL-2 ze względu na wymagane dodatkowe środki ostrożności. W tym miejscu przedstawiamy przegląd praktyk i procedur stosowanych w laboratorium BSL-4, ilustrujących prawidłowe użytkowanie szafy bezpieczeństwa biologicznego klasy II, gospodarowanie odpadami/usuwanie ich oraz usuwanie próbek.

Środki ostrożności i procedury operacyjne w laboratorium (a)BSL-4: 2. Praktyki ogólne

Ponieważ patogeny o wysokich konsekwencjach mogą potencjalnie infekować podmioty poprzez cząsteczki unoszące się w powietrzu, aerobiologia jest coraz częściej stosowana w badaniach nad patogenezą i rozwoju medycznych środków zaradczych. Przedstawiamy szczegółową wizualną demonstrację procedur aerobiologicznych podczas wyzwania aerozolowego u naczelnych innych niż ludzie w środowisku bezpieczeństwa biologicznego zwierząt na poziomie maksymalnego 4 poziomu hermetyczności.

Środki ostrożności i procedury operacyjne w laboratorium (a)BSL-4: 3. Aerobiologia

Szybko wdrażalne, niezależne od sieci laboratorium zostało zaprojektowane i zbudowane dla odległych, ograniczonych zasobami globalnych ustawień. Badane są cechy i krytyczne aspekty ulepszonych logistycznie, rozszerzalnych, wielofunkcyjnych modułów laboratoryjnych. Opracowywana i prezentowana jest lista kontrolna dotycząca podstawowego przebiegu pracy w laboratorium oraz protokół testu diagnostycznego na obecność wirusa układu oddechowego.

Zdalne zarządzanie laboratorium: diagnostyka wirusów układu oddechowego

Niniejszy protokół opisuje prostą metodę opartą na zastosowaniu taśmy klejącej do pobierania próbek z powierzchni pomidorów oraz innych świeżych produktów rolnych, a następnie szybką detekcję całych komórek Salmonella przy użyciu fluorescencyjnej hybrydyzacji in situ (FISH).

Połączenie pobierania próbek za pomocą taśmy klejącej i fluorescencyjnej hybrydyzacji in situ w celu szybkiego wykrywania Salmonella na świeżych produktach rolnych

Terapia antyretrowirusowa w leczeniu HIV/AIDS jest monitorowana na szeroką skalę w RPA. Cytometria przepływowa jest łączona z badaniami hematologicznymi (CD45), immunologicznymi (CD4) oraz analizą CD38 powiązaną z wiremią. Metody te, zarejestrowane w laboratoriach NHLS-SA w Johannesburgu, są nowoczesne, kostu-efektywne i charakteryzują się wzmocnioną lokalną kontrolą jakości, stanowiąc wzór dla diagnostyki w warunkach ograniczonych zasobów.

Kompleksowy i efektywny kosztowo monitoring laboratoryjny HIV/AIDS: afrykański wzór do naśladowania

Padlinożercy mają potencjał do przenoszenia zakaźnych prionów gąbczastej encefalopatii w swoim kale do obszarów wolnych od chorób.  Szczegółowo opisujemy metody stosowane do określenia, czy priony trzęsawki przystosowane do myszy pozostają zakaźne po przejściu przez przewód pokarmowy wron amerykańskich (Corvus brachyrhynchos), powszechnego konsumenta martwych zwierząt.

Procedury identyfikacji zakaźnych prionów po przejściu przez układ pokarmowy gatunku ptaków

Ten artykuł wyjaśnia zastosowanie obrazowania fluorescencyjnego za pomocą aktywowanej sondy do obrazowania optycznego do wizualizacji in vivo aktywności kluczowych metaloproteinaz macierzy w dwóch różnych eksperymentalnych modelach zapalenia.

Nieinwazyjne obrazowanie optyczne fluorescencji in vivo zapalnej aktywności MMP przy użyciu aktywowalnego środka do obrazowania fluorescencyjnego

Opisujemy metodę wizualizacji IELs γδ znakowanych GFP za pomocą obrazowania przyżyciowego mysiego jelita cienkiego za pomocą mikroskopii konfokalnej z odwróconym wirującym dyskiem. Technika ta umożliwia śledzenie żywych komórek w błonie śluzowej przez okres do 4 godzin i może być wykorzystana do badania różnych interakcji jelitowych między układem odpornościowym a nabłonkiem.

Obrazowanie przyżyciowe limfocytów śródnabłonkowych w jelicie cienkim myszy

Ten artykuł opisuje generowanie ortotopowego mysiego modelu ludzkiego międzybłoniaka opłucnej poprzez wszczepienie komórek międzybłoniaka H2052/484 do jamy opłucnej myszy z obniżoną odpornością. Podłużne monitorowanie rozwoju guzów wewnątrzopłucnowych oceniano za pomocą nieinwazyjnej multimodalnej [18F]-2-fluoro-2-deoksy-D-glukozy pozytonowej tomografii emisyjnej i obrazowania tomografii komputerowej.

Implantacja i monitorowanie za pomocą PET/CT ortotopowego modelu ludzkiego międzybłoniaka opłucnej u myszy z atymią

Poznaj procedury obrazowania medycznego w laboratorium ABSL-4 z wykorzystaniem tomografii komputerowej. Ta metoda umożliwia bezpieczną, nieinwazyjną ocenę postępu choroby u zwierząt zakażonych patogenami wysokiego ryzyka.

Środki ostrożności i procedury operacyjne w laboratorium (a)BSL-4: 4. Procedury obrazowania medycznego

Przeglądaj więcej filmów