29 grudnia 2016
Tutaj opisujemy procedurę przechwytywania na żywo obrazów gastrulacji Drosophila. Umożliwiło nam to lepsze zrozumienie zwężenia wierzchołkowego związanego z wczesnym rozwojem i dalszą analizę mechanizmów rządzących ruchami komórek podczas modyfikacji struktury tkanki.
Ogólnym celem tej procedury jest lepsze zrozumienie kształtu i ruchu komórek podczas gastrulacji Drosophila. Tutaj przedstawiamy solidną metodę pomiaru gastrulacji Drosophila, aby oznaczyć inicjację morfogenetycznego ruchu komórkowego na tym etapie rozwoju embrionalnego. Główną zaletą tej techniki jest to, że przegrupowanie komórek w czasie gastrulacji można zidentyfikować wraz ze zwężeniem wierzchołkowym podczas gastrulacji.
Aby rozpocząć eksperyment, przygotuj mieszaninę 375 mililitrów wody. 125 mililitrów 100% dostępny w handlu sok jabłkowy. 12,5 grama agaru.
12,5 grama glukozy. Następnie podgrzej mieszaninę w kuchence mikrofalowej, aż agar się rozpuści. I wlej go do trzycentymetrowego naczynia do hodowli komórkowych.
Przechowuj mieszaninę w temperaturze 4 stopni Celsjusza do wykorzystania w przyszłości. Po przygotowaniu talerza z jabłkami dodaj na niego cienką warstwę zagniecionej pasty drożdżowej, aby muchy mogły złożyć jaja. Umieść 25 samców i 25 samic much w butelce na talerzu z jabłkami pokrytym ugniatanymi drożdżami.
Owiń plastikowe butelki bulionowe Drosophilas folią aluminiową, aby skłonić muchy do złożenia większej liczby jaj. Trzymaj butelkę do góry dnem w inkubatorze przez noc. Następnego ranka wymień talerz z sokiem jabłkowym na świeży.
Następnie owiń butelkę folią aluminiową i pozwól muchom złożyć jaja przez trzy do czterech godzin. Po złożeniu jaj przez muchy poluzuj jaja z talerza za pomocą wacika. Zbierz zarodki na sitko i umyj je solą fizjologiczną buforowaną fosforanami lub PBS.
Umyj zarodki jeszcze trzy razy za pomocą PBS, w 12-dołkowych szalkach hodowlanych. Odśwież zarodki za pomocą 50% wybielacza, w 12-dołkowych szalkach hodowlanych. Po procesie dechorionacji należy przemyć zarodki jeszcze trzy razy PBS.
Przenieś zarodki do trzycentymetrowej płytki do hodowli komórkowej zawierającej PBS. I wybierz zarodki w piątym etapie pod mikroskopem, w oparciu o poziom przezroczystości na ich granicach. Za pomocą końcówki do pipety o pojemności 200 mikrolitrów zbierz zarodki w stadium.
Następnie umieść dwa wybrane zarodki na szklanym szkiełku nakrywkowym i usuń nadmiar PBS za pomocą bibuły. Za pomocą drobno skręconej bibułki ustaw zarodki grzbietową stroną do szkiełka nakrywkowego. Następnie przymocuj zarodki do szkiełka nakrywkowego za pomocą smaru silikonowego za pomocą cienkiej igły.
Dodaj małą kroplę pustego oleju węglowego 700 na zarodki i umieść szkiełko nakrywkowe zawierające zarodki do góry nogami na wciętym szkiełku. Pozostawiając trochę miejsca na dole slajdu. Następnie przyklej szkiełko nakrywkowe do szkiełka.
Na koniec zbadaj zarodki za pomocą systemu obrazowania konfokalnego, lasera argonowego 488 i obiektywu zanurzeniowego w oleju. Obrazy poklatkowe zostały wykonane z obrazowania na żywo, przy użyciu DE-kadheryny GFP ruchu komórek w ciągu 500 sekund, w celu analizy obszarów wierzchołkowych poszczególnych komórek Drosophila podczas gastrulacji. Po 500 sekundach wyraźnie widoczne jest zwężenie wierzchołkowe i wgłębienie.
Korzystając z naszej metody. Możemy lepiej zrozumieć mechanizmy molekularne gastrulacji Drosophila, a także przejście nabłonkowe do mezenchymalnego, zaangażowane w przerzuty raka.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł przedstawia procedurę obrazowania na żywo gastrulacji Drosophila, co pozwala na lepsze zrozumienie konstrikcji apikalnej podczas wczesnego rozwoju. Technika ta umożliwia szczegółową analizę ruchów komórkowych zaangażowanych w modyfikację struktury tkanki.
Obrazowanie na żywo zmian kształtu i ruchu komórek podczas gastrulacji Drosophila stanowi solidną platformę do analizy mechanizmów molekularnych leżących u podstaw przejścia epitelialno-mezenchymalnego (EMT), procesu zaangażowanego w włóknienie i przerzuty nowotworowe. Metoda ta umożliwia wysokorozdzielczą wizualizację konstrikcji apikalnej i reorganizacji komórek, co zwiększa pewność predykcyjną w wczesnym etapie walidacji celów dla szlaków związanych z EMT. Podejście to wzmacnia ciągłość translacyjną od biologii rozwoju do mechanistycznych badań nad chorobami w obszarze R&D biofarmaceutycznym.
Ta metoda obrazowania integruje kontinuum odkryć, od wczesnego testowania hipotez po opracowanie modeli przedklinicznych dla celów związanych z EMT.