-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
En Face Przygotowanie naczyń krwionośnych myszy
En Face Przygotowanie naczyń krwionośnych myszy
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
En Face Preparation of Mouse Blood Vessels

En Face Przygotowanie naczyń krwionośnych myszy

Full Text
21,819 Views
10:01 min
May 19, 2017

DOI: 10.3791/55460-v

Kyung Ae Ko1, Keigi Fujiwara1, Sunil Krishnan2, Jun-ichi Abe1

1Department of Cardiology, Division of Internal Medicine,University of Texas MD Anderson Cancer Center, 2Department of Radiation Oncology,University of Texas MD Anderson Cancer Center

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Opisano procedurę przygotowania en face tętnicy szyjnej i aorty myszy. Takie preparaty, po immunofluorescencyjnym wybarwieniu specyficznymi przeciwciałami, umożliwiają badanie lokalizacji białek i identyfikację typów komórek w obrębie całej ściany naczyniowej za pomocą mikroskopii konfokalnej.

Transcript

Ogólnym celem tej procedury jest przygotowanie mysiej aorty i tętnicy szyjnej do barwienia immunologicznego en face po podwiązaniu lewej tętnicy szyjnej. Metoda ta pozwala nam badać organizację, ekspresję każdego białka oraz możliwy stan komórek antralnych i innych komórek naczyniowych w metodach barwienia immunologicznego. Preparaty en face umożliwiają analizę dużych obszarów w naczyniach krwionośnych w celu oceny regionalnych różnic w ekspresji różnych normalnych i możliwych parametrów komórek.

Procedurę zademonstruje dr Quaico, mikrochirurg z naszej grupy. Zacznij od umieszczenia znieczulonej myszy na desce chirurgicznej w pozycji leżącej. Po potwierdzeniu braku reakcji na przyklejenie palców przyklej przednie łapy do deski w pozycji rozciągniętej na zewnątrz, a obie tylne nogi do prawej strony myszy, aby odsłonić na lewą stronę szyi.

Usuń włosy wokół szyjki macicy i zdezynfekuj odsłoniętą skórę. Przykryj mysz wysterylizowaną serwetą chirurgiczną z otworem nad obszarem operacyjnym i nałóż maść na oczy zwierzęcia. Przesuń mysz pod mikroskopem preparacyjnym i wykonaj brzuszne nacięcie linii środkowej wokół obszaru szyjki macicy.

Zmień położenie gruczołów ślinowych pokrywających naczynia krwionośne po lewej stronie zwierzęcia, aby odsłonić lewą tętnicę szyjną wspólną, która rozdziela się na lewą tętnicę szyjną wewnętrzną i lewą tętnicę szyjną zewnętrzną. Delikatnie usuń tkankę łączną wokół i poniżej lewej tętnicy szyjnej wewnętrznej i za pomocą kleszczy przełóż pod tętnicą 2,5-centymetrowy wstępnie przycięty jedwabny sześcian o długości 2,5 cala, używając drugich kleszczyków, aby przeciągnąć szew mniej więcej w jednej trzeciej jego długości na drugą stronę naczynia. Podwiązywać lewą tętnicę szyjną wewnętrzną.

Następnie usuń tkankę łączną wokół lewej tętnicy szyjnej zewnętrznej, jak właśnie pokazano, i wykonaj podwiązanie proksymalnie do lewej tętnicy tarczycy górnej. Kiedy wszystkie tętnice, z wyjątkiem tętnicy potylicznej, zostaną podwiązane, przywróć gruczoły ślinowe do ich pierwotnych pozycji i nawodnij pole operacyjne dwiema do trzech kroplami soli fizjologicznej. Następnie użyj sześciu szwów vicryl pokrytych O, aby zamknąć skórę i umieść mysz w wstępnie ogrzanej klatce z monitorowaniem aż do pełnego leżenia.

Po zakończeniu eksperymentu zabezpiecz mysz w pozycji leżącej na desce preparacyjnej i użyj nożyczek do tęczówki, aby odsłonić jamę brzuszną z nacięciem w linii środkowej. Przetnij żebra bocznie do mostka, aby odsłonić klatkę piersiową. Następnie naciąć tętnicę udową i wprowadzić igłę o rozmiarze 26 przymocowaną do obfitości grawitacyjnej umieszczonej w wierzchołku lewej komory, aby napełnić układ krążenia roztworem soli fizjologicznej uzupełnionym heparyną.

Kontynuuj obfitowanie, aż sól fizjologiczna wypływająca z nacięcia stanie się czysta. Następnie zmień system profusion z soli fizjologicznej na 4% paraformaldehydu w PBS. Po pięciu minutach przenieś mysz pod mikroskop preparacyjny i użyj nożyczek i kleszczy, aby pobrać aortę oraz lewą i prawą tętnicę szyjną.

Następnie przenieś tkanki na szalkę Petriego PBS i ostrożnie usuń tłuszcz i tkankę łączną, a następnie oddziel i podłużnie rozdziel aortę i tętnice szyjne w celu odsłonięcia śródbłonka. Najważniejszą rzeczą, o której należy pamiętać podczas przygotowywania preparatów naczyń krwionośnych en face, jest to, że komórki śródbłonka łatwo ulegają uszkodzeniu w wyniku nieostrożnego obchodzenia się z nimi. W żadnym momencie nie rozciągaj naczyń, zwłaszcza podczas zbioru i czyszczenia.

Następnie przenieś każde naczynie do indywidualnych studzienek 12-dołkowej płytki zawierającej 0,5 mililitra roztworu przepuszczalnego na studzienkę. Udrażniaj naczynia krwionośne przez 10 minut, kołysząc w temperaturze pokojowej, a następnie krótko myj w PBS. Zablokuj wszelkie niespecyficzne wiązania za pomocą 30-minutowej inkubacji w 10% normalnej surowicy tego samego gatunku, co planowane przeciwciała drugorzędowe w TTBS, z kołysaniem w temperaturze pokojowej.

Następnie oznacz próbki pierwszorzędowymi przeciwciałami będącymi przedmiotem zainteresowania, rozcieńczonymi w TTBS 10% normalną surowicą przez noc z kołysaniem w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Następnego ranka przepłucz naczynia krwionośne trzema 10-minutowymi płukaniami w TTBS z kołysaniem w temperaturze pokojowej, a następnie inkubacją w odpowiednich przeciwciałach drugorzędowych rozcieńczonych w TTBS i 10% normalnej surowicy i dappy. Umieść próbki z powrotem na wahaczu i pokrywie, aby chronić przed światłem.

Po jednej godzinie w temperaturze pokojowej z kołysaniem należy przemyć próbki trzykrotnie w świeżym TTBS, jak pokazano, a następnie krótko przepłukać w PBS i umieścić jedną kroplę odczynnika zapobiegającego blaknięciu na każde naczynie na indywidualne okulary nakrywkowe o wymiarach 22 na 50 milimetrów. Pod mikroskopem umieść jedno naczynie w każdej kropli odczynnika śródbłonkiem skierowanym w dół i przykryj naczynia jednym szkiełkiem o wymiarach 22 na 75 milimetrów na próbkę. Umieść szkiełka na czystej chusteczce laboratoryjnej i przykryj je dwoma kawałkami chusteczki laboratoryjnej i 3,5 kilograma wagi, aby spłaszczyć naczynia.

Po maksymalnie pięciu minutach usuń ciężarek i wytrzyj nadmiar roztworu z okolic szkiełek nakrywkowych. Następnie nałóż lakier do paznokci na cztery rogi szkiełek nakrywkowych i umieść szkiełka w pudełku na slajdy, szkiełkiem nakrywkowym do góry. Następnego ranka użyj więcej lakieru do paznokci, aby całkowicie uszczelnić szkiełka nakrywkowe i zobrazuj naczynia, gdy tylko lakier do paznokci wyschnie.

Tutaj pokazano typowy obraz immunoflorescencji en face śródbłonka podwójnie wybarwionego kadheryną anty VE i cząsteczką adhezyjną komórek naczyniowych One i ilustrujący pojedynczy przekrój optyczny aorty myszy pobrany w pobliżu ujścia tętnicy międzyżebrowej. Zwróć uwagę na zielone liniowe zabarwienie konturu na złączu adhezyjnym komórek śródbłonka i silną cząsteczkę adhezji komórek naczyniowych, jedno barwienie przy ujściu tętnicy międzyżebrowej, o której wiadomo, że występuje zaburzony przepływ krwi. Na tych obrazach można zaobserwować barwienie en face częściowo podwiązanej lewej tętnicy szyjnej i kontrolnej niepodwiązanej prawej tętnicy dzień po operacji, ze zwiększoną cząsteczką adhezyjną komórek naczyniowych z jednym zabarwieniem widocznym w podwiązanym naczyniu.

Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak wykonać częściowe podwiązanie lewej tętnicy szyjnej i przygotować się en face w naczyniach krwionośnych myszy. Zabierz to ze swoim optykiem do innych małych zwierząt. Stosowanie preparatów en face jest obecnie ograniczone do barwienia immunofluorescencyjnego, ale może być również stosowane z innymi metodami, takimi jak badanie całych obszarów po barwieniu wilgi lub do eksperymentów ex vivo.

Explore More Videos

Słowa kluczowe: en face mysie naczynia krwionośne aorta tętnica szyjna barwienie immunologiczne komórki naczyniowe podwiązanie tętnicy szyjnej zabieg chirurgiczny znieczulona mysz gruczoły ślinowe tętnica szyjna wewnętrzna tętnica szyjna zewnętrzna podwiązanie tętnica potyliczna szwy jama piersiowa

Related Videos

Mysi model rdzeniowo-trapezowy do oceny wpływu podwiązania tętniczek na funkcję i przebudowę mikrokrążenia

16:43

Mysi model rdzeniowo-trapezowy do oceny wpływu podwiązania tętniczek na funkcję i przebudowę mikrokrążenia

Related Videos

12.4K Views

Rozszerzenie naczyń krwionośnych izolowanych naczyń krwionośnych i izolacja macierzy zewnątrzkomórkowej myszy o napiętej skórze

08:09

Rozszerzenie naczyń krwionośnych izolowanych naczyń krwionośnych i izolacja macierzy zewnątrzkomórkowej myszy o napiętej skórze

Related Videos

8.3K Views

Oczyszczanie naczyń mózgowych myszy

07:32

Oczyszczanie naczyń mózgowych myszy

Related Videos

24.2K Views

Wizualizacja 3D perycytów naczyniowych siatkówki u myszy za pomocą barwienia immunologicznego

09:22

Wizualizacja 3D perycytów naczyniowych siatkówki u myszy za pomocą barwienia immunologicznego

Related Videos

911 Views

Etapy przygotowania do pomiaru reaktywności tętniczek siatkówki myszy ex vivo

07:35

Etapy przygotowania do pomiaru reaktywności tętniczek siatkówki myszy ex vivo

Related Videos

7.3K Views

Ocena angiogenezy terapeutycznej w mysim modelu niedokrwienia kończyn tylnych

07:48

Ocena angiogenezy terapeutycznej w mysim modelu niedokrwienia kończyn tylnych

Related Videos

8.9K Views

Obrazowanie wapnia i hemodynamiki perycytów mózgu u myszy transgenicznych in vivo

14:22

Obrazowanie wapnia i hemodynamiki perycytów mózgu u myszy transgenicznych in vivo

Related Videos

3.9K Views

Wizualne podejście do wywoływania dolichoektazji u myszy w celu modelowania dysfunkcji naczyń mózgowych za pośrednictwem dużych naczyń krwionośnych

04:29

Wizualne podejście do wywoływania dolichoektazji u myszy w celu modelowania dysfunkcji naczyń mózgowych za pośrednictwem dużych naczyń krwionośnych

Related Videos

868 Views

Stosowanie barwienia immunofluorescencyjnego en face do bezpośredniej obserwacji komórek śródbłonka naczyń krwionośnych

06:09

Stosowanie barwienia immunofluorescencyjnego en face do bezpośredniej obserwacji komórek śródbłonka naczyń krwionośnych

Related Videos

16.1K Views

Hemostaza rany kłutej i przygotowanie próbek do analizy w zmontowanej mikroskopii elektronowej

05:41

Hemostaza rany kłutej i przygotowanie próbek do analizy w zmontowanej mikroskopii elektronowej

Related Videos

433 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code