Name: Stosowanie dwóch wewnątrzustrojowych urządzeń wspomagających pracę komór jako całkowicie sztucznego serca (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-11T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 49 s
Description: Poznaj metodę całkowitej wymiany serca z wykorzystaniem dwóch wewnątrzustrojowych pomp wirowych w modelu zwierzęcym. Technika umożliwia ocenę ciśnień w czasie rzeczywistym i optymalizację ustawień wspomagania obu komór.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Chcielibyśmy podziękować Laurze Janney i Abbot Medical za częściowe dofinansowanie. Chcielibyśmy również podziękować Duke Perfusion Services i Large Animal Surgical Core za ich pomoc podczas operacji.

Dobrane wiekowo (do oddania krwi, jeśli jest to potrzebne) cielęta (waga 80-90 kg) są pod opieką w obiekcie dla zwierząt. Trzymanie i wszystkie procedury zabiegowe są wykonywane zgodnie z wytycznymi Komitetu ds. Opieki nad Zwierzętami i Użytkowania Centrum Medycznego Uniwersytetu Duke'a.
1. Rozpoczęcie znieczulenia
<ol>
	<li>Po poście przez 8–12 godzin należy wstępnie podawać cielęciu Telazol (4,5 mg/kg/domięśniowo), a następnie podawać izofluran (1–4%) przez maskę na twarz.</li>
	<li>Umieść krowę w pozycji leżącej na podgrzewanym stole i zaintubuj. Przymocuj kończyny do stołu za pomocą ciężkich opasek.</li>
	<li>Umieścić cewnik dożylny (rozmiar 14–20) w żyle usznej.</li>
	<li>Diazepam należy podawać (0,22–0,44 mg/kg mc./dożylnie), jeśli żucie i połykanie jest bardzo powszechne lub jeśli zwierzę gryzie rurkę dotchawiczą (ET). Dodatkowo, w przypadku trudności z intubacją, należy podawać, aby ułatwić narażenie dróg oddechowych na intubację.</li>
</ol>
2. Parametry życiowe i ustawienia linii centralnej
<ol>
	<li>Wentylację mechaniczną należy rozpocząć przy objętości oddechowej 10–15 ml/kg i częstości 20–25 uderzeń na minutę, przy czym izofluran (0,5–4%) utrzymuje się przez cały czas trwania zabiegu.</li>
	<li>Zabezpiecz rurkę ET za pomocą opasek, aby upewnić się, że nie zmieni się położenie rurki podczas operacji.</li>
	<li>Stale monitoruj nasycenie tlenem i tętno przez cały czas trwania eksperymentu. Wszelkie trudności z wentylacją lub nasyceniem tlenem (SaO2) należy natychmiast rozwiązać. Będą one prawdopodobnie związane z położeniem rurki lub ustawieniami respiratora. Jeśli jest to pozycja rurki, wyreguluj rurkę ET, aby uzyskać odpowiednie objętości oddechowe.</li>
</ol>
3. Centralny dostęp naczyniowy
<ol>
	<li>Chociaż następujące czynności można wykonać przezskórnie pod kontrolą ultrasonograficzną, należy zastosować podejście ograniczające, aby lepiej kontrolować wszelkie miejscowe krwawienia po antykoagulacji zwierzęcia.</li>
	<li>Używając tchawicy jako punktu orientacyjnego, ogol futro na szyi (za pomocą maszynki do strzyżenia włosów) i wysterylizuj obszar za pomocą betadyny. Wykonaj równoległe nacięcie liniowe w odległości 1–2 cm od tchawicy i 20 cm od manubrium za pomocą skalpela z ostrzem nr 10.</li>
	<li>Podziel mostek obojczykowo-sutkowy i ostrożnie odsłoń lewą tętnicę szyjną wspólną i żyłę szyjną wewnętrzną za pomocą elektrycznego narzędzia do kauteryzacji. Użyj samozabezpieczającego się zwijacza, aby pomóc w ekspozycji. Utrzymuj proksymalną i dystalną kontrolę zarówno tętnicy, jak i żyły za pomocą dużych szwów jedwabnych (jedwab w rozmiarze 0 lub 1) lub pętli naczyń.</li>
	<li>Kankaniul lewą tętnicę szyjną wspólną za pomocą cewnika o rozmiarze 18 do monitorowania ciśnienia krwi. Odwietrz linię, a jeśli wystąpi krwawienie, umieść szew polipropylenowy 6-0 lub 7-0 w sposób sznurkowy wokół cewnika.
	<ol>
		<li>Podłącz przetwornik ciśnienia do konsoli i przenieś falę ciśnienia do oprogramowania pod "ciśnieniem systemowym". Odczyt i zapisz dane wyjściowe.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Uzyskaj dostęp do lewej żyły szyjnej wewnętrznej w celu podawania płynów i leków oraz monitorowania ciśnienia w żyle centralnej. Podłącz przetwornik ciśnienia do konsoli i przenieś falę ciśnienia do oprogramowania pod "centralnym ciśnieniem żylnym". Odczyt i zapisz dane wyjściowe.</li>
	<li>Przymocuj obie linie dystalnie do skóry i monitoruj. Zapisz wyjściowe ciśnienie w żyłach ośrodkowych (CVP) i ciśnienie tętnicze krwi.</li>
</ol>
4. Mediana sternotomii i krążenie pozaustrojowe (CPB)
<ol>
	<li>Wykonaj badanie palpacyjne mostka od manubrium do mieczykowatego, aby wybrać miejsce w linii środkowej i zaznaczyć za pomocą sterylnego markera chirurgicznego. Ogol futro maszynką do strzyżenia włosów i wysterylizuj obszar za pomocą betadyny. Zastosuj sterylną obłożenie chirurgiczne.</li>
	<li>Wykonaj nacięcie za pomocą ostrza nr 10 od brzucha w dół do mieczykowatego.</li>
	<li>Użyj elektrycznego narzędzia do kauteryzacji, aby podzielić klatkę piersiową większą w dół od mostka, jednocześnie idealnie wyrównając ją z linią środkową za pomocą ręcznego badania palpacyjnego bocznych krawędzi mostka. Naciąć linię środkową mostka za pomocą elektrycznego narzędzia do kauteryzacji. Rozpocznij sternotomię od dołu, dzieląc mieczyk mieczykowaty ciężkimi nożyczkami.</li>
	<li>Przedłuż głowodź sternotomii za pomocą maszynek do strzyżenia ogrodowego. Po każdym cięciu sprawdź mostek. Wykonaj badanie palpacyjne pod mostkiem i wykonaj rozwarstwienie, aby pomóc sercu i płucu odejść od mostka. W połowie sternotomii można napotkać niektóre krzyżujące się mięśnie poprzeczne, które są dzielone za pomocą kauteryzacji elektrycznej.</li>
	<li>Ukończ sternotomię aż do manubrium. Uważaj, aby pozostać wzdłuż linii środkowej, ponieważ będzie to ważne dla gojenia.</li>
	<li>Po zakończeniu sternotomii osiągnij hemostazę, nacinając krwawiące krawędzie mięśni za pomocą elektrycznego narzędzia do kauteryzacji. Nałóż wosk kostny na szpik mostka, aby pomóc w przypadku resztkowego krwawienia.</li>
	<li>Zidentyfikuj grasicę i usuń ją za pomocą elektrycznego narzędzia do kauteryzacji. Wejdź do osierdzia w sposób podłużny i odbijaj się od przepony aż do aorty.
	<ol>
		<li>Stwórz kołyskę osierdziową za pomocą pięciu jedwabnych szwów 2-0 przybliżających osierdzie do skóry, aby podciągnąć serce do góry i je podeprzeć. Wybierz wszystkie rogi otwartego osierdzia i przyprowadź je bezpośrednio do przodu skóry za pomocą jedwabnych szwów.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Utwórz okno o długości 3 cali między aortą a tętnicą płucną, preparując tkankę łączną, aby umożliwić przejście zacisku krzyżowego aorty. Założyć szew polipropylenowy 4-0 ze sznurka do aorty wstępującej w miejscu bliższym rozwidleniu.</li>
	<li>Uwolnić obwodowo żyłę główną górną (SVC) za pomocą rozwarstwienia i założyć drugi szew polipropylenowy 3-0 z torebki. Ustalić heparynizację ogólnoustrojową przy użyciu dawki początkowej 300 j./kg, aby osiągnąć czas krzepnięcia po aktywacji (ACT) większy niż 400 s.</li>
	<li>Po osiągnięciu odpowiedniego ACT użyj ostrza nr 11, aby wejść do aorty i włóż kaniulę tętniczą 18 Fr. Odwietrzyć kaniulę i podłączyć do linii tętniczej CPB. Następnie umieść kaniulę SVC 28 Fr w SVC i uruchom CPB.</li>
	<li>Podczas częściowego CPB zidentyfikuj żyłę główną dolną (IVC) i kanniuluj zgodnie z opisem dla SVC. Zrób to podczas pomostowania, ponieważ pozwala to na lepsze zarządzanie hemodynamiką, biorąc pod uwagę konieczność naciskania na serce w celu ekspozycji. 
	UWAGA: Nadal może istnieć możliwość rozwoju niedociśnienia, ponieważ CPB jest w tym momencie włączony tylko jako częściowe wsparcie. Jeśli wystąpi niedociśnienie, krok ten należy wykonać ostrożnie i rozbić, aby serce zwierzęcia mogło się okresowo wypełniać.</li>
	<li>Po bezpiecznym włożeniu kaniuli IVC należy ją podłączyć do obwodu głównego za pomocą złącza Y. Zapętlić zarówno SVC, jak i IVC taśmą pępowinową, aby umożliwić całkowitą izolację krwi z serca.</li>
</ol>
5. Ventriculectomia
<ol>
	<li>Podczas pełnego wspomagania krążeniowo-oddechowego należy zejść do SVC i IVC za pomocą wcześniej nałożonej taśmy pępowinowej. Zastosuj zacisk krzyżowy aorty proksymalnie do miejsca kaniulacji aorty. Po potwierdzeniu pozycji zacisku rozpocznij komorę.</li>
	<li>Wyciąć tkankę komorową obwodowo 1-2 cm dystalnie do prawego i lewego rowka przedsionkowo-komorowego. Pozostaw krawędź mięśnia komorowego z pierścieniami mitralnymi i trójdzielnymi, aby zapewnić dalsze wsparcie dla implantacji pierścieni huśtawki.</li>
	<li>Przeciąć aparaty podzastawkowe dla zastawek mitralnych i trójdzielnych w miarę ich napotkania.</li>
	<li>Wyciąć mięsień drogi odpływu prawej komory z drogą odpływu prawej komory (RVOT) wraz z wycięciem zastawki płucnej. Należy również wyciąć drogę odpływu lewej komory (LVOT), ale zachować tylną część zastawki aortalnej jako część kurtyny aortalno-mitralnej.</li>
	<li>Podziel przegrodę międzykomorową na końcu. Zidentyfikuj ujście zatoki wieńcowej i podwiązaj za pomocą szwów polipropylenowych 5-0.</li>
</ol>
6. Implantacja pomp o przepływie odśrodkowym (CFP)
<ol>
	<li>Użyj zastawionych, przerywanych, plecionych szwów 2-0, aby przymocować pierścień do szycia do tkanki komorowej i pierścienia zastawki mitralnej. Wyjdź szwy na powierzchni nasierdzia obręczy mięśnia komorowego i przeprowadź przez pierścień do szycia. Technika ta pozwala uniknąć "zbijania się" tkanki powyżej pierścienia, co zakłócałoby koaptację pierścienia z pompą.</li>
	<li>Zastosuj podobne podejście, aby przymocować pierścień do szycia do obręczy mięśnia prawej komory i pierścienia trójdzielnego.</li>
	<li>Przymocuj CFP do pierścieni do szycia i zabezpiecz za pomocą standardowego mechanizmu blokującego. Ustaw je tak, aby umożliwić dostęp do mechanizmu blokującego.</li>
	<li>Dostosuj długość przeszczepu odpływu zgodnie z wybraną orientacją. Po ustaleniu odpowiedniej długości należy odciąć przeszczep odpływowy. Uważaj, aby przeszczep nie był zbyt długi, ponieważ może to spowodować załamania.</li>
	<li>Użyj ciągłych szwów polipropylenowych 4-0, aby zespoleć przeszczepy odpływowe do aorty (dla CFP lewego serca) i tętnicy płucnej (dla CFP prawego serca) w sposób od końca do końca.</li>
	<li>Przed zakończeniem zespoleń należy zwolnić taśmę na kaniulach drenażowych SVC i IVC i pozwolić, aby krew wypełniła prawą i lewą pompę, rozpoczynając w ten sposób proces odpowietrzania. Umieść igłę o rozmiarze 18 w każdym z przeszczepów odpływowych w celu dalszego odpowietrzenia. Użyj respiratora, aby zapewnić oddychanie o dużej objętości, aby umożliwić powrót i odpowietrzenie powietrza uwięzionego w żyłach płucnych.
	<ol>
		<li>Po zakończeniu odpowietrzania usuń igłę i napraw miejsce za pomocą zastawionych szwów polipropylenowych 5-0.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Uruchom pompy przy niskiej prędkości obrotowej (3,000 obr./min), aby umożliwić przepływ krwi do przodu, początkowo z zaciskiem nadal na miejscu. Usuń zacisk krzyżowy aorty i pozostaw pewną objętość krwi, aby dostać się do pomp.</li>
	<li>Stopniowo zwiększaj prędkość pompy w miarę odzwyczajania wspomagania krążeniowo-oddechowego. Zakończyć CPB i całkowicie wspomóc cyrkulację za pomocą pomp po prawej i lewej stronie.</li>
	<li>Określ końcowe ustawienia prędkości pompy na podstawie ciśnienia napełniania żył po prawej i lewej stronie.</li>
	<li>Wprowadzić cewniki ciśnieniowe bezpośrednio do tętnicy płucnej i żył płucnych za pomocą nici polipropylenowej 5-0, aby zabezpieczyć je na miejscu.</li>
	<li>Przesyłaj sygnały ciśnienia do oprogramowania pod etykietami "tętnica płucna" i "żyła płucna". Ponadto należy umieścić ultradźwiękowe sondy przepływu wokół aorty wstępującej i głównej tętnicy płucnej. 
	UWAGA: Wszystkie 4 kanały powinny być teraz aktywne: 1. "ciśnienie ogólnoustrojowe", 2. "centralne ciśnienie żylne", 3. "tętnica płucna" i 4. "żyła płucna".</li>
</ol>
7. Ustanowienie dwukomorowego urządzenia wspomagającego przepływ
<ol>
	<li>Stopniowo zmniejszając przepływ CPB, powoli zwiększaj prędkość lewego CFP, a następnie prawego CFP, zawsze utrzymując niższą prędkość CFP po prawej stronie niż lewą CFP.</li>
	<li>Zwróć szczególną uwagę na hemodynamikę, w tym ogólnoustrojowe ciśnienie krwi i CVP. Nadkrążenie płucne jest wskazane przez niefizjologiczne ciśnienie w tętnicy płucnej lub żyle płucnej.</li>
	<li>Na koniec zwiększ prędkość lewego i prawego CFP, aby osiągnąć przepływ 4 l/min na każdym urządzeniu i odzwyczaić od CPB. Po osiągnięciu stabilności hemodynamicznej należy usunąć kaniule SVC i IVC i zawiązać szwy sznurkowe.</li>
	<li>Następnie usuń kaniulę aorty i zawiąż szew ze sznurkiem do torebki. Poddaj zwierzę eutanazji, powoli zmniejszając się, a następnie zatrzymując obie pompy CFP, gdy zwierzę jest pod narkozą.</li>
</ol>

<ol><li>Mozzafarian, D., et al. American Heart Association Statistics Committee and Stroke Statistics Subcommittee. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+disease+and+stroke+statistics%E2%80%942016+update%3A+a+report+from+the+American+Heart+Association%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Heart disease and stroke statistics—2016 update: a report from the American Heart Association.</a> Circulation. 133 (4), e38-e360 (2016).</li>
<li>Slaughter, M. S., et al. HeartMate II Investigators. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advanced+heart+failure+treated+with+continuous-flow+left+ventricular+assist+device%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Advanced heart failure treated with continuous-flow left ventricular assist device.</a> N Engl J Med. 361 (23), 2241-2251 (2009).</li>
<li>Fang, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rise+of+the+Machines+%E2%80%94+Left+Ventricular+Assist+Devices+as+Permanent+Therapy+for+Advanced+Heart+Failure%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Rise of the Machines — Left Ventricular Assist Devices as Permanent Therapy for Advanced Heart Failure.</a> N Engl J Med. 361, 2282-2285 (2009).</li>
<li>Kirklin, J. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Seventh+INTERMACS+annual+report%3A+15%2C000+patients+and+counting%5BTitle%5D)+AND+%22J+Heart+Lung+Transplant%22%5BJournal%5D)">Seventh INTERMACS annual report: 15,000 patients and counting.</a> J Heart Lung Transplant. 34 (12), 1495-1504 (2015).</li>
<li>Leidenfrost, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Right+ventricular+assist+device+with+membrane+oxygenator+support+for+right+ventricular+failure+following+implantable+left+ventricular+assist+device+placement%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Cardiothorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Right ventricular assist device with membrane oxygenator support for right ventricular failure following implantable left ventricular assist device placement.</a> Eur J Cardiothorac Surg. 49 (1), 73-77 (2016).</li>
<li>Gerosa, G., Gallo, M., Bottio, T., Tarzia, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Successful+heart+transplant+after+1374+days+living+with+a+total+artificial+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Cardiothorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Successful heart transplant after 1374 days living with a total artificial heart.</a> Eur J Cardiothorac Surg. 49 (4), e88-e89 (2016).</li>
<li>Pelletier, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((System+overview+of+the+fully+implantable+destination+therapy--ReinHeart-total+artificial+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Cardiothorac+Surg%22%5BJournal%5D)">System overview of the fully implantable destination therapy--ReinHeart-total artificial heart.</a> Eur J Cardiothorac Surg. 47 (1), 80-86 (2015).</li>
<li>Krabatsch, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biventricular+circulatory+support+with+two+miniaturized+implantable+assist+devices%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Biventricular circulatory support with two miniaturized implantable assist devices.</a> Circulation. 124, Suppl 11. S179-S186 (2011).</li>
<li>Milano, C. A., Schroder, J., Daneshmand, M. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1522294216000039">Total Artificial Heart Replacement With 2 Centrifugal Blood Pumps.</a> Oper Tech Thorac Cardiovasc Surg. 20 (3), 306-321 (2016).</li>
<li>Strueber, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Placement+of+2+implantable+centrifugal+pumps+to+serve+as+a+total+artificial+heart+after+cardiectomy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Thorac+Cardiovasc+Surg%22%5BJournal%5D)">Placement of 2 implantable centrifugal pumps to serve as a total artificial heart after cardiectomy.</a> J Thorac Cardiovasc Surg. 143 (2), 507-509 (2012).</li>
</ol>

Praca ta była możliwa dzięki grantowi badawczemu przyznanemu przez Abbot Medical dr Milano.

W tym manuskrypcie opisujemy zastosowanie dwóch odśrodkowych przepływów VAD jako wewnątrzustrojowego TAH. Ta technika może być bardzo przydatna do badania wpływu sztucznego krążenia na narządy wtórne, takie jak płuca i wątroba. Ponadto może być przydatny do badania zmian hemodynamicznych wynikających z różnych orientacji pomp i scenariuszy przepływu. Krytyczne kroki w tym protokole obejmują sposób, w jaki pierścienie do szycia są przymocowane do tkanki komorowej, a jednocześnie zawierają pierścienie zastawkowe w celu zwi...

Nastąpił wzrost liczby pacjentów z niewydolnością serca, szacuje się, że obecnie w Stanach Zjednoczonych na tę chorobę cierpi 5,7 miliona dorosłych1. Około 300 000 pacjentów cierpi na schyłkową niewydolność serca, a średnia długość życia wynosi mniej niż jeden rok. Chociaż przeszczep serca pozostaje złotym standardem terapii w końcowym stadium niewydolności serca, jest on znacznie ograniczony przez liczbę dostępnych narządów dawcy. MCS został wprowadzony jako realna alternatywa dla transplantacji serca, zwłaszcza dzięki zastosowaniu VADs2. Działanie VED polega na odciążeniu lewej komory i zapewnieniu przepływu do przodu (wspomaganego przez pompę) bezpośrednio do krążenia tętniczego. VAD mogą być wszczepiane jako pomost do przeszczepu, jak również jako terapia docelowa dla pacjentów, którzy nie kwalifikują się do transplantacji3. Od czasu zatwierdzenia przez FDA niecałą dekadę temu, roczna liczba wszczepianych VED przekroczyła liczbę przeszczepów serca, przy czym liczba ta wykładniczo rośnie4. Jednak w podgrupie pacjentów niewydolność serca jest dwukomorowa (tj. dotyczy zarówno lewej, jak i prawej komory) i samo wspieranie lewej komory może nie zapewnić odpowiedniej perfuzji. W takich sytuacjach prawa komora wymaga tymczasowego wsparcia mechanicznego5. Ten rodzaj "RVAD" wymaga użycia dużych kaniul podłączonych do pompy pozaustrojowej, która ogranicza pacjenta do Oddziału Intensywnej Terapii (OIOM) podczas rekonwalescencji komory. Dla ograniczonej podgrupy pacjentów inną opcją jest TAH6,7. Wskazaniami do stosowania TAH są: niewydolność dwukomorowa po zawale lekarskim, ubytek przegrody międzykomorowej (VSD), ciężka miopatia restrykcyjna wykluczająca kaniulację komorową oraz nieudany przeszczep serca wymagający przewlekłego wspomagania. Jednak obecnie zatwierdzone przez FDA urządzenie TAH jest duże i nie może być stosowane u mniejszych pacjentów. Dodatkowo sterowniki pneumatyczne są sporych rozmiarów i ograniczają mobilność pacjenta.
Jedną ze strategii eksperymentalnych dla niektórych pacjentów jest użycie drugiego VAD do wsparcia prawej komory8,9,10. W tym scenariuszu obie komory są wycinane, a dwa VAD są wszczepiane jako TAH. Stało się to możliwe dzięki ulepszeniom w konstrukcji urządzenia i zmniejszeniu profilu urządzenia. Nowe odśrodkowe VAD są znacznie mniejsze, co pozwala na wszczepienie dwóch VAD obok siebie, aby wspierać zarówno lewe, jak i prawe krążenie. Podejście to pozostaje eksperymentalne z wieloma ważnymi wyzwaniami, w tym ustawieniami urządzenia w celu zrównoważenia prawego i lewego krążenia, orientacją urządzeń i przeszczepem odpływowym wraz z ich wpływem na hemolizę i inne zdarzenia niepożądane. Celem tego protokołu jest zapewnienie powtarzalnego podejścia do zastąpienia TAH dwoma odśrodkowymi zaworami VED w modelu krowy.

<table><tbody><tr><td>SPO2&nbsp; i tętno należy monitorować: Multiparameter</td><td>Meditech Equipment, Co., Ltd.</td><td>Monitor hemodynamiczny</td> <td>MD-908</td> śródoperacyjnie</tr><tr><td>Viscot Mini XL Markery chirurgiczne</td><td>Amazon</td><td>B007P550WG</td><td>znakowanie mostka przed nacięciem</td></tr><tr><td>60W High Power Electric Pet Cat Rabbits Koń Strzyżenie włosów zwierząt Maszynka do strzyżenia włosów</td><td>LILY International Business CO., LIMITED&nbsp;</td><td>ZP-293</td><td>Golenie futra</td></tr><tr><td>nr 10 ostrze skalpela</td><td>Swann-Mortan, Anglia</td><td>301</td><td>Nacięcie skóry</td></tr><tr><td>Nożyczki Matzenbaum</td><td>BD-V. Mueller, USA</td><td>CH2006-001</td><td>Nożyczki do eksploracji naczyń krwionośnych</td></tr><tr><td></td><td>Felco, USA</td><td>FELCO 200A-50, Felco Professional Nożyce do obejścia</td> do <td>sternotomii</td></tr><tr><td>Samozwijacz</td><td>BD-V. Mueller, Stany Zjednoczone</td><td>AU19270</td><td>SCHUKNECHT Samozabezpieczający się zwijacz zauszny,&nbsp;</td></tr><tr><td>Zwijacz mostka</td><td>BD-V. Mueller, Stany Zjednoczone</td><td>CH6950-007</td><td>Retraktor mostka Cooley</td></tr><tr><td>Przetwornik ciśnienia (Millar Mikro-Tip, 5Fr)</td><td>Millar, Stany</td><td>Zjednoczone MillarMikro-Tip, SPR-350S</td><td>Ocena ciśnienia w tętnicy płucnej lub żyle</td></tr><tr><td>Instrumenty AD (PowerLab)</td><td>Instrumenty AD, USA</td><td>PowerLab 16/35</td><td>Transdukcja sygnału ciśnienia</td></tr><tr><td>Taśmy pępowinowe</td><td>Medline industries Inc., Stany Zjednoczone</td><td>U11</td><td>Do izolacji i zastawiania sidła żyły głównej górnej lub dolnej Pętle</td></tr><tr><td>naczyń</td><td>Aspen Surgical, USA</td><td>3901, 3902 i 3904</td><td>Izolacja naczyń</td></tr><tr><td>Nici jedwabne, 2-0</td><td>Ethicon US, LLC, USA</td><td>SA11G</td><td>Do sidła żyły głównej górnej lub dolnej</td></tr><tr><td>Ticron 2-0</td><td>Covidien, USA</td><td>Szew TicronTM</td><td>Szew naczyniowy</td></tr><tr><td>Prolene, 7-0</td><td>Covidien, USA</td><td>Surgipro II</td><td>Szew naczyniowy</td></tr><tr><td>Prolene, 6-0</td><td>Covidien, USA</td><td>Surgipro II</td><td>Szew naczyniowy</td></tr><tr><td>Prolene, 4-0</td><td>Covidien, USA</td><td>Surgipro II</td><td>Szew naczyniowy</td></tr><tr><td>Prolene, 3-0</td><td>Covidien, USA</td><td>Surgipro II</td><td>Szew naczyniowy</td></tr><tr><td>Kaniula aortalna, 15-18 Fr</td><td>Medtronic, USA</td><td>Wydłużona-jednoczęściowa-kawałkowa kaniula tętnicza</td><td>Kaniula aortalna 3D do ustawiania krążenia i oddechu obejście</td></tr><tr><td>Kaniula żylna, 28Fr</td><td>Edwards Lifesciences</td><td>jednostopniowa</td><td>kaniula żylna do założenia krążenia pozaustrojowego</td></tr></tbody></table>

stosowanie dwóch wewnątrzustrojowych urządzeń wspomagających pracę komór jako całkowicie sztucznego serca

Use of Two Intracorporeal Ventricular Assist Devices As a Total Artificial Heart

Mechaniczne wspomaganie krążenia (MCS) zostało wprowadzone jako realna alternatywa dla transplantacji serca, głównie dzięki zastosowaniu wewnątrzustrojowych urządzeń wspomagających pracę komór (VADs) do wspomagania lewej komory. Jednak niektóre scenariusze kliniczne uzasadniają dwukomorowe wspomaganie mechaniczne. Jedną ze strategii dla niektórych pacjentów jest wycięcie obu komór i wszczepienie dwóch pomp VAD jako całkowitego sztucznego serca (TAH). Ostatnio stało się to możliwe dzięki ulepszeniom w konstrukcji urządzeń i niewielkiemu profilowi urządzeń odśrodkowych. To podejście TAH pozostaje eksperymentalne z wieloma ważnymi wyzwaniami, takimi jak ustawienia urządzenia w celu zrównoważenia prawego i lewego krążenia, orientacja urządzeń i przeszczep odpływowy wraz z ich wpływem na hemolizę i stabilność, a także wynik przewlekłego wspomagania przy użyciu takiej orientacji. Protokół ten ma na celu zapewnienie powtarzalnego podejścia do całkowitej wymiany sztucznego serca za pomocą dwóch wewnątrzustrojowych odśrodkowych VAD w modelu krowy.

Na Rysunku 1 przedstawiono sposób mocowania pierścieni szyjących. Rysunek 1A pokazuje „marszczenie” tkanki komory, które może stwarzać problemy z mocowaniem pompy. Rysunek 1B przedstawia prawidłowe mocowanie.
Rysunek 2 oraz Rysunek 3 przedstawiają dwie różne orientacje pomp. Na <st...

Tutaj prezentujemy protokół wykorzystujący dwie pompy odśrodkowe jako całkowitą wymianę sztucznego serca.

Stosowanie dwóch wewnątrzustrojowych urządzeń wspomagających pracę komór jako całkowicie sztucznego serca

Mechanical circulatory support (MCS) has been introduced as a viable alternative to heart transplantation primarily through the use of intracorporeal ...

Ogólnym celem niniejszej procedury jest przeprowadzenie całkowitej wymiany serca w modelu dużego zwierzęcia przy użyciu dwóch implantowanych pomp odśrodkowych. Metoda ta może pomóc w udzieleniu odpowiedzi na kluczowe pytania w dziedzinie chirurgii niewydolności serca, dotyczące optymalnych ustawień prędkości dla wewnątrzorganowego, biventrykularnego wsparcia z wykorzystaniem dwóch odśrodkowych urządzeń wspomagających pracę komór. Technika ta umożliwia ocenę ciśnienia systemowego i płucnego w czasie rzeczywistym w sytuacjach, gdy całkowite sztuczne serce nie jest rozwiązaniem możliwym do zastosowania.Po wykonaniu sternotomii, przypal krwawiące brzegi mięśni za pomocą elektrokoagulatora i nałóż wosk kostny na mostek, aby zahamować ewentualne pozostałe krwawienie. Używając elektrokoagulatora, usuń grasicę, a następnie otwórz osierdzie wzdłużnie, od przepony w kierunku aorty. Za pomocą szwów jedwabnych 520 przesuń wszystkie rogi osierdzia bezpośrednio przed skórę, tworząc kolebkę osierdziową do podtrzymania serca.Rozetnij tkankę łączną, aby stworzyć okno o długości 3 cali pomiędzy aortą a tętnicą płucną, a następnie wykonaj szew typu woreczek z nici polipropylenowej 3-0 na aorcie wstępującej, proksymalnie względem rozwidlenia. Za pomocą tępej dyssekcji uwolnij obwodowo żyłę główną górną (SVC) i wykonaj drugi szew typu woreczek, używając nici polipropylenowej 3-0. Podaj dawkę początkową heparyny w ilości 300 jednostek na kilogram masy ciała, aby uzyskać czas krzepnięcia aktywnego powyżej 400 sekund i wprowadzić ogólnoustrojową heparynizację.Następnie za pomocą ostrza nr 11 należy naciąć aortę i wprowadzić kaniulę tętniczą o rozmiarze 18 French. Po odpowietrzeniu kaniuli należy podłączyć ją do linii tętniczej krążenia pozaustrojowego (CPB). W górnej części żyły głównej (SVC) należy umieścić kaniulę kątową o rozmiarze 28 French, a następnie uruchomić CPB.Wykonaj kaniulację żyły głównej dolnej (IVC) w sposób analogiczny do zaprezentowanej wcześniej kaniulacji SVC. Następnie użyj łącznika w kształcie litery Y, aby połączyć odpływy z SVC i IVC w jeden główny obieg, a obie żyły (SVC i IVC) opraw taśmą pępowinową, aby umożliwić całkowitą izolację krwi z serca. Przy pełnym wsparciu krążenia pozaustrojowego zaciśnij taśmy na SVC i IVC oraz załóż zacisk naczyniowy na aortę proksymalnie względem miejsca kaniulacji aorty.Po założeniu zacisku, okrężnie wyciąć tkankę komór jedną do dwóch centymetrów dystalnie względem prawego i lewego bruzdy przedsionkowo-komorowych, pozostawiając brzeg mięśnia komór z pierścieniami zastawki mitralnej i trójdzielnej, aby zapewnić dalsze wsparcie dla implantacji pierścieni szycia. Przeciąć aparaty podzastawkowe zastawek mitralnej i trójdzielnej w miarę ich napotykania, a następnie wyciąć trakt odpływu prawej komory (RVOT), czyli mięsień RVOT, oraz sam RVOT, włącznie z zastawką płucną. Następnie otworzyć trakt odpływu lewej komory (LVOT), dbając o zachowanie tylnej części zastawki aortalnej jako elementu kurtyny aortalno-mitralnej.Następnie wyresekuj pozostałą część przegrody międzykomorowej, pozostawiając co najmniej jeden centymetr tkanki mięśniowej przy pierścieniach zastawki mitralnej i trójdzielnej, a następnie podwiąż ujście zatoki wieńcowej szwami z polipropylenu 5-0. W celu implantacji pomp przepływu odśrodkowego (CFP), najpierw użyj przerywanych szwów plecionych 2-0 z podkładkami, aby przymocować pierścień szycia do tkanki komory i pierścienia zastawki mitralnej, wyprowadzając szwy na powierzchni epikardialnej brzegu mięśnia komory i przeciągając je przez pierścień szycia. Szwy należy założyć w taki sposób, aby uniknąć marszczenia tkanki komory podczas dociągania pierścienia.Stosując podobną metodę, przymocuj pierścień do szycia do brzegu mięśnia prawej komory oraz pierścienia zastawki trójdzielnej, a następnie przymocuj CFP do pierścieni do szycia, korzystając ze standardowego mechanizmu blokującego w celu zabezpieczenia pomp. Dostosuj długość graftu odpływowego do wybranej orientacji i przytnij go do odpowiedniej długości. Wykonaj skośne cięcie graftu, jeśli jego średnica jest mniejsza niż średnica aorty lub tętnicy płucnej.Używając szwów polipropylenowych 4-0 w szwie ciągłym, wykonaj anastomozy końcówkę-do-końcówki graftów odpływowych z aortą dla lewego CFP oraz z główną tętnicą płucną dla prawego CFP; przed zakończeniem anastomoz poluzuj taśmy na kaniulach drenażowych SVC i IVC, aby napełnić pompy i grafty. Rozpocznij proces odpowietrzania, pozwalając krwi na wypełnienie pompy prawej i lewej, a następnie wprowadź igłę 18G do każdego z graftów odpływowych w celu dalszego usunięcia powietrza. Użyj respiratora, aby podać oddechy o dużej objętości, co umożliwi usunięcie powietrza uwięzionego w żyłach płucnych.Po zakończeniu usuwania powietrza wyjmij igłę i użyj wchłanialnych szwów z polipropylenu 5-0 z podkładkami, aby zamknąć miejsce nacięcia. Następnie uruchom pompy z prędkością 3 000 RPM i zdejmij zacisk na aorcie. Stopniowo zwiększaj prędkość pomp podczas odzwyczajania pacjenta i kończenia CPB, aby krążenie było w pełni wspierane przez pompy prawostronną i lewostronną.Wprowadź cewniki pomiaru ciśnienia bezpośrednio do lewego przedsionka i zabezpiecz je w tej pozycji, stosując szew purse-string z nici polipropylenowej 5-0. Przesuń sygnały ciśnienia do oprogramowania pod etykietami tętnica płucna i żyła płucna. Aby ustanowić przepływ w urządzeniu do wspomagania obu komór, powoli zwiększaj najpierw prędkość lewego CFP, a następnie powoli zwiększaj prędkość prawego CFP, stopniowo zmniejszając przepływ CPB.Należy zwrócić szczególną uwagę na hemodynamikę, w tym na systemowe ciśnienie tętnicze oraz ciśnienie w żyłach centralnych. W razie potrzeby zwiększyć prędkość CFP lewej i prawej strony, aby uzyskać przepływ wynoszący około cztery litry na minutę po każdej stronie, co pozwoli na osiągnięcie prawidłowych wartości ciśnienia w tętnicach i żyłach płucnych. Po uzyskaniu stabilności hemodynamicznej należy usunąć kaniule z żyły głównej górnej (SVC) i dolnej (IVC), a następnie zawiązać szwy typu „workowy”.Na tym obrazie niewłaściwe przymocowanie pierścienia doprowadziło do zmarszczenia tkanki komory, co może spowodować problem z montażem pompy. Tutaj pompy są rozmieszczone tak, aby przeszczepy odpływowe były krótkie i wpadały bezpośrednio do połączonych tętnic. W tej alternatywnej orientacji przeszczepy odpływowe są ustawione tak, aby oba CFPy, prawy i lewy, mogły obracać się obwodowo przed zostaniem anastomozowanymi odpowiednio do tętnicy płucnej i aorty.Po opanowaniu, technika ta może zostać wykonana w około trzy godziny, pod warunkiem właściwego przeprowadzenia procedury.

use-two-intracorporeal-ventricular-assist-devices-as-total-artificial

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Celem tego manuskryptu jest krótki przegląd wskazań, postępowania i wyników dla całego sztucznego serca.  Przedstawiono techniki wideooperacyjne implantacji urządzenia.

Implantacja sztucznego serca Syncardia Total

To jest opis przypadku pacjenta z wrodzoną skorygowaną transpozycją wielkich tętnic (CCTGA), który otrzymał całkowite sztuczne serce (TAH) jako pomost do przeszczepu serca. TAH został pomyślnie wszczepiony z modyfikacjami w celu dostosowania do wrodzonych wad serca pacjenta.

Wszczepienie całkowitego sztucznego serca w wrodzonych wadach serca

Przezskórne urządzenia wspomagające komorowe są coraz częściej stosowane u pacjentów z ostrym zawałem mięśnia sercowego i wstrząsem kardiogennym. W tym artykule omówiono mechanizm działania i efekty hemodynamiczne takich urządzeń. Dokonujemy również przeglądu algorytmów i najlepszych praktyk w zakresie implantacji, zarządzania i odzwyczajania tych złożonych urządzeń.

Wykorzystanie przezskórnych urządzeń wspomagających pracę komór w ostrym zawale mięśnia sercowego powikłanym wstrząsem kardiogennym

Poniższy artykuł opisuje krok po kroku procedurę umieszczania urządzenia (np. Tandemheart) we wstrząsie kardiogennym (CS), które jest przezskórnym urządzeniem wspomagającym lewą komorę (pLVAD) i systemem pomostowania lewej tętnicy przedsionkowej do udowej (LAFAB), które omija i wspiera lewą komorę (LV) w CS.

Stosowanie przezskórnego urządzenia wspomagającego komorę/system pomostowania lewego przedsionka do tętnicy udowej w przypadku wstrząsu kardiogennego

Prezentujemy protokół laboratoryjny do wywoływania zakrzepicy w urządzeniach wspomagających komorowe (VAD) w ramach recyrkulacyjnej platformy testowej. Metoda ta służy do identyfikacji zakrzepowych punktów zapalnych na ścieżce przepływu krwi i może pomóc w poprawie trombooporności przed badaniami przedklinicznymi na modelach zwierzęcych.

In vitro Test na zakrzepicę dla urządzeń wspomagających pracę komór

Dwukomorowe implantowalne kardiowertery-defibrylatory (ICD) mogą poprawić wykrywanie migotania przedsionków oraz różnicowanie tachykardii. Zaleta ta jest jednak niwelowana przez powikłania związane z drugą elektrodą, która jest wymagana w konwencjonalnych urządzeniach dwukomorowych. W związku z tym firma BIOTRONIK opracowała nową elektrodę o nazwie LinoxSMART S DX, która stosowana wraz z ICD Lumax DX zapewnia detekcję dwukomorową bez ryzyka związanego z drugą elektrodą.

Nowy jednokomorowy implantowalny kardiowerter-defibrylator z funkcją detekcji przedsionkowej: praktyczna prezentacja detekcji i łatwości implantacji

Ten artykuł opisuje procedury wszczepiania nowego hydrożelu w niewydolne serca i ilościowe określanie jego wpływu na naprężenie i funkcję ściany lewej komory. Procedury te zostały z powodzeniem zastosowane u psów i ludzi.

Zmniejszenie stresu w ścianie lewej komory i poprawa funkcji w niewydolności serca za pomocą Algisyl-LVR

Audio-based Environment Simulator (AbES) to oprogramowanie do środowiska wirtualnego, zaprojektowane w celu poprawy umiejętności nawigacji w świecie rzeczywistym u osób niewidomych.

Opracowanie wirtualnego środowiska gier opartego na dźwięku, aby pomóc w rozwijaniu umiejętności nawigacji u osób niewidomych

Tutaj opisujemy przygotowanie żywotnych wycinków komorowych od dorosłych myszy i ich wykorzystanie do rejestracji potencjału czynnościowego elektrod ostrych. Te wielokomórkowe preparaty zapewniają zachowaną in vivo strukturę tkankową, co czyni je cennym modelem do badań elektrofizjologicznych i farmakologicznych in vitro.

Mysie plastry serca o krótkiej osi do badań elektrofizjologicznych

Tutaj prezentujemy protokół do wywołania kardiomiopatii wywołanej tachykardią u świń. Model ten stanowi skuteczny sposób badania hemodynamiki postępującej przewlekłej niewydolności serca i skutków zastosowanego leczenia.

Kardiomiopatia wywołana tachykardią jako model przewlekłej niewydolności serca u świń

Poznaj metodę całkowitej wymiany serca z wykorzystaniem dwóch wewnątrzustrojowych pomp wirowych w modelu zwierzęcym. Technika umożliwia ocenę ciśnień w czasie rzeczywistym i optymalizację ustawień wspomagania obu komór.

Stosowanie dwóch wewnątrzustrojowych urządzeń wspomagających pracę komór jako całkowicie sztucznego serca

Przeglądaj więcej filmów