-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Wszczepienie implantu ślimakowego śwince morskiej
Wszczepienie implantu ślimakowego śwince morskiej
JoVE Journal
Medicine
This content is Free Access.
JoVE Journal Medicine
Cochlear Implantation in the Guinea Pig

Wszczepienie implantu ślimakowego śwince morskiej

Full Text
11,856 Views
09:56 min
June 15, 2018

DOI: 10.3791/56829-v

Clemens Honeder*1, Navid Ahmadi*1, Anne-Margarethe Kramer2, Chengjing Zhu1, Nodir Saidov1, Christoph Arnoldner1

1Department of Otorhinolaryngology, Head and Neck Surgery,Medical University of Vienna, 2Department of Biomedical Research,Medical University of Vienna

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Celem tego protokołu jest dostarczenie zwierzęcego modelu implantacji ślimakowej, który może być wykorzystany do odpowiedzi na wiele pytań badawczych. Potencjalne zastosowania obejmują ocenę interwencji farmaceutycznych lub stymulacji elektrycznej pod kątem korzystnego wpływu na progi słyszenia lub impedancję elektrod.

Ogólnym celem tej procedury chirurgicznej jest zapewnienie wiarygodnego i wszechstronnego zwierzęcego modelu implantacji ślimakowej przy użyciu świnki morskiej. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie implantów ślimakowych, takie jak to, czy interwencje farmaceutyczne lub nowo opracowane elektrody mają korzystny wpływ na zachowanie słuchu resztkowego lub impedancje elektrod. Główną zaletą świnki morskiej jest szybki dostęp do stosunkowo dużego ucha wewnętrznego, co skutkuje bezpiecznym, niezawodnym i wszechstronnym zwierzęcym modelem implantu ślimakowego.

W przypadku tej procedury ważne jest, aby mikroskop chirurgiczny, wiertło, płytka grzewcza i pulsoksymetr były umieszczone wokół eksperymentatora, co ułatwia obsługę podczas operacji. Ustaw poduszkę grzewczą na 38 stopni Celsjusza. Postępuj zgodnie z techniką sterylną.

Załóż czapkę, maskę i rękawiczki. Następnie ułóż wysterylizowane narzędzia chirurgiczne do wszczepienia implantu ślimakowego. Następnie przygotuj kawałek złotego drutu izolowanego teflonem o długości 3,5 centymetra, ostrożnie usuwając trzy milimetry izolacji z jednego końca i pięć milimetrów izolacji z drugiego końca.

Następnie przetnij drugi odcinek złotego drutu o długości 2,5 centymetra i usuń pięć milimetrów izolacji z obu końców. Następnie wysterylizuj oba druty alkoholem. Następnie znieczulij świnkę morską za pomocą koktajlu znieczulającego zgodnie z zaleceniami w protokole tekstowym.

Następnie ogol jego głowę i połóż go na powierzchni grzewczej. Następnie ostrożnie otwórz pysk świnki morskiej za pomocą małego laryngoskopu i usuń wszystkie resztki jedzenia z jamy ustnej za pomocą aspiracji. Następnie ostrożnie włóż rurkę żołądkową do przełyku, powoli dociskając do żołądka, aż poczujesz opór.

Sprawdź poziom nasycenia tlenem, aby upewnić się, że rurka nie znajduje się w tchawicy. Następnie wstrzyknąć mieszaninę soli fizjologicznej, 5% glukozy i enrofloksacyny w poduszeczkę tłuszczową szyi za pomocą igły o rozmiarze 23. Przygotuj pole operacyjne za pomocą naprzemiennych peelingów z jodu powidonu i 70% etanolu, a następnie ułóż zwierzę.

W przypadku stosowania przeciwbólowego lidokaina w razie potrzeby należy również ponownie dawkować zwierzęciu środek znieczulający. Rozpocznij operację od nacięcia skóry na dwa do trzech centymetrów, trzy do pięciu milimetrów za małżowiną uszną za pomocą skalpela. Aby poradzić sobie z krwawieniem, użyj kauteryzacji dwubiegunowej.

Następnie wykonaj badanie palpacyjne w celu wyeksponowania pęcherza słuchowego i użyj skalpela chirurgicznego numer 15 lub nożyczek chirurgicznych, aby ostrożnie przeciąć mięśnie w okolicy zausznej. Aby wypreparować mięśnie z pęcherza, delikatnie odepchnij mięśnie na bok i użyj retraktora, aby odsłonić całą długość nacięcia, aby uzyskać nieograniczony dostęp do pęcherza. Teraz użyj końcówki skalpela numer 15, aby zrobić dziurę w bulli.

Gdy kość jest perforowana, w razie potrzeby powiększ otwór, aby sprawdzić struktury ucha środkowego. Ustaw zwierzę w pozycji odgiętej i sprawdź otwór. Podstawowy zwój ślimaka i okrągła wnęka okienna muszą być widoczne.

Miej oko na poziom tlenu u zwierząt, gdy są w pozycji odgiętej. Aby kontynuować, ustaw zwierzę na brzuchu i odsłoń wierzchołek za pomocą prostokątnego nacięcia. Następnie usuń skórę po wycięciu, rozetnij okostną i oczyść okostną za pomocą skalpela.

Następnie zrób mały haczyk na odsłoniętym trzymilimetrowym końcu 3,5-centymetrowego drutu. Następnie poprowadź drugi koniec złotego drutu podskórnie do wierzchołka. Przez cewnik do żył obwodowych o rozmiarze 18 za pomocą mikrokleszczy.

Używając drugiej pary mikrokleszczyków, ostrożnie umieść haczykowaty koniec drutu w uchu środkowym. Następnie odchyl głowę zwierzęcia, aby uwidocznić obszar okrągłej niszy okiennej przez pęcherzyk i zaczep złoty drut o kościstą wypukłość za pomocą mikrokleszczyków. Teraz, utrzymując delikatne napięcie na złotym drucie, przymocuj go do krawędzi czaszki pęcherzowej za pomocą 10 do 15 mikrolitrów cyjanoakrylanu dostarczonego z igły o rozmiarze 27.

Pomiary linii bazowej można teraz wykonywać ze złotego drutu. Następnie, aby zamontować elektrodę, ustaw zwierzę w pozycji leżącej. I za pomocą wiertła do zadziorów o średnicy jednego milimetra wykonaj dwa otwory jeden milimetr przed szwem lambda.

Nie uszkadzaj opony twardej. Następnie wkręć implant w otwory, aby związać złącze elektrody. Teraz użyj cewnika do żył obwodowych o rozmiarze 18, aby poprowadzić elektrodę od łącznika do pęcherza w warstwie tkanki jak najbliżej czaszki.

Następnie zapakuj od 0,5 do 0,7 mililitra półpłynnego cementu dentystycznego między za pomocą szpatułki i umieść łącznik elektrody między. Utrzymuj łącznik stabilnie na miejscu, podczas gdy cement dentystyczny twardnieje. Gdy zwierzę przesunie się na boki, postępuj ostrożnie, wiercąc ślimak w odległości jednego milimetra od okrągłego okienka.

Wiercić za pomocą diamentowego frezu o średnicy 0,5 milimetra przy prędkości 5000 obr./min. Następnie ostrożnie włóż elektrodę na cztery milimetry do błony bębenkowej skali. Następnie wyjmij elektrodę i powtórz wkładanie.

Następnie nałóż cyjanoakrylan w celu zabezpieczenia elektrody. Stabilna implantacja zapewni większe przesunięcie progu słyszenia. Dlatego ważne jest, aby ustabilizować ramię służące do wkładania elektrody do stołu, aby zminimalizować prawdopodobieństwo niepożądanych szarpnięć.

Następnie zamyka się pęcherzykową skórę około 0,3 mililitra cementu dentystycznego. Należy unikać przemieszczania się cementu dentystycznego do pęcherza. Następnie zamknij nacięcie zauszne za pomocą szwów wchłanialnych 5-0.

Następnie obróć zwierzę do pozycji leżącej. Następnie użyj kleszczy, aby chwycić tylną krawędź prostokątnego nacięcia na wierzchołku. A nożyczkami wykonaj dwucentymetrowy podskórny tunel w szyi zwierzęcia.

Przez tunel wszczepij 2,5-centymetrowy złoty drut za pomocą kleszczy. Umieść koniec z mniej odsłoniętym przewodem na wyznaczonym styku złącza, a następnie połączenie. Następnie okrągłą elektrodę wnęki okiennej do odpowiedniego pinu złącza.

Po zakończeniu nałóż więcej cementu dentystycznego, aby całkowicie pokryć izolowane kołki i elektrodę. Na tym kończy się implantacja. Progi CAP swoiste dla częstości przedoperacyjnej i pooperacyjnej u prezentowanego zwierzęcia były prawie niezmienione w zakresie niskich częstotliwości.

Natomiast przesunięcie progu o około 25 do 30 decybeli osiągnięto w obszarze wysokiej częstotliwości, zaczynając od ośmiu kiloherców. Reakcja ciała obcego na wszczepioną elektrodę może się znacznie różnić. Może nie być widocznej reakcji lub duży obszar błony bębenkowej scala może zostać wypełniony tkanką zwłóknieniową.

Możliwe jest nawet złamanie blaszki spiralnej kostnej podczas wprowadzania elektrody CI. W tym przypadku złamanie spowodowało utratę komórek spiralnego zwoju, zwłóknienie i osteogenezę w przewodzie przedsionkowym oraz utratę narządu Cortiego. Takie złamania mogą wyjaśniać wyższe niż oczekiwano przesunięcia progowe u niektórych zwierząt.

Po opanowaniu tej techniki można ją wykonać w dwie i pół godziny, jeśli zostanie wykonana prawidłowo. Jeśli wykonywane są śródoperacyjne pomiary słuchu, czas potrzebny na całą procedurę może się znacznie wydłużyć. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak wykonać implant ślimakowy u świnki morskiej.

Korzystając z tego modelu zwierzęcego, możesz odpowiedzieć na różne pytania badawcze w tej dziedzinie.

Explore More Videos

Słowa kluczowe: Implantacja ślimakowa świnka morska model zwierzęcy ucho wewnętrzne zabieg chirurgiczny technika implantacji ślimakowej złoty drut izolowany teflonem znieczulenie sól fizjologiczna glukoza enrofloksacyna lidokaina kauteryzacja dwubiegunowa pęcherz słuchowy obszar zauszny

Related Videos

Chirurgiczna indukcja kropli endolimfatycznych przez obliterację przewodu endolimfatycznego

11:49

Chirurgiczna indukcja kropli endolimfatycznych przez obliterację przewodu endolimfatycznego

Related Videos

11.9K Views

Implantacja podtwardówkowa miękkiej matrycy elektrokortykograficznej do rejestracji elektrofizjologii kory mózgowej u świnek miniaturowych

04:00

Implantacja podtwardówkowa miękkiej matrycy elektrokortykograficznej do rejestracji elektrofizjologii kory mózgowej u świnek miniaturowych

Related Videos

614 Views

Operacja wszczepienia implantu ślimakowego i elektrycznie wywołane nagrania słuchowej odpowiedzi pnia mózgu u myszy C57BL/6

09:06

Operacja wszczepienia implantu ślimakowego i elektrycznie wywołane nagrania słuchowej odpowiedzi pnia mózgu u myszy C57BL/6

Related Videos

14.9K Views

Implantacja plastrów sercowo-mięśniowych pochodzących z hiPSC po urazie mięśnia sercowego w modelu świnki morskiej

07:03

Implantacja plastrów sercowo-mięśniowych pochodzących z hiPSC po urazie mięśnia sercowego w modelu świnki morskiej

Related Videos

7.8K Views

Zrewidowane podejście chirurgiczne indukujące hydrops endolymfatyczny u świnki morskiej

06:05

Zrewidowane podejście chirurgiczne indukujące hydrops endolymfatyczny u świnki morskiej

Related Videos

6.6K Views

Miniaturowa świnia: duży model zwierzęcy do badań nad implantami ślimakowymi

06:16

Miniaturowa świnia: duży model zwierzęcy do badań nad implantami ślimakowymi

Related Videos

3.7K Views

Pupilometria do oceny czucia słuchowego u świnek morskich

09:25

Pupilometria do oceny czucia słuchowego u świnek morskich

Related Videos

2.4K Views

Implantacja matrycy podtwardówkowej miękkiej elektrokortykografii (ECoG) i długotrwała rejestracja kory mózgowej u świnek miniaturowych

08:30

Implantacja matrycy podtwardówkowej miękkiej elektrokortykografii (ECoG) i długotrwała rejestracja kory mózgowej u świnek miniaturowych

Related Videos

3.9K Views

Eksplantacja membrany z okrągłym oknem świnki morskiej do badań ex vivo

05:14

Eksplantacja membrany z okrągłym oknem świnki morskiej do badań ex vivo

Related Videos

1.2K Views

Technika przewlekłego okna czaszkowego do powtarzających się zapisów korowych podczas znieczulenia u świń

07:19

Technika przewlekłego okna czaszkowego do powtarzających się zapisów korowych podczas znieczulenia u świń

Related Videos

560 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code