Name: Skuteczność odpędzania powietrznego u dwóch ryb łososiowatych: pstrąga tęczowego (Oncorhynchus mykiss) i pstrąga potokowego (Salmo trutta morpha fario) (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-09-16T13:00:00.000+00:00
Duration: 3 min 50 s
Description: Poznaj metodę odpędzania powietrznego jaj ryb łososiowatych u pstrąga tęczowego i potokowego. Technika ta zwiększa potencjał zapłodnienia i poprawia zarządzanie hodowlą bez uszkodzeń jaj.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Prezentowane badanie było wspierane przez Projekt "Pneumatyczna metoda strippingu ryb - możliwe zastosowanie, wpływ na jakość i ilość gamet oraz dobrostan ryb" (akronim: PNEUFISH) finansowany w ramach "Programu Operacyjnego Rozwój Sektora Rybołówstwa i Obszarów Przybrzeżnych 2007-2013" (OR-61724-OR1400001/10), środki przeznaczone na Instytut Rozrodu Zwierząt i Badań Żywności Polskiej Akademii Nauk, Olsztyn, Polska, przy wsparciu Biura COST (Food and Agriculture COST Action FA1205: AQUAGAMETE). Chcielibyśmy podziękować Stanleyowi Ifeanyi Ugwu za ogromne wsparcie w redagowaniu języka angielskiego. Podziękowania należą się również producentom animacji "Studio Filmowe Ruchome Obrazki".

Procedury zostały przeprowadzone zgodnie z Lokalną Komisją ds. Etyki Doświadczeń na Zwierzętach w Olsztynie, Polska.
1.Przygotowanie sprzętu
<ol>
	<li>Użyć strzykawki i igły do wstrzyknięcia gazu do jamy ciała ryby.</li>
	<li>Ustaw ciśnienie gazu na 0,5 bara i utrzymuj to ciśnienie poniżej 1 bara przez cały czas.</li>
	<li>Kontroluj przepływ powietrza. W przypadku ryb łososiowatych 1,5 l/min jest najbardziej efektywną prędkością wysysania gazów. Utrzymuj optymalną prędkość, ponieważ wyższa prędkość może nie doprowadzić do uzyskania wszystkich jaj, podczas gdy mniejsza prędkość może niepotrzebnie wydłużyć procedurę.</li>
	<li>Połączyć strzykawkę z przykręcaną igłą (o średnicy 0,8-1,2 mm), aby uniknąć odklejenia się igły spowodowanego ciśnieniem gazu.</li>
</ol>
2. Tarło powietrzne
<ol>
	<li>Znieczulić rybę 0,2% propycyną. Umieść rybę w łaźni wodnej z 0,2% proppiscyną i poczekaj, aż ryba przestanie reagować.</li>
	<li>Ostrożnie wysusz przed tarłem, wycierając suchą bawełnianą szmatką.</li>
	<li>Ułóż rybę na pochyłym łóżku pod kątem około 35-40°, bokiem ogonem do dołu. Delikatnym pchnięciem odwłoka ryby sprawdź wypływ jaj z dróg rodnych. Jeśli jaja nie są obecne, ryby nie powinny być tarło.</li>
	<li>Umieść pojemnik pokryty siatką poniżej brodawki rybnej, aby zebrać jaja.</li>
	<li>Szybko wbić igłę poniżej płetw brzusznych.</li>
	<li>Swobodnie usuwaj jaja za pomocą gazu, aż z ciała ryby zostaną usunięte tylko pojedyncze jaja.</li>
	<li>Delikatnie masuj brzuch, aby usunąć nadmiar gazu z ciała ryby.</li>
	<li>Po tarle delikatnie przenieś rybę do zbiornika z przepływem wody. Ryby wypuszczone do zbiornika po tarle powietrznym mogą początkowo pływać na powierzchni wody. Po kilku minutach ryba uwalnia pozostały gaz podczas pływania i zaczyna normalnie pływać. 
	UWAGA: Uzyskane jaja są bardzo czyste i wolne od zanieczyszczeń krwią lub kałem.</li>
</ol>

<ol><li>Nelson, J. S. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aNelson%2C+JS+%22Fishes+of+the+World%22">Fishes of the World</a>. , 4th, JohnWiley and Sons, Inc. Hoboken, NJ, USA. (2006).</li>
<li>García-Marín, J. L., Sanz, N., Pla, C. <a target="_blank" href="https://onlinelibrary.wiley.com/doi/pdf/10.1111/j.1523-1739.1998.96133.x">Proportions of native and introduced brown trout in adjacent fished and unfished Spanish rivers.</a> Conservation Biology. 12, 313-319 (1998).</li>
<li>Dietrich, G. J., Wojtczak, M., Slowinska, M., Dobosz, S., Kuzminski, H., Ciereszko, A. <a target="_blank" href="https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0044848607005716">Broken eggs decrease pH of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) ovarian fluid.</a> Aquaculture. 273, 748-751 (2007).</li>
<li>Zurbuch, P. E. <a target="_blank" href="https://onlinelibrary.wiley.com/doi/abs/10.1577/1548-8640%281965%2927%5B237%3AASFEFR%5D2.0.CO%3B2">A structure for easy fish recovery during drainage of an impoundment.</a> Progressive FishCulturist. 27, 237-238 (1965).</li>
<li>Cejko, B. I., et al. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/309209076_Effects_of_different_stripping_methods_of_female_and_activation_medium_on_fertilization_success_in_northern_pike_Esox_lucius">Effects of different stripping methods of female and activation medium on fertilization success in northern pike (Esox lucius).</a> Czech Journal of Animal Sciences. 10, 481-486 (2016).</li>
<li>Morisawa, S., Morisawa, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+potential+for+sperm+motility+by+bicarbonate+and+pH+in+rainbow+trout+and+chum+salmon%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Induction of potential for sperm motility by bicarbonate and pH in rainbow trout and chum salmon.</a> Journal of Experimental Biology. 136, 13-22 (1988).</li>
<li>Billard, R., Cosson, J., Perchec, G., Linhart, O. <a target="_blank" href="https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/004484869400231C">Biology of sperm and artificial reproduction in carp.</a> Aquaculture. 129, 95-112 (1995).</li>
<li>Iuchi, I., Ha, C. R., Sugiyama, H., Nomura, K. <a target="_blank" href="https://onlinelibrary.wiley.com/doi/abs/10.1046/j.1440-169X.1996.t01-2-00009.x">Analysis of chorion hardening of eggs of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss.</a> Development Growth and Differentiation. 38, 299-306 (1996).</li>
<li>Wojtczak, M. A., Kowalski, R. K., Dobosz, S., Goryczko, K., Kuźminski, H., Glogowski, J., Ciereszko, A. <a target="_blank" href="https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0044848604001346">Assessment of water turbidity for evaluation of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) egg quality.</a> Aquaculture. 242, 617-624 (2004).</li>
<li>Tabrizi, E. N., Khara, H., Nezami, S. A., Lorestani, R., Shamspour, S. <a target="_blank" href="http://agris.fao.org/agris-search/search.do?recordID=DJ2012086051">Broken Eggs Influence on Fertilization Capacity and Viability of Eggs, Turbidity and pH of Ovarian Fluid and Fertilization Water in the Endangered Caspian Brown Trout, Salmo Trutta Caspius.</a> International Journal of Biology. 3 (1), 161-166 (2011).</li>
<li>Carl, G. C. <a target="_blank" href="https://onlinelibrary.wiley.com/doi/abs/10.1577/1548-8640%281941%298%5B30%3ABOTBE%5D2.0.CO%3B2">Beware of the broken egg! A possible cause of heavy losses of salmon eggs.</a> Progresive Fish-Culturist. 53, 30-31 (1941).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Pneumatyczna metoda pobierania jaj od ryb, choć bardziej czasochłonna niż metoda tradycyjna (ręczne usuwanie jaj), może zapewnić wysoką jakość dojrzałych oocytów (ta praca). Jest to związane z niskim ryzykiem mechanicznego rozerwania jaj podczas stosowania tej procedury. Wysokie pH płynu jajnikowego, a także wzrost szybkości zapłodnienia świadczą o przydatności metody pneumatycznej. Ogólnie rzecz biorąc, metoda oddzielania jaj metodą powietrzną w procesie rozrodu ryb może być obiecującą opcją pod względem standaryzacji p...

Pstrąg tęczowy (Oncorhynchus mykiss) i pstrąg potokowy (Salmo trutta morpha fario) należą do rodziny łososiowatych (Salmonidae) 1. Produkcja tych dwóch gatunków w światowej akwakulturze szybko się rozwija ze względu na ich znaczenie handlowe i rekreacyjne. W Polsce produkcja ryb łososiowatych wynosi około 20 000 ton, przy czym dominującym gatunkiem jest pstrąg tęczowy. Z drugiej strony pstrąg potokowy stanowi główne źródło zasobów ryb słodkowodnych w Europie ze względu na jego wartość handlową w akwakulturze i znaczenie dla wędkarstwa. W wielu ekosystemach wodnych istnienie populacji pstrąga potokowego jest zagrożone. W rezultacie, sztuczne rozmnażanie zostało zastosowane do odtworzenia lokalnych populacji tego gatunku2.
Pstrąg tęczowy i pstrąg potokowy osiągają dojrzałość płciową zwykle w wieku trzech lat, przy czym samce dojrzewają o rok wcześniej niż samice1. W sztucznych warunkach jaja i plemniki pstrąga tęczowego i pstrąga potokowego są zwykle zbierane poprzez delikatny masaż brzucha. W praktyce, na małą skalę, metoda zbierania jaj metodą ręcznego usuwania jest opłacalna. Jednak na dużą skalę metoda ręcznego usuwania izolacji może być pracochłonna i wyczerpująca. W rezultacie technika ta może skutkować rozbiciem jaj z powodu zmęczenia pracowników wylęgarni. Pękanie komórek jajowych często prowadzi do spadku pH płynu jajnikowego i uwalniania żółtka jaja, co negatywnie wpływa na zapłodnienie jaj3. Co więcej, ta tradycyjna metoda pobierania jaj (wielokrotne uciskanie odwłoka) może również powodować śmiertelność stad wylęgowych spowodowaną infekcją skóry związaną z pogorszeniem bariery ochronnej śluzu. 
Pneumatyczna metoda zbierania jaj została po raz pierwszy użyta w Australii w 1957 roku4. Metoda opiera się na wstrzykiwaniu gazów (powietrza, azotu lub tlenu) do jamy ciała w celu wydalenia jaj za pomocą ciśnienia gazu. Ta szybka i łatwa technika została z powodzeniem zastosowana u ryb łososiowatych bez żadnych negatywnych skutków ubocznych dla fish4. Ostatnio metoda ta została zastosowana u dzikich gatunków (szczupak północny, Esox lucius) do zbierania dojrzałych jaj w sztucznych warunkach5. Wykazano, że jaja pozbawione powietrza miały wyższe wskaźniki zapłodnienia i wylęgu w porównaniu z jajami ogołoconymi ręcznie, niezależnie od roztworu użytego do zapłodnienia (roztwór Woynarowicza, bufor Billarda lub woda z wylęgarni)5.
Głównym celem tego badania było przetestowanie pneumatycznej metody zbierania ikry u pstrąga tęczowego i potokowego w porównaniu z tradycyjną metodą ręcznego strippingu. Porównano skuteczność obu metod (ilość pozyskanych jaj i czas pobrania, jakość gamet (pH płynu jajnikowego), a także wskaźnik wylęgu i śmiertelność po tarle).

<table><tbody><tr><td>Glicyna czysta P.A.</td><td>AVANTOR</td><td>527560117</td><td>bufor aktywujący plemniki Baza</td></tr><tr><td>Trizma Bufor</td><td>aktywujący plemniki</td><td>Sigma Aldrich</td><td>T1503</td></tr><tr><td>Bioodczynnik chlorku sodu</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S5886</td><td>bufor aktywujący plemniki</td></tr><tr><td>Bezwodny chlorek wapnia</td><td>Sigma Aldrich</td><td>C4901</td><td>bufor aktywujący plemniki</td></tr><tr><td>Propiscyna (0,2% roztwór etomidatu)</td><td>IRS Olsztyn, Polska</td><td>nie wskazano</td><td></td></tr><tr><td>kompresora</td><td>Thomas&nbsp; Sheboigan WI Stany Zjednoczone&nbsp;</td>Zawór redukcyjny 070800001882 <td></td><td>DT/SR</td></tr><tr><td></td><td>Camozzi&nbsp;</td>Wąż powietrzny <td>cRJUS U7J</td><td></td></tr><tr><td></td><td>ZEC T.P.U.</td><td>&nbsp; SH.98&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>syrgine</td><td>EFD</td><td>7012118</td><td></td></tr><tr><td>Etap tarła w powietrzu</td><td>Biopasz, Polska</td><td>PNEU001</td><td></td></tr><tr><td>Elektroda Orion Ross Ultra</td><td>Thermo Scientific, Waltham, MA, USA</td><td>8102BNUWP</td><td></td></tr></tbody></table>

skuteczność odpędzania powietrznego u dwóch ryb łososiowatych: pstrąga tęczowego (oncorhynchus mykiss) i pstrąga potokowego (salmo trutta morpha fario)

Effectiveness of the Air Stripping in Two Salmonid Fish, Rainbow Trout (Oncorhynchus Mykiss) and Brown Trout (Salmo Trutta Morpha fario)

Zbieranie jaj jest jedną z najważniejszych procedur podczas rozmnażania ryb w wylęgarniach łososiowatych. Klasyczne metody polegają na zastosowaniu masażu dłoni na brzuchu ryb w celu wydalenia jaj. Alternatywna metoda wykorzystuje ciśnienie gazu wstrzykiwanego do jamy ciała, co powoduje późniejsze uwolnienie jaj. Uważa się, że metoda ta ma mniejszy negatywny wpływ zarówno na dobrostan, jak i jakość jaj wylęgowych. W niniejszym artykule porównano wyniki metod odpędzania powietrznego i ręcznego w odniesieniu do rocznej przeżywalności oraz ilości i jakości ikry u dwóch ryb łososiowatych: pstrąga tęczowego (Oncorhynchus mykiss) i pstrąga potokowego (Salmo trutta morpha fario). Nasze wyniki wskazują, że stripping powietrzny przyniósł lepszą jakość ikry i wyższą roczną przeżywalność pstrąga tęczowego. Ponadto stripping powietrzny skutkował niższą śmiertelnością niż w grupie poddanej strippingowi ręcznemu (25% vs. 35%). pH i szybkość wylęgu w grupie odizolowanej ręcznie były niższe niż w grupie pozbawionej powietrza. W przypadku pstrąga potokowego jakość ikry uzyskanej zarówno metodą ręczną, jak i metodą pasowania powietrznego była podobna; Jednak roczne straty ryb były wyższe w grupie ryb pozbawionych powietrza (15% w porównaniu do 0% w grupie ryb odrywanych ręcznie). Chociaż korzyści płynące z metody odpędzania powietrznego w porównaniu z usuwaniem ręcznym pod względem jakości jaj mogą nie być obserwowane w przypadku wszystkich gatunków łososiowatych, procedura oddzielania powietrznego może być obiecującą opcją do zastosowania w wylęgarniach, ponieważ zapewnia wysoki poziom powtarzalności i wydajności.

Dojrzałe osobniki obu płci pstrąga tęczowego (wiek 2+, 170 ± 328 g) oraz pstrąga potokowego (wiek 3+, 190 ± 435 g) pozyskano z Salmonid Fish Hatchery (Rutki-Żukowo, Instytut Rybactwa Śródlądowego w Olsztynie, Polska). Samce i samice umieszczono w oddzielnych zbiornikach o objętości około 5 m³3Temperatura wody wynosiła 12±1 °CPrzed manipulacją ryby znieczulono 0,2% roztworem Propiscin. Ryby podzielono na dwie grupy. Część z nich poddano tradycyjnej metodzie pozyskiw...

Głównym celem tego badania jest standaryzacja i przetestowanie metody pneumatycznej (air stripping) zbierania jaj u pstrąga tęczowego i pstrąga potokowego. Metoda ta pozwala na skuteczne i proste pobranie jaj bez konieczności wykonywania masażu brzucha ryb.

Skuteczność odpędzania powietrznego u dwóch ryb łososiowatych: pstrąga tęczowego (Oncorhynchus mykiss) i pstrąga potokowego (Salmo trutta morpha fario)

Egg collection is one of the most crucial procedures during fish reproduction in salmonid hatcheries. Classic methods involve the use of hand massage on ...

Usuwanie ikry z powietrza przez powietrze, skuteczność procedury i wpływ na zarządzanie stadami lęgowymi u dwóch ryb łososiowatych, pstrąga tęczowego i pstrąga potokowego. Cześć, nazywam się Radosław Kowalski. Jesteśmy z Instytutu Rozrodu Zwierząt i Badań Żywności Polskiej Akademii Nauk w Olsztynie.Pragniemy przedstawić Państwu metodę tarła powietrznego ryb łososiowatych. Ręczne odpędzanie jest tradycyjną procedurą tarła u ryb. Procedura ta może spowodować ręczne uszkodzenie jaj, co skutkuje niższym potencjałem zapłodnienia jaj.Alternatywna metoda wykorzystuje ciśnienie gazu do zubożenia jaj z ciała ryby. Ta metoda nazywa się tarłem powietrznym. Tarło powietrzne to metoda, w której ikra ryb jest zbierana bez masowania brzucha ryby.Strzykawka i igła służą do wstrzykiwania gazu do jamy ciała ryby. Usuwanie ikry ryb z powietrza. W tej procedurze ciśnienie gazu powinno być kontrolowane, a najlepszy stan jest utrzymywany, gdy jego wartość jest poniżej jednego bara.Należy również kontrolować przepływ powietrza. W przypadku ryb łososiowatych półtora litra na minutę to efektywna prędkość wyczerpywania gazów. Optymalna prędkość powinna być utrzymana, ponieważ wyższa prędkość może nie doprowadzić do uzyskania wszystkich jaj, podczas gdy mniejsza prędkość może niepotrzebnie wydłużyć procedurę.Strzykawkę należy połączyć z przykręcaną igłą, aby uniknąć odklejania się igły spowodowanego ciśnieniem gazu. Ryby należy znieczulić i dokładnie wysuszyć przed tarłem. Rybę umieszcza się na pochyłym łóżku pod kątem około 35 do 40 stopni.Igłę należy szybko wprowadzić poniżej płetw brzusznych. Jaja są swobodnie usuwane przez gaz, aż do momentu, gdy z ciała ryby zostaną usunięte tylko pojedyncze jaja. Delikatny masaż brzucha może pomóc w usunięciu nadmiaru gazu z ciała ryby.Po tarle ryba jest delikatnie przenoszona do zbiornika z przepływem wody. Ryby wypuszczane do zbiornika po tarle powietrznym mogą początkowo pływać na powierzchni wody. Po kilku minutach ryba uwalnia pozostały gaz podczas pływania i zaczyna normalnie pływać.Uzyskane jaja są bardzo czyste i wolne od zanieczyszczeń krwią lub kałem. Wyniki. Czas zbierania jaj metodą ręcznego usuwania jaj był krótszy niż w przypadku oddzielania powietrznego u obu gatunków. Metoda oddzielania nie miała wpływu na całkowitą objętość jaj uzyskanych ani metodą ręczną, ani metodą odpędzania powietrznego.Płyn jajnikowy u pstrąga tęczowego po ręcznym strippingu był niższy niż po strippingu powietrznym. Wskaźnik wylęgu pstrąga tęczowego był również znacznie wyższy po strippingu powietrznym. Wnioski, stripping powietrzny nie był szybszy niż metoda strippingu ręcznego.Odpędzanie powietrzem było korzystne dla jakości ikry pstrąga tęczowego, ale nie dla ikry pstrąga potokowego. Ponieważ do przeprowadzenia procedury oddzielania powietrzem nie są wymagane żadne specjalne umiejętności, podobną ilość i jakość jaj mogą uzyskać zarówno wykwalifikowani, jak i niewykwalifikowani pracownicy wylęgarni. Procedura oddzielania powietrznego jest obiecującą opcją dla nowych wylęgarni poszukujących procedury zbierania jaj charakteryzującej się wysokim poziomem powtarzalności i wydajności, a także niewielkim lub zerowym doświadczeniem operatorów.

effectiveness-air-stripping-two-salmonid-fish-rainbow-trout

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Biologia rozwojowa

Życie większości ryb opiera się na pływaniu. Niniejszy protokół opisuje techniki rejestrowania różnych sposobów pływania dostępnych dla pojedynczych osobników oraz ławic ryb, a także zawiera mierniki związane z fizjologią i zachowaniem podczas pływania.

Ocena wydajności pływania u ryb

Przedstawiono technikę laboratoryjnego szacowania efektywności transferu troficznego netto kongenerów polichlorowanego bifenylu (PCB) do ryb rybożernych z ich ofiary. Aby zmaksymalizować zastosowanie wyników laboratoryjnych w terenie, ryby rybożerne powinny być karmione rybami drapieżnymi, które są zwykle spożywane na polu.

Laboratoryjne oszacowanie efektywności transferu troficznego netto kongenerów PCB do pstrąga jeziorowego (Salvelinus namaycush) z jego ofiary

Mierzenie wpływu zanieczyszczeń środowiska na zachowanie ryb jest często subiektywne i trudne, szczególnie gdy mamy do czynienia z subletalnymi punktami końcowymi. Opisujemy metody, w tym technologię wideo, do ilościowego określania zachowania pływackiego jesiotra białego (Acipenser transmontanus) we wczesnym stadium życia podczas i po 96-godzinnej ostrej ekspozycji na różne stężenia miedzi.

Kwantyfikacja zachowań ryb podczas pływania w odpowiedzi na ostre narażenie na wodną zawartość miedzi przy użyciu wspomaganego komputerowo wideo i cyfrowej analizy obrazu

Związki zaburzające funkcjonowanie układu hormonalnego (EDC) stanowią poważne zagrożenie dla środowiska wodnego. Miejskie oczyszczalnie ścieków w znacznym stopniu przyczyniają się do estrogenowej siły działania wód powierzchniowych. Przedstawiona w artykule metodologia pozwala na ocenę skuteczności i przydatności procesów oczyszczania ścieków w odniesieniu do usuwania EDC.

Wykorzystanie zestawu metod chemicznych i ekotoksykologicznych do oceny skuteczności procesów oczyszczania ścieków w celu usunięcia siły działania estrogenów

To badanie obejmuje metody mające na celu ujawnienie wpływu na modelowego gospodarza ryb po zmianie składu społeczności mikrobiomu skóry i jelit przez antybiotyk.

Badanie fenotypów gospodarza w Gambusia affinis po leczeniu antybiotykami

Ten protokół opisuje użycie wymazów z miski olejowej i analizy osadu w systemach danio pręgowanego, co prowadzi do zwiększenia wykrywalności w porównaniu do samego użycia wartowników do wykrywania patogenów, takich jak Aeromonas hydrophila, Mycobacterium spp. i Pseudocapillaria tomentosa. Zaproponowano również system monitorowania jaj P. tomentosa w kwarantannie.

Badania przesiewowe środowiskowe Aeromonas hydrophila, Mycobacterium spp. i Pseudocapillaria tomentosa w systemach danio pręgowanego

W tej pracy opisujemy ostry, przewlekły i wielopokoleniowy test biologiczny, aby zbadać wpływ pojedynczych i połączonych stresorów na turkusową karpię Nothobranchius furzeri. Protokół ten ma na celu badanie cech historii życia (śmiertelność, wzrost, płodność, waga) i krytycznego maksimum termicznego.

Protokół badania ostrej i przewlekłej ekotoksyczności turkusowej Killifish Nothobranchius furzeri

Ten artykuł szczegółowo wyjaśnia systematyczne podejście do oceny dostępności mikrominerałów w łososiu atlantyckim. Metodologia obejmuje narzędzia i modele o rosnącej złożoności biologicznej: (1) analizę specjacji chemicznej, (2) rozpuszczalność in vitro, (3) badania absorpcji w liniach komórkowych oraz (4) badania in vivo na rybach.

Ocena dostępności minerałów w paszach dla ryb przy użyciu metod uzupełniających zademonstrowanych na przykładzie w łososiu atlantyckim

Ta praca ma na celu ocenę i przegląd procedury biologicznego testu śmiertelności Artemia salina, również identyfikowanej jako test śmiertelności krewetek solankowych. Ta prosta i tania metoda dostarcza informacji na temat ogólnej toksyczności (traktowanej jako wstępna ocena toksyczności) próbek, a mianowicie produktów naturalnych.

Test biologiczny śmiertelności przy użyciu Artemia salina L.

Ten protokół przedstawia w pełni zautomatyzowany przepływ pracy do ekstrakcji geosminy i 2-metyloizoborneolu z wody i bogatych w lipidy tkanek ryb. Metoda pozwala na wczesne wykrycie tych cząsteczek, zanim osiągną one progi zapachowe. Przedstawiono reprezentatywne dane z otoczenia akwakultury.

Ekstrakcja i wykrywanie geosminy i 2-metyloizoborneolu w wodzie i rybach przy użyciu sond do ekstrakcji sorpcyjnej o dużej pojemności i GC-MS

Poznaj metodę odpędzania powietrznego jaj ryb łososiowatych u pstrąga tęczowego i potokowego. Technika ta zwiększa potencjał zapłodnienia i poprawia zarządzanie hodowlą bez uszkodzeń jaj.

Skuteczność odpędzania powietrznego u dwóch ryb łososiowatych: pstrąga tęczowego (Oncorhynchus mykiss) i pstrąga potokowego (Salmo trutta morpha fario) (Wideo) | JoVE Journal

Skuteczność odpędzania powietrznego u dwóch ryb łososiowatych: pstrąga tęczowego (Oncorhynchus mykiss) i pstrąga potokowego (Salmo trutta morpha fario)

Przeglądaj więcej filmów