Name: Elektrofizjologia całych komórek pierwotnych hodowanych mysich komórek enterochromafinowych (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-09-26T13:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 4 s
Description: Poznaj elektrofizjologię całych komórek pierwotnych mysich komórek enterochromafinowych. Ta metoda umożliwia szczegółowe badanie pobudliwości komórek EC i mechanizmów uwalniania serotoniny w przewodzie pokarmowym.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Autorzy dziękują Pani Lyndsay Busby za pomoc administracyjną oraz Panu Robertowi Highetowi z Mayo Clinic Division of Engineering za zaprojektowanie i druk 3D wkładu do naczynia hodowlanego. Praca ta była wspierana przez NIH K08 do AB (DK106456), grant pilotażowy i wykonalność dla AB z Mayo Clinic Center for Cell Signaling in Gastroenterology (NIH P30DK084567) oraz nagrodę American Gastroenterological Association Research Scholar Award 2015 (AGA RSA) dla AB i NIH R01 dla GF (DK52766).

<ol><li>Rindi, G., Leiter, A. B., Kopin, A. S., Bordi, C., Solcia, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+%22normal%22+endocrine+cell+of+the+gut%3A+changing+concepts+and+new+evidences%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+the+New+York+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">The "normal" endocrine cell of the gut: changing concepts and new evidences.</a> Annals of the New York Academy of Sciences. 1014, 1-12 (2004).</li>
<li>Rogers, G. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrical+activity-triggered+glucagon-like+peptide-1+secretion+from+primary+murine+L-cells%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">Electrical activity-triggered glucagon-like peptide-1 secretion from primary murine L-cells.</a> The Journal of Physiology. 589, Pt 5 1081-1093 (2011).</li>
<li>Strege, P. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sodium+channel+NaV1.3+is+important+for+enterochromaffin+cell+excitability+and+serotonin+release%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Sodium channel NaV1.3 is important for enterochromaffin cell excitability and serotonin release.</a> Scientific Reports. 7 (15650), (2017).</li>
<li>Bellono, N. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enterochromaffin+cells+are+gut+chemosensors+that+couple+to+sensory+neural+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Enterochromaffin cells are gut chemosensors that couple to sensory neural pathways.</a> Cell. 170 (1), 185-198 (2017).</li>
<li>Alcaino, C., Knutson, K., Gottlieb, P. A., Farrugia, G., Beyder, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanosensitive+ion+channel+Piezo2+is+inhibited+by+D-GsMTx4%5BTitle%5D)+AND+%22Channels%22%5BJournal%5D)">Mechanosensitive ion channel Piezo2 is inhibited by D-GsMTx4.</a> Channels. 11 (3), 245-253 (2017).</li>
<li>Kim, M., Javed, N. H., Yu, J. G., Christofi, F., Cooke, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+stimulation+activates+Galphaq+signaling+pathways+and+5-hydroxytryptamine+release+from+human+carcinoid+BON+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Investigation%22%5BJournal%5D)">Mechanical stimulation activates Galphaq signaling pathways and 5-hydroxytryptamine release from human carcinoid BON cells.</a> Journal of Clinical Investigation. 108 (7), 1051-1059 (2001).</li>
<li>Modlin, I. M., Kidd, M., Pfragner, R., Eick, G. N., Champaneria, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+functional+characterization+of+normal+and+neoplastic+human+enterochromaffin+cells%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Clinical+Endocrinology+and+Metabolism%22%5BJournal%5D)">The functional characterization of normal and neoplastic human enterochromaffin cells.</a> The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 91 (6), 2340-2348 (2006).</li>
<li>Wang, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanosensitive+ion+channel+Piezo2+is+important+for+enterochromaffin+cell+response+to+mechanical+forces%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">Mechanosensitive ion channel Piezo2 is important for enterochromaffin cell response to mechanical forces.</a> The Journal of Physiology. 595 (1), 79-91 (2017).</li>
<li>Li, H. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distinct+cellular+origins+for+serotonin-expressing+and+enterochromaffin-like+cells+in+the+gastric+corpus%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Distinct cellular origins for serotonin-expressing and enterochromaffin-like cells in the gastric corpus.</a> Gastroenterology. 146 (3), 754-764 (2014).</li>
<li>Psichas, A., Tolhurst, G., Brighton, C. A., Gribble, F. M., Reimann, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mixed+primary+cultures+of+murine+small+intestine+intended+for+the+study+of+gut+hormone+secretion+and+live+cell+imaging+of+enteroendocrine+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Mixed primary cultures of murine small intestine intended for the study of gut hormone secretion and live cell imaging of enteroendocrine cells.</a> Journal of Visualized Experiments. (122), 55687(2017).</li>
<li>Raghupathi, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+unique+release+kinetics+of+serotonin+from+guinea-pig+and+human+enterochromaffin+cells%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">Identification of unique release kinetics of serotonin from guinea-pig and human enterochromaffin cells.</a> The Journal of Physiology. 591, Pt 23 5959-5975 (2013).</li>
<li>Nozawa, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TRPA1+regulates+gastrointestinal+motility+through+serotonin+release+from+enterochromaffin+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">TRPA1 regulates gastrointestinal motility through serotonin release from enterochromaffin cells.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (9), 3408-3413 (2009).</li>
<li>Reimann, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+and+functional+role+of+voltage+gated+cation+conductances+in+the+glucagon-like+peptide-1+secreting+GLUTag+cell+line%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">Characterization and functional role of voltage gated cation conductances in the glucagon-like peptide-1 secreting GLUTag cell line.</a> The Journal of Physiology. 563, Pt 1 161-175 (2005).</li>
</ol>

Pełne zrozumienie funkcji komórek EC wymaga wysokiej jakości metody hodowli pierwotnej w celu wygenerowania komórek do elektrofizjologii całych komórek. Pierwotne hodowle nabłonka przewodu pokarmowego były tradycyjnie trudne ze względu na niską przeżywalność. Łagodząc ten czynnik zakłócający, obecna metoda pozwala uzyskać hodowle pojedynczych komórek EC z jelita cienkiego lub grubego, które są w stanie przetrwać kilka dni.
Stwierdziliśmy, że następujące czynniki miały kluczowe znaczenie dla po...

Nabłonek przewodu pokarmowego (GI) to zróżnicowana społeczność składająca się z kilku typów komórek. Komórki enteroendokrynne stanowią około 1% wszystkich komórek nabłonka, a komórki enterochromafiniczne (EC) są największą populacją komórek enteroendokrynnych1. Ostatnie badania pokazują, że komórki enteroendokrynne2 i EC3,4 są elektrycznie pobudliwe. Jesteśmy zainteresowani zrozumieniem pierwotnej elektrofizjologii komórek EC. W związku z tym celem tego badania było ustalenie pierwotnych kultur komórkowych EC zoptymalizowanych pod kątem elektrofizjologii całych komórek.
Istniejące linie komórkowe EC, które produkują i wydzielają 5-HT (np. QGP-15, BON6, KRJ-17) i były używane do badania elektrofizjologii5,8 są zazwyczaj generowane z unieśmiertelnionych tkanek nowotworowych. Chociaż informacje uzyskane z tych linii komórkowych są cenne5,8, badania pierwotnej elektrofizjologii komórek są niezbędne do prawidłowego zrozumienia fizjologii komórek EC. Elektrofizjologia pierwotnych komórek EC wymaga izolacji i hodowli pojedynczych komórek nabłonkowych, co jest ograniczone przez niską żywotność kultur nabłonkowych.
Metoda hodowli przedstawiona w tym badaniu opiera się na transgenicznych myszach z fluorescencyjnie znakowanymi komórkami EC, takimi jak Tph1-CFP9, użyte w tym badaniu. Metoda optymalizuje mieszane pierwotne kultury nabłonkowe opracowane wcześniej2,10 dla elektrofizjologii pojedynczej komórki3. Poprzednie metody wykorzystywały kombinacje trypsyny/EDTA plus kolagenazy A lub EDTA i DTT do trawienia enzymatycznego i wykorzystywały gradienty gęstości do specyficznej izolacji i hodowli świnki morskiej11 i komórek EC szczura12. Niedawno organoidy jelitowe zostały wygenerowane i mechanicznie zakłócone do zapisów elektrofizjologicznych4. Hodowle wykorzystujące te metody dobrze nadają się do eksperymentów z uwalnianiem serotoniny, analizy RT-qPCR i, chociaż mogą być wykorzystane do elektrofizjologii, zależą od powodzenia czasochłonnego generowania organoidów, gradientów gęstości w celu identyfikacji komórek EC oraz zakłócających działanie trypsyny i EDTA na komórki. W przeciwieństwie do tego, opisany tutaj protokół ulepsza zabiegi enzymatyczne i mechaniczne, optymalizuje warunki hodowli i usprawnia procedury w celu wytworzenia pojedynczych i zdrowych komórek EC odpowiednich do wysokich standardów komórkowych potrzebnych do elektrofizjologii.
Ta metoda będzie przydatna dla naukowców, którzy chcą pracować nad pierwotnymi komórkami EC w mieszanych kulturach, a nie w kulturach unieśmiertelnionych, i chcą badać elektrofizjologię pojedynczych komórek. Jednak może okazać się mniej odpowiedni do badania populacji komórek, które wymagają sortowania lub długoterminowych hodowli, które wymagają przeżycia powyżej 72 godzin.

<table><tbody><tr><td>Naczynie hodowlane 100 mm x 15 mm</td><td>Corning (Falcon)</td><td>351029</td><td></td></tr><tr><td>Pipeta transferowa</td><td>Fisherbrand</td><td>13-711-7M</td><td></td></tr><tr><td>10 mL pipeta serologiczna</td><td>Corning (Falcon)&nbsp;</td><td></td><td></td>357551</tr><tr><td>50 ml stożkowy</td><td>corning (Falcon)&nbsp;</td><td></td><td></td>352098</tr><tr><td>15 ml Stożkowy</td><td>Corning (Sokół)&nbsp;</td><td></td><td></td>352097</tr><tr><td>1,000 ml Barierowe końcówki do pipet</td><td>Thermo Scientific (Art)</td><td>2079E</td><td>Zachowaj sterylność</td></tr><tr><td>Naczynia ze szklanym dnem MatTek</td><td>MatTek Corporation</td><td>P35G-1.5-14-C</td><td>Utrzymuj sterylne</td></tr><tr><td>kleszcze do mikropreparacji - bardzo cienkie, bardzo długie końcówki</td><td>Narzędzia do nauki</td><td>SB12630M</td><td></td></tr><tr><td>Nożyczki chirurgiczne - ostre</td><td>Nasco</td><td>14002-14</td><td></td></tr><tr><td>Nożyczki do mikropreparacji</td><td>Nasco</td><td>SB46568M</td><td></td></tr><tr><td>Monoject Hypo Needle, 21 G x 1" A, 100/BX</td><td>Covidien</td><td>8881250172</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; Tg (Tph1-CFP) 1Able / J Myszy</td><td>Jackson</td><td>Stock # 028366</td><td>Używaj myszy płci męskiej lub żeńskiej w wieku od 4 do 7 tygodni</td></tr><tr><td>Niemetalowe igły strzykawkowe Microfil (rozmiar 34, 67 mm)</td> <td>World Precision Instruments</td><td>MF34G-5</td><td></td></tr><tr><td>Parafilm "M" Folia laboratoryjna</td><td>Pechiney Opakowanie</td><td></td><td></td>z tworzywa sztucznego</tr><tr><td>R6101</td> Strzykawka <td>Dow Corning</td><td></td><td></td></tr><tr><td>6 ml ze zwykłą końcówką typu luer</td><td>Monoject</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Strzykawka 3 ml ze zwykłą końcówką typu luer</td><td>Monoject</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sprzęt do elektrofizjologii</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Amplifier</td><td>Urządzenia molekularne</td><td>Axopatch 200B</td><td></td></tr><tr><td>System akwizycji danych (daq)</td><td>Urządzenia molekularne</td><td>Digidata 1440A</td><td></td></tr><tr><td>Kondycjoner</td> <td>sygnałuUrządzenia molekularne</td><td>Oprogramowanie CyberAmp 320</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Urządzenia molekularne</td><td>pClamp 10.6</td><td></td></tr></tbody></table>

elektrofizjologia całych komórek pierwotnych hodowanych mysich komórek enterochromafinowych

Whole Cell Electrophysiology of Primary Cultured Murine Enterochromaffin Cells

Komórki enterochromafiniczne (EC) w nabłonku przewodu pokarmowego (GI) stanowią największą subpopulację komórek enteroendokrynnych. Jako wyspecjalizowane komórki czuciowe, komórki EC wyczuwają bodźce świetlne i przekształcają je w zdarzenia uwalniania serotoniny (5-hyroksytryptaminy, 5-HT). Jednak elektrofizjologia tych komórek jest słabo poznana, ponieważ są one trudne do hodowli i identyfikacji. Metoda przedstawiona w niniejszej pracy przedstawia pierwotne hodowle komórek EC zoptymalizowane pod kątem elektrofizjologii pojedynczych komórek. Protokół ten wykorzystuje reporter transgenicznego cyjanowego białka fluorescencyjnego (CFP) do identyfikacji mysich komórek EC w mieszanych kulturach pierwotnych, rozwijając podejście do uzyskiwania wysokiej jakości zapisów elektrofizjologii całych komórek w trybach cęgów napięcia i prądu.

Hodowle: 
Pierwotne mysie komórki nabłonkowe otrzymane z transgenicznego modelu Tph1-CFP przytwierdzają się do naczyń po 4 godzinach i są gotowe do eksperymentów fizjologicznych w przedziale od 24 do 72 h. Gdy warunki hodowli nie były zoptymalizowane, hodowla komórek nabłonkowych składała się z dużych skupisk, pływających szczątków komórkowych, uszkodzonych błon oraz słabego sygnału CFP w komórkach EC (Rysunek 1A). Hodowle...

Komórki enterochromafiniczne (EC) stanowią mały podzbiór komórek nabłonka przewodu pokarmowego. Komórki EC są elektrycznie pobudliwe i uwalniają serotoninę, jednak trudności w hodowli i identyfikacji komórek EC mają ograniczone badania fizjologiczne. Przedstawiona tutaj metoda ustanawia model hodowli pierwotnej, który można badać pojedyncze komórki EC za pomocą elektrofizjologii.

Elektrofizjologia całych komórek pierwotnych hodowanych mysich komórek enterochromafinowych

Enterochromaffin (EC) cells in the gastrointestinal (GI) epithelium constitute the largest subpopulation of enteroendocrine cells. As specialized sensory ...

Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania z zakresu neurobiologii jelitowej i fizjologii przewodu pokarmowego, takie jak: jakie są mechanizmy pobudliwości komórek enterochromafinowych i odpowiedzi na bodźce świetlne oraz jakie są mechanizmy uwalniania hormonów żołądkowo-jelitowych? Główną zaletą tej techniki jest to, że pozwala nam ona na szczegółowe badanie komórek enterochromafinowych przy użyciu technik jednokomórkowych, takich jak elektrofizjologia. Procedurę zademonstrują współautorzy Kaitlyn Knutson i Peter Strege, wybitni technolodzy, którzy opracowali te techniki.Aby rozpocząć tę procedurę, umieść sześciomililitrową igłę strzykawki wypełnioną lodowatym PBS w świetle wyekstrahowanego odcinka jelita. Użyj kleszczyków do mikrodysekcji, zaciśnij i uszczelnij jelita wokół igły strzykawki i delikatnie przepłucz sześć mililitrów PBS przez światło, aby spłukać wszelkie kały. Następnie odwróć tkankę jelitową, delikatnie przeplatając kleszcze mikrodyparacyjne przez światło, ściskając ścianę jelita i cofając tkankę proksymalnie do czubka kleszczy.Powtarzaj ten proces, aż segment znajdzie się na lewej stronie, ze światłem skierowanym na zewnątrz. Za pomocą nożyczek do mikro

whole-cell-electrophysiology-primary-cultured-murine-enterochromaffin

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Dysfunkcja kanału Kv jest związana z zaburzeniami rytmu serca. W celu zbadania mechanizmów molekularnych, które prowadzą do takich arytmii, stosujemy systematyczny protokół izolacji kardiomiocytów przedsionkowych i komorowych od myszy z nokautem podjednostki pomocniczej kanału Kv. Wyizolowane kardiomiocyty można następnie natychmiast wykorzystać do komórkowych badań elektrofizjologicznych, testów biochemicznych lub immunofluorescencyjnych (IF).

Izolacja i zapisy kanału Kv w kardiomiocytach przedsionkowych i komorowych myszy

Arginina-wazopresyna (AVP) kontroluje precyzyjne dostrojenie homeostazy wody w organizmie poprzez ułatwienie reabsorpcji wody przez główne komórki nerkowe. W tym miejscu przedstawiamy protokół hodowli pierwotnych komórek przewodu zbiorczego rdzenia wewnętrznego rdzenia szczura, odpowiednich do wyjaśnienia mechanizmów molekularnych leżących u podstaw reabsorpcji wody za pośrednictwem AVP.

Hodowla pierwotnych komórek przewodu rdzeniowego wewnętrznego rdzenia szczura

Prezentujemy protokół hodowli komórkowej do bezpośredniego badania neuronalnych i glejowych składników jelitowego układu nerwowego. Mieszana hodowla neuronów i glejów na szkiełkach nakrywkowych jest przygotowywana ze splotu mięśniowo-jelitowego dorosłej myszy, co daje możliwość zbadania funkcji poszczególnych neuronów i gleju za pomocą elektrofizjologii, immunohistochemii itp.

Preparat in vitro izolowanych neuronów jelitowych i gleju ze splotu mięśniowo-jelitowego dorosłej myszy

Ten film demonstruje protokół przeprowadzania jednowłóknistych zapisów elektrofizjologicznych na preparacie in vitro mysiego nerwu jelita grubego.

Metody in vitro Charakterystyka funkcjonalna zakończeń aferentnych jelita grubego myszy

Po usunięciu z organizmu, tkanka neuronalna jest bardzo podatna na wpływ warunków środowiskowych, co prowadzi do ostatecznej degradacji tkanki po 6 - 8 godzinach. Dzięki unikalnej metodzie inkubacji, która ściśle monitoruje i reguluje zewnątrzkomórkowe środowisko tkanki, żywotność tkanek może być znacznie przedłużona przez &gt;24 godziny.

Przedłużona inkubacja ostrej tkanki neuronalnej do elektrofizjologii i obrazowania wapnia

Ten protokół opisuje izolację i hodowlę mieszanych mysich komórek jelita cienkiego. Te pierwotne hodowle jelitowe umożliwiają badanie szlaków sygnałowych leżących u podstaw wydzielania peptydów jelitowych przy użyciu wielu technik.

Mieszane pierwotne hodowle mysiego jelita cienkiego przeznaczone do badania wydzielania hormonów jelitowych i obrazowania żywych komórek enteroendokrynnych

Prezentujemy protokół, który łączy izolację komórek i zapis z użyciem całego patch-clampu komórkowego w celu zmierzenia właściwości elektrycznych pierwotnych zdysocjowanych komórek nabłonkowych z najądrzy ogona szczura. Protokół ten pozwala na badanie właściwości funkcjonalnych pierwotnych komórek nabłonka najądrza w celu dalszego wyjaśnienia fizjologicznej roli najądrza.

Nagrania całokomórkowe patch-clamp izolowanych pierwotnych komórek nabłonka z najądrza

Opisujemy metodę przygotowania pojedynczych, świeżo wyizolowanych komórek mięśni gładkich wypieracza z próbek ludzkiego pęcherza moczowego, stosując dwuetapową procedurę enzymatyczną. Uzyskane żywotne komórki DSM można badać za pomocą różnych technik jednokomórkowych, w tym opisanej elektrofizjologii amfoterycyny-B patch-clamp, w celu ujawnienia właściwości fizjologicznych i farmakologicznych.

Przygotowanie i wykorzystanie świeżo wyizolowanych ludzkich komórek mięśni gładkich wypieracza do charakterystyki 9-fenantrolowych prądów kationowych

Prezentujemy metodologię izolacji mysich miocytów oraz sposób uzyskiwania śladów napięcia lub wapnia jednocześnie ze śladami skracania sarkomeru za pomocą fotometrii fluorescencyjnej z jednoczesnymi cyfrowymi pomiarami geometrii komórek.

Obrazowanie optyczne izolowanych mysich miocytów komorowych

Ten protokół opisuje technikę obrazowania konfokalnego do wykrywania trzech trybów fuzji w komórkach chromochłonnych nadnerczy bydlęcych. Te tryby fuzji obejmują: 1) fuzję bliską (zwaną również pocałunkiem i ucieczką), polegającą na otwieraniu i zamykaniu porów fuzyjnych, 2) fuzję pozostawaną, polegającą na otwieraniu porów fuzyjnych i utrzymywaniu otwartych porów, oraz 3) fuzję termokurczliwą, polegającą na kurczeniu się stopionych pęcherzyków.

Mikroskopia konfokalna do pomiaru trzech trybów dynamiki porów fuzyjnych w komórkach chromochłonnych nadnerczy

To badanie przedstawia protokół generowania monowarstw 2D organoidów wieprzowych pochodzących z jelita cienkiego i grubego. Wzrost tych monowarstw charakteryzuje się rosnącymi wartościami TEER, co wskazuje na solidną integralność nabłonka. Dodatkowo, te monowarstwy wykazują fizjologiczne reakcje wydzielnicze w eksperymentach w komorze Ussing po zastosowaniu forskoliny.

Dwuwymiarowe organoidy jelitowe świń odzwierciedlające fizjologiczne właściwości rodzimego jelita

Poznaj elektrofizjologię całych komórek pierwotnych mysich komórek enterochromafinowych. Ta metoda umożliwia szczegółowe badanie pobudliwości komórek EC i mechanizmów uwalniania serotoniny w przewodzie pokarmowym.

Elektrofizjologia całych komórek pierwotnych hodowanych mysich komórek enterochromafinowych

Przeglądaj więcej filmów