Name: Obrazowanie ultrasonograficzne aorty piersiowej i brzusznej u myszy w celu określenia wymiarów tętniaka (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-03-08T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 8 s
Description: Poznaj technikę ultrasonograficzną do pomiaru wymiarów tętniaka aorty piersiowej i brzusznej u myszy. Ta metoda zapewnia powtarzalne i dokładne wyniki obrazowania w badaniach kardiologicznych.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Praca badawcza autorów była wspierana przez National Heart, Lung, and Blood Institute of the National Institutes of Health pod numerami nagród R01HL133723 i R01HL139748 oraz American Heart Association SFRN in Vascular Disease (18SFRN33960001). H.S. jest wspierany przez stypendium podoktorskie AHA (18POST33990468). J.C. jest wspierany przez NCATS UL1TR001998. Wyłączną odpowiedzialność za treść tego manuskryptu ponoszą autorzy i niekoniecznie reprezentują one oficjalne poglądy National Institutes of Health.

Obrazowanie ultrasonograficzne u myszy jest wykonywane za zgodą University of Kentucky Institutional Animal Care and Use Committee (numer protokołu IACUC: 2018-2967). Podczas obrazowania myszy są znieczulane izofluranem 1%-3% obj./obj. i umieszczane na platformie grzewczej w celu zmniejszenia stresu proceduralnego i zapobieżenia hipotermii. Lubrykant do oczu stosuje się, aby zapobiec uszkodzeniom rogówki spowodowanym utratą odruchu mrugania podczas znieczulenia.
1. Ustawienia sprzętu
<ol>
	<li>Włącz ultrasonograf, platformę grzewczą i podgrzewacz do żelu (<silna klasa="xfig">Rysunek 1).</li>
	<li>Otwórz program ultrasonograficzny. Wprowadź informacje o badaniu, takie jak nazwa badania i informacje o myszy.</li>
	<li>Sprawdź parownik izofluranu i zbiornikO2. Jeśli zawartość jest niska, napełnij parownik izofluranem i/lub wymień go na nowy zbiornikO2.</li>
	<li>Podłącz filtry znieczulające do komory indukcyjnej i stożka nosowego.</li>
	<li>Otwórz odgałęzienie komory indukcyjnej.</li>
	<li>Włącz zbiornik O2.</li>
	<li>Przekręć pokrętłaO2 i izofluranu na parowniku anestezjologicznym odpowiednio na 1 l/min i 0% obj., aby napełnić komoręO2.</li>
</ol>
2. Przygotowanie myszy
<ol>
	<li>Umieść mysz w komorze indukcyjnej wypełnionejO2, aby zminimalizować niepożądane zmiany sercowo-naczyniowe spowodowane znieczuleniem.</li>
	<li>Włączyć parownik izofluranu (1,5%–2,5% obj./obj.).</li>
	<li>Potwierdź brak odruchu wycofania kończyn tylnych.</li>
	<li>Wyjmij mysz z komory i umieść jedną kroplę sterylnego lubrykantu okulistycznego w każdym oku.</li>
	<li>Przekieruj znieczulenie na stożek nosowy i zamknij przepływ do komory indukcyjnej.</li>
	<li>Połóż mysz grzbietowo na platformie grzewczej z nosem w stożku nosowym do znieczulenia.</li>
	<li>Nałóż krem do depilacji na klatkę piersiową lub brzuch za pomocą bawełnianego wacika. Zminimalizuj ilość kremu do depilacji, aby uniknąć podrażnień.</li>
	<li>Odczekaj 1 minutę, a następnie delikatnie zetrzyj cały krem i włosy.</li>
	<li>Przepłukać obszar ciepłą wodą i wytrzeć go do sucha, aby całkowicie usunąć krem.</li>
	<li>Nałóż kropki żelowe na każdy z czterech miedzianych przewodów na platformie.</li>
	<li>Przyklej każdą opuszkę łapy (dłońmi w dół) do przewodów w celu odczytów elektrokardiogramu (EKG). Zapewni to EKG i fizjologię układu oddechowego myszy podczas znieczulenia.</li>
	<li>Sprawdź, czy tętno mieści się w zakresie 450–550 uderzeń/min. Ponieważ znieczulenie wpływa na czynność serca, co może zmienić średnicę aorty, dostosuj szybkość podawania znieczulenia tak, aby częstość akcji serca mieściła się w odpowiednim zakresie.</li>
	<li>Nałóż wstępnie podgrzany żel ultradźwiękowy na przygotowane miejsce.</li>
	<li>Przymocuj sondę do uchwytu.</li>
	<li>Obróć platformę, aby uzyskać optymalne skanowanie i opuść sondę, aż zetknie się z żelem ultradźwiękowym.</li>
</ol>
3. Obrazowanie aorty piersiowej
<ol>
	<li>Przechyl platformę w dół na lewą stronę myszy.</li>
	<li>Umieść sondę na prawej krawędzi mostka myszy (<silna klasa="xfig">Rysunek 2A). Ustaw znacznik odniesienia na sondzie doogonowo. 
	nuta: Znacznik odniesienia na sondzie wskazuje kierunek sondy i jest zgodny z producentem na monitorze systemu ultrasonograficznego (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 2A-D). Kształt markera różni się w każdym systemie ultrasonograficznym.</li>
	<li>Użyj kolorowego Dopplera na aorcie piersiowej, aby potwierdzić przepływ krwi.</li>
	<li>Dostosuj stolik i kąt sondy, aby wyraźnie pokazać aortę (<silna klasa="xfig">Rysunek 3A,B). 
	nuta: Zastawka aortalna oraz tętnice innominalne i płucne mogą być używane do anatomicznych punktów orientacyjnych dla prawego widoku długiej osi przymostkowej. W związku z tym obrazy aorty z tego widoku mogą obejmować zastawkę aortalną oraz tętnice nienazwane i płucne w jednym kadrze (<silna klasa = "xfig">Rysunek 3A). Jeśli trudno jest uchwycić całą aortę wstępującą na jednym skanie, ze względu na patologie aorty, takie jak rozszerzenie aorty i krętość, obrazy należy wykonać osobno. Ponieważ rozdzielone obrazy mogą powodować niedoszacowanie wymiarów aorty, wymagane jest dokładne ustawienie stolika i sondy. Widok prawej osi długiej przymostkowej jest optymalny do obrazowania całej aorty wstępującej (<silna klasa="xfig">Rysunek 3C). Jednak często trudno jest uchwycić zatokę aorty w tym widoku, zwłaszcza w tętniakach aorty. Widok lewej osi długiej przymostkowej umożliwia uchwycenie od korzenia aorty do bliższej aorty wstępującej jako alternatywne podejście, chociaż widok ten nie może uchwycić łuku aorty w jednym kadrze (<silna klasa = "xfig">Rysunek 3C). Aby uzyskać widok z lewej osi długiej przymostkowej, umieść sondę na lewej krawędzi mostka (<silna klasa="xfig">Rysunek 2B). Stół montażowy jest płaski lub lekko przechylony w prawo od strony myszy. Pozostałe etapy procedury należy wykonać w taki sam sposób, jak w przypadku widoku z prawej osi długiej przymostkowej. Zalety i wady tych pozycji sond opisano w tabeli 2. Obrazy aorty muszą być rejestrowane konsekwentnie w prawej lub lewej osi długiej przymostkowej.</li>
	<li>Przytnij obraz ultradźwiękowy, aby zwiększyć liczbę klatek na sekundę, używając pokręteł do pomiaru głębi i szerokości obrazu.</li>
	<li>Zmień głębokość ogniskowej po grzbietowej stronie aorty wstępującej za pomocą pokrętła głębokości ogniskowej.</li>
	<li>Sprawdź parametry ultrasonograficzne. Ustawienia ultrasonograficzne dla tego protokołu opisano w Tabeli 1.</li>
	<li>Delikatnie przesuwaj sondę za pomocą pokrętła stage osi X i Y, aby uchwycić podłużny obraz aorty o największej możliwej średnicy.</li>
	<li>Przechowuj jedną pętlę cine.</li>
</ol>
4. Obrazowanie aorty brzusznej
<ol>
	<li>Umieść sondę poprzecznie, tuż poniżej mostka i wyrostka mieczykowatego (<silna klasa="xfig">Rysunek 2C). Znacznik odniesienia na sondzie powinien być skierowany w stronę prawej strony myszy. Aorta brzuszna powinna znajdować się obok żyły głównej dolnej i/lub żyły wrotnej (<silna klasa="xfig">Ryc. 3D).</li>
	<li>Wizualizuj aortę brzuszną za pomocą kolorowego Dopplera, aby potwierdzić pulsacyjny przepływ. 
	nuta: Jeśli kąt Dopplera jest prostopadły do przepływu krwi, w aorcie nie pojawi się kolorowy sygnał Dopplera. Oprócz kolorowego obrazowania dopplerowskiego, aortę brzuszną można odróżnić od żyły głównej i żyły wrotnej poprzez lekkie naciśnięcie sondy. Żyła główna i żyła wrotna są ściśliwe, natomiast aorta zachowuje swoją drożność.</li>
	<li>Przytnij obraz ultradźwiękowy, aby zwiększyć liczbę klatek na sekundę.</li>
	<li>Zmień głębokość ogniskowej na tylną ścianę aorty brzusznej.</li>
	<li>Przesuń sondę doogonowo, aby uwidocznić punkty rozgałęzień tętnic trzewnych i krezkowych górnych.</li>
	<li>Zlokalizuj prawą tętnicę nerkową i użyj jej jako punktu orientacyjnego. 
	nuta: Ponieważ tętniaki aorty brzusznej mogą prowadzić do skrętności aorty, dostosuj kąt sondy, aby obrazować aortę brzuszną prostopadle. W celu kontroli wewnętrznej należy wykonać jeden obraz prawego punktu gałęzi nerkowej.</li>
	<li>Uchwyć pętlę filmową obszaru zainteresowania, która pokazuje maksymalne rozszerzenie aorty brzusznej (<silna klasa="xfig">Rysunek 3D,E). 
	nuta: Lokalizacja tętniaków aorty różni się w każdym modelu zwierzęcym. Poszerzenie aorty u myszy indukowanych angiotensyną II występuje głównie w aorcie nadnerczowej, podczas gdy CaCl2 lub elastaza indukuje tętniaka aorty w aorcie podnerkowej u myszy.</li>
</ol>
5. Pielęgnacja i czyszczenie myszy po skanowaniu
<ol>
	<li>Zetrzyj żel ultradźwiękowy, przepłucz klatkę piersiową lub brzuch ciepłą wodą i delikatnie wytrzyj mysz do sucha.</li>
	<li>Umieść mysz z powrotem w klatce, która jest umieszczona na poduszce grzewczej.</li>
	<li>Wyłącz parownik izofluranu i zbiornikO2. Napełnij waporyzator, jeśli poziom izofluranu jest niski.</li>
	<li>Wyczyść ultrasonograf, sondę i platformę miękką szmatką i chusteczkami nasączonymi alkoholem izopropylowym lub aldehydem glutarowym.</li>
	<li>Pobierz wszystkie pliki zebrane podczas skanowania.</li>
	<li>Wyłącz aparat ultrasonograficzny.</li>
	<li>Zwróć myszy do pomieszczeń dla zwierząt po tym, jak wyzdrowieją ze znieczulenia.</li>
</ol>
6. Analiza
<ol>
	<li>Analiza obrazów aorty piersiowej
	<ol>
		<li>Uruchom oprogramowanie analityczne i otwórz dane ultrasonograficzne. Przykładowy obraz oprogramowania analitycznego (Vevo LAB 3.0.0) pokazano na rysunku uzupełniającym 1.</li>
		<li>Wybierz jeden obraz ultrasonograficzny aorty do pomiarów z pętli cine (<silna klasa="xfig">Rysunek 4A,C,E,G i rysunek uzupełniający 1). 
		nuta: Ten protokół zazwyczaj wykrywa od sześciu do siedmiu uderzeń serca w jednej pętli cine. Ponieważ średnica aorty jest różna między skurczem a rozkurczem (<silna klasa="xfig">Rysunek 4A-G), pomiary należy badać w spójnej fazie cyklu pracy serca. Skurcz jest definiowany od fali R do końca fali T. Ogólnie rzecz biorąc, załamki T są trudne do zidentyfikowania w EKG myszy. Dlatego średnica aorty w skurczu powinna być mierzona w skurczu fizjologicznym, określonym przez oględziny (<silna klasa="xfig">Rysunek 4I). Faza sercowa, w której aorta jest maksymalnie rozszerzona, powinna być skurczem środkowym. Koniec rozkurczu można łatwo określić przy załamku R EKG (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 4I). Pomiary aorty w końcówce rozkurczu są prostsze niż te w środku skurczu pod względem rozróżnienia cyklu sercowego.</li>
		<li>Narysuj linię na środku światła aorty. Ta linia środkowa zostanie użyta, aby upewnić się, że linie pomiarowe są prostopadłe do aorty (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 4B, D i Rysunek uzupełniający 1).</li>
		<li>Narysuj prostopadłe linie przechodzące przez linię środkową od wewnętrznej krawędzi światła do wewnętrznej krawędzi zatoki aortalnej i maksymalnych rosnących poziomów aorty (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 4B, D i rysunek uzupełniający 1).</li>
		<li>Zmierz średnicę aorty w co najmniej trzech oddzielnych uderzeniach serca i oblicz średnią z pomiarów. 
		nuta: System Vevo2100 wykorzystuje oprogramowanie analityczne Vevo LAB do pomiarów wymiaru aorty. Krótkie wyjaśnienia dla każdego przycisku są następujące. Tryb pomiaru (rysunek uzupełniający 1A): ten tryb musi być wybrany dla pomiarów aorty. Suwak pętli filmowej (rysunek uzupełniający 1B): ramka ultrasonograficzna jest wybierana za pomocą tego suwaka. Śledzona odległość (rysunek uzupełniający 1C): linia środkowa jest rysowana za pomocą tej funkcji. Odległość liniowa (rysunek uzupełniający 1D): wymiar aorty jest mierzony za pomocą tej funkcji.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Analiza obrazów aorty brzusznej
	<ol>
		<li>Uruchom oprogramowanie analityczne i otwórz dane ultrasonograficzne.</li>
		<li>Wybierz obraz aorty do analizy z pętli cine (Rysunek 4E,G). 
		nuta: Podobnie jak w przypadku pomiarów aorty piersiowej, cykl sercowy może wpływać na średnicę i obszar aorty brzusznej. Pomiary powinny być wykonywane w spójnej fazie cyklu pracy serca.</li>
		<li>Narysuj linię w poprzek największej średnicy światła, od wewnętrznej krawędzi do wewnętrznej krawędzi światła naczynia (<silna klasa="xfig">Rysunek 4F,H).</li>
		<li>Prześledź wewnętrzną krawędź światła aorty dla obszaru światła (<silna klasa="xfig">Rysunek 4F,H).</li>
		<li>Uzyskaj pomiary aorty przy co najmniej trzech oddzielnych uderzeniach serca i oblicz średnią danych.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Protokół ten stanowi przewodnik techniczny dotyczący pozyskiwania obrazów aorty piersiowej i brzusznej u myszy przy użyciu systemu ultrasonograficznego o wysokiej częstotliwości. Obrazowanie ultrasonograficzne aorty wiąże się z potencjalnymi czynnikami zakłócającymi, takimi jak położenie sondy i cykl pracy serca, które mogą zagrozić dokładności pomiarów aorty, szczególnie w bliższej części aorty piersiowej. Protokół ten opisuje szczegółowe instrukcje i strategie akwizycji, pomiaru i analizy danych obrazu w celu dokładnego pomiaru wymiarów aorty.
W przypadku obrazowania bliższej części aorty piersiowej istnieje kilka podejść do umieszczenia sondy. Do obrazowania ultrasonograficznego w tym protokole wykorzystano widok prawej osi długiej przymostkowej pokazany na rysunku 2A. Ten widok ułatwia pozyskiwanie wysokiej jakości obrazów od zatoki aortalnej do części łuku aorty. Nie jest optymalna dla aorty zstępującej ze względu na interferencję fal ultradźwiękowych. Protokół ten ma zastosowanie do większości mysich modeli tętniaków aorty piersiowej, ponieważ wykazują one rozszerzenie światła głównie w korzeniu aorty do aorty wstępującej. Obejmuje to przewlekłą infuzję angiotensyny II, która powoduje powstawanie tętniaka w aorcie wstępującej myszy 18,19,20,21,22,23. Mysie modele zespołu Marfana (myszy fibrylina 1C1041G / + i fibrylina 1mgR / mgR) wykazują zarówno rozszerzenie korzenia aorty, jak i wstępującego rozwarcia aorty 23,24,25. Mysie modele zespołu Loeysa-Dietza (poporodowa delecja receptora TGF-β 1 lub 2 w komórkach mięśni gładkich) również rozwijają tętniaka w korzeniu aorty i aorcie wstępującej 18,26,27,28. Dlatego widok prawej osi długiej przymostkowej jest odpowiedni do obrazowania aorty w tych mysich modelach tętniaków aorty piersiowej. Z drugiej strony, prawy widok krótkiej osi przymostkowej może potencjalnie uchwycić obrazy aorty po przekątnej, ponieważ tętniaki są często powikłane przez krętość aorty, co może powodować przeszacowanie średnic. W przeciwieństwie do aorty piersiowej, w tym protokole do obrazowania aorty brzusznej zastosowano widok krótkiej osi. Ponieważ krzywizna i krętość aorty są niewielkie w aorcie brzusznej w porównaniu z aortą piersiową, pozyskiwanie obrazów w widoku krótkiej osi łagodzi niedoszacowanie średnicy aorty. Ważne jest, aby pamiętać, że różne pozycje sondy zapewniają różne kąty widzenia, a średnica aorty może być różna w każdym kącie widzenia. W związku z tym wiarygodne pomiary średnicy aorty są ulepszone dzięki zastosowaniu tej samej pozycji sondy dla wszystkich obrazów w badaniu. Co ciekawe, w ostatnim czasie opisano trójwymiarowe (3D) obrazy ultrasonograficzne serca i aorty 29,30,31,32. Ponadto obecne systemy ultrasonograficzne mogą z czasem uzyskiwać obrazy 3D w postaci obrazów czterowymiarowych33. W związku z tym te technologie obrazowania 3D mają potencjał, aby dokładniej zademonstrować strukturę aorty, co może rozwiązać problem pozycjonowania sondy.
Obrazy ultradźwiękowe mogą być rejestrowane w trybie jasności 2D (tryb B) lub w trybie ruchu jednowymiarowego (tryb M). Chociaż w niektórych artykułach użyto trybu M do pomiaru średnicy aorty, preferowany jest tryb B 15,34,35,36. Tryb M ma możliwość obrazowania w dwóch wymiarach w celu zwiększenia rozdzielczości czasowej i przestrzennej. Jednak ten tryb opiera się na założeniu, że aorta jest koncentrycznym cylindrem obrazowanym prostopadle do fal ultradźwiękowych. To założenie może nie być prawdziwe w stanie tętniaka, a krzywizna aorty wstępującej utrudnia to, nawet w stanach bez tętniaka. Ponadto aorta nie pozostaje w stałej pozycji przez cały cykl pracy serca37. Dlatego tryb M może powodować błędy pomiaru, w tym przeszacowania i niedoszacowania.
Ważne jest również, aby pamiętać, że cykl sercowy wpływa na średnicę światła w aorcie. Zgodnie z oczekiwaniami średnica aorty w skurczu jest większa niż w rozkurczu (ryc. 4A-H), co jest związane z elastycznością i napięciem ściany aorty. Elastyczność i odkształcenie ściany aorty można obliczyć na podstawie różnicy średnic aorty między skurczem a rozkurczem. Elastyczność i odkształcenie są zmniejszone w aortach tętniakowych w porównaniu z normalnymi aortami 31,34,35,38,39,40. Sztywności aorty nie można zmierzyć bezpośrednio za pomocą ultradźwięków. Pomiar prędkości fali tętna (PWV) może ocenić jego sztywność jako wskaźnik zastępczy, który według doniesień jest zwiększony w aortach tętniakowych 31,35,41,42. PWV oblicza się na podstawie czasu przejścia między dwoma miejscami tętniczymi, wykorzystując obrazy Dopplera fal tętna i odpowiadającą im odległość. W przypadku porównywania średnic aorty, w przeciwieństwie do badania klinicznego, nie ma rygorystycznej standaryzacji pod względem fazy serca dla pomiarów aorty u myszy. Dlatego nadal nie jest jasne, która faza serca jest odpowiednia do pomiarów aorty. Jednakże, aby zapewnić wiarygodne i powtarzalne porównania, średnice aorty powinny być mierzone w określonej fazie cyklu pracy serca.
Protokół ten zawiera szczegółowe instrukcje dotyczące obrazowania aorty i analizy danych w celu dokładnego pomiaru wymiarów aorty. Pomiar aorty, przy użyciu tego protokołu, był zgodny z rzeczywistą średnicą aorty ex vivo (ryc. 5A). Potwierdziliśmy również spójność odtwarzalności między obserwatorami i wewnątrz obserwatorów (Rysunek 5B,C). Wszystkie kroki w tym protokole, zwłaszcza pozycja sondy i cykl pracy serca, są niezbędne do dokładnych pomiarów. Jednak nawet przy zastosowaniu odpowiednich procedur, artefakty podczas obrazowania ultrasonograficznego są nieuniknione. Lokalizacja żeber i płuc, a także oddychanie i pulsowanie serca mogą wpływać na jakość obrazu aorty piersiowej. Gaz jelitowy może również powodować artefakty w obrazowaniu jamy brzusznej. Dlatego sugerujemy zdefiniowanie kryteriów wykluczenia przy przestrzeganiu tego protokołu w przypadku słabych obrazów aorty.
Wraz z pojawieniem się systemów ultrasonograficznych o wysokiej rozdzielczości, struktura aorty myszy może być badana w najdrobniejszych szczegółach, zarówno szeregowo, jak i konwencjonalnie, co znacznie przyczynia się do zrozumienia tętniaków aorty. Obrazowanie ultrasonograficzne, z protokołem opisanym powyżej, jest niezawodnym i powtarzalnym nieinwazyjnym podejściem do ilościowego określania tętniaków aorty u myszy.

Tętniaki aorty są częstymi chorobami naczyniowymi charakteryzującymi się trwałym poszerzeniem światła aorty piersiowej i/lub brzusznej1,2,3,4. Nie opracowano terapii farmakologicznych zapobiegających rozszerzaniu się i pękaniu tętniaków aorty, co podkreśla potrzebę wglądu w mechanizmy patogenne. Aby wyjaśnić mechanizmy tętniaków aorty, szeroko stosowano modele mysie powstałe w wyniku manipulacji genetycznych lub chemicznych4,5,6,7,8,9,10,11,12. Dokładna kwantyfikacja średnicy aorty u myszy jest podstawą badań nad tętniakiem aorty.
Rozwój ultradźwięków o wysokiej częstotliwości zwiększył rozdzielczość przestrzenną i czasową obrazów do wykrywania niewielkich różnic w wymiarach aorty13,14,15. Umożliwiło to sekwencyjny pomiar średnic aorty u myszy, a tym samym stało się preferowaną metodą pomiaru średnic aorty w mysich badaniach tętniaków aorty. Chociaż obrazowanie ultrasonograficzne jest prostą techniką, wiedza z zakresu anatomii i fizjologii aorty jest wymagana do uzyskania odpowiednich obrazów do dokładnych pomiarów, analizy danych i interpretacji. Aorta jest pulsującym cylindrycznym narządem o zmiennych krzywiznach w bliższym odcinku klatki piersiowej16. Przyczynia się to do potencjalnego niedokładnego określania wymiarów aorty w powszechnie uzyskiwanych obrazach dwuwymiarowych (2D). Dokładność pomiarów aorty może być dodatkowo zagrożona przez krętość aorty w stanie tętniakowym17. Aby uzyskać wiarygodne i powtarzalne pomiary poszerzeń aorty, protokół ten stanowi praktyczny przewodnik dotyczący korzystania z systemu ultrasonograficznego o wysokiej rozdzielczości do pomiaru bliższej średnicy aorty piersiowej i brzusznej u myszy.

<table><tbody><tr><td>Nazwa odczynnika</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Isothesia (Isoflurane)</td><td>Henry Schin</td><td>NDC11695-6776-2</td><td>Środek znieczulający</td></tr><tr><td>Omnicon F/Air Anesthesia Filtr gazowy Kanister</td><td>A.M. Bickford Inc.</td><td>80120</td><td>System oczyszczania do znieczulenia</td></tr><tr><td>Puralube Vet Maść</td><td>Dechra</td><td>NDC17033-211-38</td><td>Nawilżające krople do oczu</td></tr><tr><td>Aquasonic&nbsp;</td><td>Parker Laboratories</td><td>01-08</td><td>Żel ultradźwiękowy</td></tr><tr><td>Nair</td><td>Nair</td><td></td><td>Krem deplizujący Roztwór</td></tr><tr><td>do czyszczenia przetworników transeptycznych</td><td>Parker Laboratories</td><td>341-09-25</td><td>Spray do czyszczenia sond</td></tr><tr><td><silny>Nazwa sprzętu</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vevo 2100</td><td>VisualSonics</td><td>Vevo 2100 Ultrasonograf Vevo 2100</td><td></td></tr><tr><td>Vevo LAB 3.0.0</td><td>VisualSonics</td><td>Vevo LAB 3.0.0</td><td>Oprogramowanie do analizy ultradźwiękowej</td></tr><tr><td>MS-550D</td><td>Sonda ultradźwiękowa</td><td>VisualSonics</td><td>MS-550D</td></tr><tr><td>Waporyzator EX3 Patterson</td><td>Veterinary</td><td>EX 3</td> Analogowa podkładka grzewcza <td>do waporyzatora anestezjologicznego</td></tr><tr><td></td><td>Sunbeam</td><td>E12107</td><td>Podkładka grzewcza</td></tr></tbody></table>

obrazowanie ultrasonograficzne aorty piersiowej i brzusznej u myszy w celu określenia wymiarów tętniaka

Ultrasound Imaging of the Thoracic and Abdominal Aorta in Mice to Determine Aneurysm Dimensions

Współczesne instrumenty ultrasonograficzne o wysokiej rozdzielczości mają wystarczającą rozdzielczość, aby ułatwić pomiar aort myszy. Przyrządy te są szeroko stosowane do pomiaru wymiarów aorty w mysich modelach tętniaków aorty. Tętniaki aorty definiuje się jako trwałe poszerzenia aorty, które występują najczęściej w okolicy wstępującej i brzusznej. Sekwencyjne pomiary wymiarów aorty za pomocą ultradźwięków są głównym podejściem do oceny rozwoju i progresji tętniaków aorty in vivo. Chociaż w wielu zgłoszonych badaniach wykorzystano obrazowanie ultrasonograficzne do pomiaru średnicy aorty jako pierwszorzędowego punktu końcowego, istnieją czynniki zakłócające, takie jak pozycja sondy i cykl pracy serca, które mogą wpływać na dokładność pozyskiwania, analizy i interpretacji danych. Celem tego protokołu jest zapewnienie praktycznego przewodnika na temat stosowania ultradźwięków do pomiaru średnicy aorty w sposób wiarygodny i powtarzalny. Protokół ten wprowadza przygotowanie myszy i instrumentów, pozyskiwanie odpowiednich obrazów ultrasonograficznych oraz analizę danych.

Reprezentatywne obrazy ultrasonograficzne nieaneuryzmatycznej proksymalnej aorty piersiowej i brzusznej przedstawiono odpowiednio na Rysunku 3A oraz Rysunku 3C. Aorta wstępująca znajduje się obok tętnicy płucnej i tworzy zakrzywioną rurkę z trzema odgałęzieniami w obrębie łuku: tętnicą szyjną wspólną prawą (pniem nieparzystym), lewą tętnicą szyjną wspólną i lewą tętnicą podobojczykową (Rysunek 3A). Aortę brzuszną wykrywa się grzbietowo w stosunku do żyły głównej dolnej (Rysunek 3D). Reprezentatywne obrazy tętniaków aorty piersiowej i brzusznej z głębokimi rozszerzeniami, w porównaniu z normalnymi średnicami na Rysunku 3A i Rysunku 3D, przedstawiono odpowiednio na Rysunku 3B i Rysunku 3H. Wszystkie obrazy ultrasonograficzne zostały zarejestrowane w końcowej rozkurczu.
Reprezentatywne obrazy ultrasonograficzne aorty piersiowej i brzusznej zarejestrowano w połowie skurczu oraz w końcowej fazie rozkurczu (Rycina 4A,C,E,G). Reprezentatywne obrazy z naniesionymi pomiarami przedstawiono na Rycini 4B,D,F,H. Zieloną linię w centrum aorty wstępującej wykorzystano do standaryzacji średnicy zatoki aorty i aorty wstępującej (Rycina 4B,D). Linie poprowadzono prostopadle do zielonej linii między dwiema wewnętrznymi krawędziami światła w obrębie zatoki aorty (linia żółta) oraz w miejscu maksymalnej średnicy aorty wstępującej (linia czerwona). Średnice światła aorty piersiowej i brzusznej różniły się między skurczem a rozkurczem (Rycina 4A-H). W przypadku aorty brzusznej zmierzono maksymalną średnicę aorty (kolor czerwony) oraz pole powierzchni światła (kolor zielony) (Rycina 4F,H). Reprezentatywny obraz z monitora z zapisem elektrokardiogramu przedstawiono na Rycini 4I. W celu uzyskania dokładnych pomiarów należy uwzględnić cykl serca. Koniec rozkurczu i skurcz zaznaczono odpowiednio białą linią przerywaną i różową linią.
W celu zweryfikowania dokładności i powtarzalności niniejszego protokołu przeprowadziliśmy badanie pilotażowe. Reprezentatywne obrazy USG aorty piersiowej oraz obrazy ex vivo przedstawiono na Rysunku 5A. Nie stwierdzono istotnych różnic w pomiarach średnic na tych obrazach dla średnicy aorty wstępującej (USG: 1,67 mm vs. ex vivo: 1,65 mm). Ze względu na trudności w obrazowaniu zatoki aorty na zdjęciu ex vivo, jej średnica nie była mierzona ex vivo. Powtarzalność między- i wewnątrzobserwacyjna tego protokołu przedstawiona jest na Rysunku 5B,C. Aby określić potencjalną zmienność, obrazowanie USG zostało wykonane niezależnie przez dwóch obserwatorów – doświadczonego kardiologa oraz studenta studiów licencjackich nieposiadającego doświadczenia w tej technice – w dwa różne dni, przy użyciu tych samych myszy (n = 5). Wszystkie punkty znajdowały się w przedziale średnia ± 1,96 SD na Rysunku 5B,C, co wskazuje na brak istotnej zmienności między- i wewnątrzobserwacyjnej dla tego protokołu.
<img alt="Schemat systemu podawania środka znieczulającego; konfiguracja obejmuje parownik, sondę, podgrzewacz żelu, komorę indukcyjną." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59013/59013fig1.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="Rycina 1"> 
Rycina 1: Konfiguracja stanowiska pracy. Stanowisko pracy obejmuje komorę indukcyjną do znieczulenia, filtry do odzyskiwania środków znieczulających, podgrzewaną platformę, żel do badań USG oraz podgrzewacz żelu. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59013/59013fig1large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tej ryciny.</a>
<img alt="Układ do badania USG aorty gryzonia, z zaznaczeniem widoków klatki piersiowej i jamy brzusznej; wynik badania USG." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59013/59013fig2.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="Rycina 2"> 
Rycina 2: Przykłady rozmieszczenia głowicy do obrazowania proksymalnej części aorty piersiowej i brzusznej. Rozmieszczenie głowicy dla (A) prawego i (B) lewego widoku długiej osi przymostkowej pierścienia aorty, odcinka wstępującego i łuku aorty oraz (C) widoku krótkiej osi aorty brzusznej. (D) Reprezentatywny obraz z monitora systemu USG. Czarne strzałki wskazują marker referencyjny na głowicy. Żółta strzałka wskazuje stronę markera referencyjnego. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59013/59013fig2large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
<img alt="USG aorty klatki piersiowej i brzusznej, widok prawy/lewy, przedstawia różnice między tętniakiem a brakiem tętniaka." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59013/59013fig3.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="Rysunek 3"> 
Rysunek 3: Reprezentatywne obrazy USG aorty klatki piersiowej i brzusznej. (A) Aorta wstępująca bez tętniaka oraz (B) aorta wstępująca z tętniakiem, w widoku prawostronnym wzdłuż długiej osi przymostkowej. (C) Aorta wstępująca bez tętniaka, w widoku lewostronnym wzdłuż długiej osi przymostkowej. (D) Aorta brzuszna bez tętniaka oraz (E) aorta brzuszna z tętniakiem. Asc Ao = aorta wstępująca, IA = tętnica bezimienna, LCA = lewa tętnica szyjna wspólna, LSA = lewa tętnica podobojczykową, PA = tętnica płucna, Sinus = zatoka aorty, IVC = żyła główna dolna, a Abd Ao = aorta brzuszna. Żółte trójkąty wskazują tętniaka aorty. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59013/59013fig3large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.</a>
<img alt="Porównanie ultrasonograficzne aorty piersiowej i brzusznej podczas skurczu i rozkurczu wraz z wykresem EKG." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59013/59013fig4.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="Rysunek 4"> 
Rysunek 4: Pomiary obrazów aorty. Obrazy aorty piersiowej zarejestrowane w (A) środkowej fazie skurczu i (C) w końcowej fazie rozkurczu. Obrazy przedstawiające pomiary średnic aorty w proksymalnym odcinku aorty piersiowej podczas (B) środkowej fazy skurczu i (D) rozkurczu. Zielona linia wskazuje środek aorty wstępującej. Żółte i czerwone linie wskazują odpowiednio średnice zatoki aorty i aorty wstępującej. Cyfry w kolorze żółtym i czerwonym wskazują odpowiednio rzeczywiste średnice zatoki aorty i aorty wstępującej. Obrazy aorty brzusznej zarejestrowane w (E) środkowej fazie skurczu i (G) w końcowej fazie rozkurczu. Obrazy przedstawiające pomiary aorty nadnerkowej podczas (F) środkowej fazy skurczu i (H) końcowej fazy rozkurczu. Czerwone i zielone linie wskazują odpowiednio średnicę i pole powierzchni światła aorty brzusznej. Cyfry w kolorze czerwonym i zielonym wskazują odpowiednio rzeczywistą średnicę i pole powierzchni aorty brzusznej. (I) Monitor elektrokardiogramu (EKG) zapisany podczas akwizycji obrazów. Zielona i żółta linie wskazują odpowiednio EKG i cykl oddechowy. Biała przerywana linia wskazuje koniec rozkurczu, a fioletowa linia wskazuje skurcz. P = załamka P i R = załamka R. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59013/59013fig4large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby zobaczyć powiększoną wersję tego rysunku.</a>
<img alt="Pomiar aorty metodą ultradźwiękową i ex vivo, analiza zmienności za pomocą wykresów Blanda-Altmana; badanie aorty." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59013/59013fig5.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="Rysunek 5"> 
Rysunek 5: Dokładność i powtarzalność obrazowania ultradźwiękowego. (A) Reprezentatywne obrazy ultradźwiękowe aorty piersiowej oraz obrazy ex vivo u samców myszy C57BL/6J (w wieku 10–12 tygodni). Wykresy Blanda-Altmana przedstawiają (B) zmienność międzyobserwatorową oraz (C) wewnątrzobserwatorową tego protokołu. Asc Ao = aorta wstępująca, IA = tętnica bezimienna, LCA = lewa tętnica szyjna wspólna, LSA = lewa tętnica podobojczykowa, PA = tętnica płucna, a Sinus = zatoka aorty. Zielona linia wskazuje środek aorty wstępującej. Żółta i czerwona linie wskazują odpowiednio średnice zatoki aorty i aorty wstępującej. Cyfry w kolorze czerwonym oznaczają rzeczywiste średnice aorty wstępującej zmierzone na obrazach ultradźwiękowych i ex vivo. Czarne linie przerywane wskazują średnią oraz średnią ± 1,96 SD. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59013/59013fig5large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.</a>
<img alt="Obraz ultradźwiękowy w trybie B; pomiary serca; zatoka, długość aorty; analiza echokardiograficzna." src="/files/ftp_upload/59013/59013supfig1.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="Rycina dodatkowa 1"> 
Rycina dodatkowa 1: Przykładowy obraz oprogramowania do analizy ultradźwiękowej. Analiza danych ultradźwiękowych musi być przeprowadzona w (A) trybie pomiaru. Z pętli cine do analizy wybiera się jeden obraz ultradźwiękowy aorty, używając (B) suwaka pętli cine. Linię środkową kreśli się za pomocą (C) funkcji mierzenia odległości śladem (traced distance). Wymiar aorty mierzy się za pomocą (D) funkcji pomiaru odległości liniowej. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59013/59013supfig1large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>

Obrazowanie ultradźwiękowe stało się powszechną metodą określania wymiarów światła tętniaków aorty piersiowej i brzusznej u myszy. Protokół ten opisuje procedurę uzyskiwania wiarygodnych i powtarzalnych dwuwymiarowych obrazów ultrasonograficznych aorty wstępującej i brzusznej u myszy.

Obrazowanie ultrasonograficzne aorty piersiowej i brzusznej u myszy w celu określenia wymiarów tętniaka

Contemporary high-resolution ultrasound instruments have sufficient resolution to facilitate the measurement of mouse aortas. These instruments have been ...

Pomiary ultrasonograficzne o wysokiej rozdzielczości są szeroko stosowane do pomiaru wymiarów aorty u myszy. Protokół ten stanowi praktyczny przewodnik po zastosowaniu tej modalności. Protokół ten ułatwia uzyskanie powtarzalnych i dokładnych dwuwymiarowych pomiarów średnicy aorty piersiowej i brzusznej u myszy.Procedurę zademonstrują dr Hasashi Sawada, doktor habilitowany, i Jessica Morrleghen, naukowiec z University of Kentucky. Przed rozpoczęciem zabiegu za pomocą bawełnianego wacika nałóż krem rozszerzający na obszar obrazowania znieczulonej myszy. Po minucie delikatnie usuń cały krem i włosy, a następnie spłucz odsłoniętą skórę ciepłą wodą.Po wytarciu skóry do sucha, aby całkowicie usunąć krem, umieść kropkę żelu ultradźwiękowego na każdym z czterech miedzianych przewodów na platformie. Przyklej każdą poduszkę łapy do każdego przewodu, aby uzyskać odczyty elektrokardiogramu. I sprawdź, czy tętno wynosi od 450 do 450 uderzeń na minutę.Nałóż wstępnie podgrzany żel ultradźwiękowy na miejsce obrazowania i przymocuj sondę do uchwytu. Następnie obróć platformę, aby uzyskać optymalne skanowanie, i opuść sondę, aż zetknie się z żelem ultradźwiękowym. Aby zobrazować aortę piersiową, przechyl platformę w dół w kierunku lewej strony myszy i umieść sondę na prawej krawędzi mostka myszy.Orientacja znacznika odniesienia na sondzie doogonowo. Przełącz się na kolorowy doppler na aorcie piersiowej, aby potwierdzić przepływ krwi. Dostosuj stolik i kąt sondy, aby wyraźnie uwidocznić aortę.Za pomocą pokręteł do pomiaru głębi i szerokości obrazu przytnij obraz ultrasonograficzny, aby zwiększyć liczbę klatek na sekundę i zmienić głębokość ogniskowej po grzbietowej stronie aorty wstępującej, używając pokrętła głębokości ogniskowej. Sprawdź parametry ultrasonograficzne zgodnie z tabelą i użyj pokrętła stage osi X i Y, aby delikatnie przesunąć sondę, aby uchwycić podłużny obraz aorty o jak największej średnicy. Aby zobrazować aortę brzuszną, umieść sondę poprzecznie tuż pod mostkiem i wyrostkiem ksyloidalnym, tak aby znacznik odniesienia na sondzie był skierowany po prawej stronie myszy.Aorta brzuszna powinna znajdować się obok żyły głównej dolnej i/lub żyły wrotnej. Wizualizuj aortę brzuszną za pomocą kolorowego doperu, aby potwierdzić pulsacyjny przepływ i przyciąć obraz ultrasonograficzny, aby zwiększyć liczbę klatek na sekundę. Zmień głębokość ogniskowej na tylną ścianę aorty brzusznej i przesuń sondę doogonowo, aby uwidocznić punkty rozgałęzień tętnic trzewnych i krezkowych górnych.Następnie użyj prawej tętnicy nerkowej jako punktu orientacyjnego i uchwyć pętlę sinusoidalną obszaru zainteresowania, pokazując maksymalne rozszerzenie aorty brzusznej. Po przechwyceniu wszystkich obrazów usuń żel ultradźwiękowy, spłucz obszar obrazowania ciepłą wodą i delikatnie wytrzyj mysz do sucha. Umieść mysz w klatce na poduszce grzewczej i wyczyść ultrasonograf, sondę i platformę miękką szmatką i chusteczkami dezynfekującymi.Następnie pobierz wszystkie pliki zebrane podczas skanowania i wyłącz aparat USG. Na tym reprezentatywnym obrazie ultrasonograficznym nietętniakowej bliższej aorty piersiowej można zaobserwować aortę wstępującą zlokalizowaną obok tętnicy płucnej i tworzącą zakrzywioną rurkę z trzema odgałęzieniami w okolicy łuku. Tętnica bezimienna, lewa tętnica szyjna wspólna i lewa tętnica podobojczykowa.W tym reprezentatywnym obrazie ultrasonograficznym aorty brzusznej nietętniakowej aorta brzuszna jest wykrywana grzbietowo do żyły głównej dolnej. Tutaj pokazane są reprezentatywne obrazy tętniaków aorty piersiowej i brzusznej. Do pomiaru średnicy zatoki aortalnej i aorty wstępującej zielona linia służy odpowiednio do standaryzacji zatoki aortalnej i średnicy aorty wstępującej.Następnie można narysować linie prostopadle do zielonej linii między dwiema wewnętrznymi krawędziami światła w zatoce aortalnej i maksymalną rosnącą średnicą aorty. Aby zmierzyć aortę brzuszną, narysuj linię w poprzek największej średnicy światła, od wewnętrznej krawędzi do wewnętrznej krawędzi światła naczynia, i prześledź wewnętrzną krawędź światła aorty dla obszaru światła. Średnice światła aorty piersiowej i brzusznej są różne w przypadku skurczu i rozkurczu.W celu uzyskania dokładnych pomiarów należy również wziąć pod uwagę cykl pracy serca. W tym reprezentatywnym badaniu pilotażowym nie stwierdzono istotnej różnicy w zmierzonych średnicach aorty wstępującej między obrazami ultrasonograficznymi a obrazami ex vivo. Ta technika ultrasonograficzna pozwala na uzyskanie powtarzalnych i dokładnych wyników, ponieważ w tym eksperymencie nie zaobserwowano żadnych zmian między obserwatorami lub wewnątrz obserwatorów między pomiarami aorty wykonanymi przez dwóch niezależnych obserwatorów a sesjami pomiarowymi.Regulacja sondy i ustawienia stolika są ważnymi krokami dla wiarygodnego i powtarzalnego obrazowania aorty. Etapy analizy danych są również ważne dla dokładnego pomiaru aorty.

ultrasound-imaging-thoracic-abdominal-aorta-mice-to-determine

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Podskórne wszczepianie pomp osmotycznych zapewnia wygodne podejście do długotrwałego i konsekwentnego dostarczania związków. Podejście to było szeroko stosowane do badania tętniaków aorty brzusznej i piersiowej u myszy.

Podskórny wlew angiotensyny II za pomocą pomp osmotycznych indukuje tętniaki aorty u myszy

Celem tego protokołu jest nieinwazyjna ocena zmian strukturalnych i funkcjonalnych w mysim modelu choroby serca powstałych w wyniku poprzecznego zwężenia aorty, przy użyciu echokardiografii w trybie B i M oraz obrazowania dopplerowskiego kolorem/falą tętna.

Ocena zmian morfologicznych i czynnościowych serca w mysim modelu poprzecznego zwężenia aorty za pomocą obrazowania echokardiograficznego

Poniższy protokół opisuje metodologię pozyskiwania i analizy obrazów echokardiograficznych używanych do uzyskania objętości lewego przedsionka (LAV), średnicy aorty (Ao) i średnicy tętnicy płucnej (PA) u myszy. Technika ta jest nieinwazyjnym, nieterminalnym zabiegiem, który umożliwia ocenę funkcji krążeniowo-oddechowej.

Echokardiografia mysia lewego przedsionka, aorty i tętnicy płucnej

Ten artykuł opisuje szczegółową metodologię użycia nieprzepuszczającego promieni rentgenowskich kauczuku silikonowego na bazie ołowiu do perfuzji mysiego układu krwionośnego do ilościowego określenia średnicy aorty w mysim modelu tętniaka i rozwarstwienia aorty.

Ilościowa analiza aortapatii metodą mikro-CT w mysim modelu tętniaka i rozwarstwienia aorty wywołanego β-aminopropionitrylem

Ten manuskrypt opisuje szczegółowy protokół korzystania z obrazowania ultradźwiękowego o wysokiej częstotliwości do pomiaru średnicy światła, prędkości propagacji impulsów, rozciągliwości i odkształcenia promieniowego na mysim modelu tętniaka aorty brzusznej.

Pomiar prędkości, rozciągliwości i odkształcenia impulsu w mysim modelu tętniaka aorty brzusznej

Obecny protokół opisuje ustandaryzowaną metodę chirurgiczną dla modelu AAA wywołanego elastazą poprzez bezpośrednie zastosowanie elastazy do przydanki podnerkowej aorty brzusznej u myszy.

Mysi model tętniaka aorty brzusznej indukowany przez okołonaczyniowe zastosowanie elastazy

Ten protokół opisuje kolejne wszczepianie pompy osmotycznej w celu wywołania tętniaka aorty brzusznej poprzez uwalnianie angiotensyny II u myszy z niedoborem apolipoproteiny E (ApoE) oraz portu dostępu naczyniowego z cewnikiem do żyły szyjnej w celu wielokrotnego leczenia farmakologicznego. Monitorowanie rozwoju tętniaka za pomocą ultrasonografii 3D jest skutecznie prowadzone pomimo implantów grzbietowych.

Leczenie farmakologiczne za pomocą cewnika do żyły centralnej w mysim modelu tętniaka aorty brzusznej indukowanego angiotensyną II i monitorowanie za pomocą ultradźwięków 3D

Ten manuskrypt przedstawia protokół tworzenia mysiego modelu tętniaka aorty brzusznej myszy przy użyciu chlorku wapnia i elastazy, łącząc zalety poprzednich metod modelowania. Model ten można wykorzystać do badania mechanizmów patofizjologicznych leżących u podstaw tętniaków aorty brzusznej.

Mysi model tętniaka aorty brzusznej za pomocą okołoprzybytkowego nacieku chlorku wapnia i elastazy

Ten protokół opisuje metodyczne podejście chirurgiczne do modelowania zaawansowanych tętniaków aorty brzusznej u myszy poprzez kombinację bezpośredniego stosowania elastazy do aorty podnerkowej i podawania ß-aminopropionitrylu przez wodę pitną.

Zaawansowane modelowanie tętniaka aorty brzusznej u myszy poprzez połączenie miejscowej elastazy i doustnego ß-aminopropionitrylu

Ten protokół zapewnia powtarzalną i niezawodną metodę wywoływania tętniaków tętnicy brzusznej (TTB) u myszy C57BL/6 przy użyciu uczulenia elastyny i przynaczynowego stosowania elastazy, jako model TTB, który obejmuje komponent uczulenia immunologicznego.

Wiarygodne stworzenie modelu tętniaka tętnicy brzusznej u myszy przy użyciu uczulenia na elastynę i peryvaskularnej elastazy

Poznaj technikę ultrasonograficzną do pomiaru wymiarów tętniaka aorty piersiowej i brzusznej u myszy. Ta metoda zapewnia powtarzalne i dokładne wyniki obrazowania w badaniach kardiologicznych.

Obrazowanie ultrasonograficzne aorty piersiowej i brzusznej u myszy w celu określenia wymiarów tętniaka

Przeglądaj więcej filmów