16 maja 2021
Monitorowanie zmian temperatury topnienia docelowego białka (np. test przesunięcia termicznego, TSA) jest efektywną metodą badania bibliotek fragmentów kilkuset związków. Przedstawiamy protokół TSA implementujący wspomaganą robotyką nanoróżnicową fluorymetrię skaningową (nano-DSF) do monitorowania wewnętrznej fluorescencji tryptofanu i rozpraszania wstecznego światła w celu badania przesiewowego fragmentów.
Protokół ten jest przydatny w kampaniach odkrywania leadów opartych na fragmentarycznej bazie jako dodatkowe narzędzie do wybierania obiecujących fragmentów jako kandydatów do ciepła. Nano DSO do badań przesiewowych fragmentów wykorzystuje ograniczoną ilość nieznakowanej próbki białka i może być rutynowo stosowany do prawie wszystkich docelowych białek. Ta metoda może być stosowana do przesiewania dowolnych kolekcji ligandów.
lub w celu sprawdzenia ciepła za pomocą innych metod. Wyjmij płytkę fragmentową z zamrażarki o temperaturze minus 20 lub minus 80 stopni Celsjusza i pozwól jej rozmrozić się w temperaturze pokojowej, delikatnie potrząsając na wytrząsarce stołowej. Odwirować płytkę w temperaturze 500 razy G przez 30 sekund, aby zebrać wszelkie krople przyklejające się do boku studzienek.
Pobrać 2-dołkową płytkę krystalizacyjną MRC i odpipetować 15 mikrolitrów podstawowego roztworu białka do każdej podstudzienki za pomocą pipety wielokanałowej. Aby sprawdzić definicje fragmentów i płytek białkowych na Mosquito, włącz dozownik nano i upewnij się, że wokół ruchomych elementów nie ma żadnych przeszkód. Otwórz graficzny interfejs użytkownika, kliknij zakładkę Setup i w sekcji Deck Configuration sprawdź, czy rodzaj płytki, w której dostarczane są związki, oraz ta, w której przenoszone jest białko, znajdują się już na liście dostępnych płytek.
Jeśli nie, kliknij Opcje, a następnie Blachy i utwórz nową definicję blachy, wprowadzając poprawne wartości dla typu właściwości. Na karcie Ustawienia określ pozycje blach w obszarze Konfiguracja pokładu. Korzystając z menu rozwijanego, wybierz dolną płytkę Grainier U dla pozycji pierwszej i płytkę 2-dołkową MRC dla pozycji drugiej i zapisz protokół.
Umieścić płytkę z odłamkami w pozycji pierwszej, a płytkę białkową w pozycji drugiej pokładu. W zakładce protokół kliknij na Plik i wybierz zapisany w poprzednim kroku protokół dozowania fragmentów. Określ objętość dozowanych fragmentów na 0,3 mikrolitra.
W przypadku typowej blachy, w której kolumny pierwsza i 12 nie zawierają fragmentów, zdefiniuj położenie początkowe do kolumny drugiej i położenie końcowe do kolumny 11. W przypadku niektórych blach, jeśli kolumny druga lub 11 są puste, należy użyć kolumn 3 i 10 jako wartości początkowych i końcowych. Kliknij Uruchom, aby uruchomić program.
Po zakończeniu dozowania, które trwa około dwóch minut, należy usunąć płytki białkowe i fragmentaryczne z robota i uszczelnić je samoprzylepną folią uszczelniającą. Krótko odwirować płytkę białkową w temperaturze 500 razy G przez 30 sekund, aby zebrać krople przyklejające się do boków studzienek przed przejściem do następnego kroku. Sprawdź wzrokowo studzienki płytki białkowej pod kątem wytrąceń, które mogły wystąpić w wyniku dodania fragmentów.
Jeśli w wielu studniach obserwuje się opady, zmniejsz stężenie fragmentów i powtórz eksperyment. Włącz instrument Prometheus. Na ekranie dotykowym naciśnij Otwórz szufladę, aby uzyskać dostęp do kapilarnego modułu ładowania urządzenia.
Zdejmij pasek magnetyczny z modułu ładującego i wyczyść lustro etanolem, aby usunąć wszelkie cząsteczki kurzu. Aby przenieść roztwór z płytki z fragmentami białka do naczyń włosowatych, umieść płytkę białkową i naczynia włosowate obok urządzenia, aby uzyskać łatwy dostęp do modułu ładowania kapilarnego. Weź jedną kapilarę, trzymając ją na jednym końcu i dotknij roztworu w płytce białkowej drugim końcem kapilary, aby przenieść próbkę.
Zawsze noś rękawiczki i upewnij się, że nie dotykasz kapilary pośrodku, ponieważ zanieczyszczenia z rękawic wpłynęłyby na pomiar. Umieść kapilarnę w wyznaczonej pozycji uchwytu, upewniając się, że jest prawidłowo wyrównana i wyśrodkowana, powtórz te kroki, aby wypełnić wszystkie pozycje w module załadowczym. Na koniec umieść pasek magnetyczny na kapilarnach, aby utrzymać je na miejscu i naciśnij Zamknij szufladę, aby rozpocząć eksperyment Nano-DSF.
Otwórz żądanie ściągnięcia aplikacji Prometheus. ThermControl i utwórz nowy projekt, klikając Rozpocznij nową sesję. Najpierw wykonaj skanowanie odkrywcze, aby wykryć fluorescencję próbek. Zmień sygnał fluorescencyjny próbek, dostosowując moc wzbudzenia lasera.
W celu denaturacji termicznej kliknij zakładkę Melting Scan, ustaw temperaturę początkową na 20 stopni Celsjusza, temperaturę końcową na 95 stopni Celsjusza, a nachylenie temperatury na jeden stopień Celsjusza na minutę. Następnie kliknij Rozpocznij pomiar. Przedstawiono tutaj rozkład częstotliwości przesunięcia i temperatury topnienia dla zewnętrznego, kinetycznego lub wysoce eksprymowanego w raku białka jednego, regulatorowej domeny powtórzeń tetratrikopeptydu kinazy monopolarnej wrzeciona 1 i proteazy podobnej do SARS-CoV-2 3c.
Wartości ujemne wskazują na obniżenie temperatury topnienia w obecności fragmentu, podczas gdy wartość dodatnia wskazuje na wzrost temperatury topnienia. W przypadku Nsp5 wszystkie fragmenty mają działanie destabilizujące, podczas gdy w przypadku Hec1 i Mps1 obserwuje się zarówno trafienia stabilizujące, jak i destabilizujące. Jest to tania i szybka metoda przesiewania bibliotek fragmentów.
Inne metody, takie jak NMR lub krystalografia rentgenowska, mogą pokazać dokładne wiązanie fragmentów i są również dostępne dzięki odkryciu INX. Wyniki badań nad proteazą koronawirusa pomogły zaproponować nowe związki, które można przekształcić w leki przeciwko COVID-19.
Niniejszy artykuł szczegółowo opisuje protokół wysokoprzepustowego przesiewania fragmentów z wykorzystaniem nano-różnicowej fluorymetrii skanowania (nano-DSF) w celu monitorowania stabilności termicznej białek. Metoda ta umożliwia efektywną identyfikację ligandów fragmentowych poprzez obserwację przesunięć temperatury topnienia białka (Tm) i znajduje zastosowanie w szerokim zakresie białek docelowych. Protokół wykorzystuje nanolitrowy dozownik robotyczny do przygotowania próbek oraz zawiera instrukcje krok po kroku dotyczące pozyskiwania i analizy danych.
Nanofluorymetria skanowania różnicowego (nano-DSF) umożliwia szybki, bezznacznikowy screening bibliotek fragmentów w celu wczesnej identyfikacji związków wiodących, przy minimalnym zużyciu białka i wsparciu przepływów pracy o wysokiej przepustowości. Podejście to zwiększa pewność predykcyjną w projektowaniu leków opartym na fragmentach poprzez dostarczenie ilościowych danych o stabilności termicznej dla różnych białek docelowych. Integracja nano-DSF z procesami odkrywania leków przyspiesza selekcję trafień fragmentowych i dostarcza informacji niezbędnych do późniejszej walidacji strukturalnej i funkcjonalnej.
Przesiewanie fragmentów metodą nano-DSF znajduje zastosowanie na styku wczesnej fazy odkrywania leków i identyfikacji związków wiodących, stanowiąc pomost między biofizyczną walidacją trafień a późniejszą analizą strukturalną.