-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Ortotopowy model przeszczepu nerki u szczura do odrzucania alloprzeszczepu nerki
Ortotopowy model przeszczepu nerki u szczura do odrzucania alloprzeszczepu nerki
JoVE Journal
Medicine
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Medicine
A Rat Orthotopic Renal Transplantation Model for Renal Allograft Rejection

Ortotopowy model przeszczepu nerki u szczura do odrzucania alloprzeszczepu nerki

Full Text
4,487 Views
06:59 min
February 2, 2022

DOI: 10.3791/63464-v

Hang You1,2, Xin Mao2, Chenyang Wang2, Gang Huang3, Marcus Groettrup4,5, Jun Li2

1School of Medicine,Chongqing University, 2Department of Urological Oncology Surgery,Chongqing University Cancer Hospital, 3Department of Biochemistry and Molecular Biology, College of Basic Medical Science,Army Medical University, 4Division of Immunology, Department of Biology,University of Konstanz, 5Biotechnology Institute Thurgau,University of Konstanz

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Model ortotopowego przeszczepu nerki u szczurów przyczynia się do zbadania mechanizmu odrzucania alloprzeszczepu nerki. Obecny model zwiększa przeżywalność biorców bez zakłóceń w ukrwieniu i refluksu żylnego dolnej części ciała za pomocą zespolenia end-to-end implantacji nerki oraz metody "tunelowej" zespolenia moczowód-pęcherz moczowy.

Ortotopowe przeszczepienie nerki u szczurów jest ważnym modelem do badania mechanizmu odrzucania alloprzeszczepu nerki w badaniach przedklinicznych i może pomóc w opracowaniu nowego podejścia do poprawy długoterminowego przeżycia alloprzeszczepów nerkowych. Zespolenie naczyń nerkowych typu end-to-end w tej operacji pozwala uniknąć niedokrwienia dolnej części ciała i zakrzepicy żyły głównej dolnej, natomiast zespolenie moczowodu w metodzie tunelowej end-to-side zmniejsza pooperacyjny wyciek moczu i skręt moczowodu. Metoda ta dostarcza informacji na temat mechanizmów odrzucenia układu immunologicznego i uszkodzenia alloprzeszczepów nerkowych po przeszczepieniu nerki.

Zacznij od nacięcia brzucha za pomocą nożyczek chirurgicznych wzdłuż linii środkowej od spojenia łonowego do wyrostka mieczykowatego. Następnie rozciągnij nacięcie za pomocą retraktora. Wyjmij jelita z prawej strony nacięcia i owiń je zwilżoną gazą, aby zapobiec ich wysuszeniu.

Następnie odsłoń lewą nerkę. Oddziel lewą tętnicę nerkową i żyłę za pomocą mikrokleszczy i wacików bawełnianych pod 20-krotnym powiększeniem. W razie potrzeby podwiązać i przeciąć żyłę nadnerczy i żyłę płciową.

Oddziel moczowód za pomocą mikrokleszczyków, zachowując obwodowe tkanki łączne, aby zapewnić dopływ krwi do moczowodu. Oddzielić i przyciąć lub podwiązać aortę około pięciu milimetrów powyżej lewej tętnicy nerkowej za pomocą zacisku naczyniowego lub szwu monofilamentowego z poliamidu 4-0. Następnie przeciąć lewą żyłę nerkową dystalnie do połączenia lewej żyły płciowej i żyły nadnerczy.

Za pomocą igły skalpela o rozmiarze 24 przepłucz nerkę z aorty poniżej lewej tętnicy nerkowej lodowatym roztworem UW uzupełnionym 100 jednostkami na mililitr heparyny, aż krew wyblaknie. Przeciąć lewą tętnicę nerkową obok aorty, a następnie przeciąć moczowód obok pęcherza moczowego i oddzielić nerkę za pomocą mikrokleszczy i nożyczek. Zachowaj lewą nerkę dawcy w lodowatym roztworze UW.

Pod 20-krotnym powiększeniem oddziel lewą tętnicę nerkową i żyłę nerkową szczura biorcy za pomocą bawełnianych wacików i mikrokleszczyków. W razie potrzeby podwiązać żyłę nadnerczy i żyłę płciową. Przyciąć lewą tętnicę nerkową i żyłę nerkową u nasady za pomocą zacisków mikronaczyniowych, a następnie przeciąć tętnicę nerkową i żyłę nerkową w odległości trzech milimetrów od zacisku mikronaczyniowego.

Oddzielić i podwiązać lewy moczowód około dwóch do trzech centymetrów poniżej nerki za pomocą 8-0 Zszyć monofilament poliamidowy i przeciąć go na podwiązaniu. Wyciąć rodzimą lewą nerkę biorcy poprzez dysocjację nerki za pomocą mikrokleszczy i nożyczek. Wszczepić nerkę dawcy do lewego dołu nerkowego szczura biorcy i owinąć lodem wszczepioną nerkę dawcy

.

Przełącz się na 45-krotne powiększenie, a następnie zespolej tętnicę nerkową i żyłę nerkową dawcy z tętnicą nerkową i żyłą nerkową biorcy w sposób kompleksowy przy użyciu nici monofilamentowych z poliamidu 10-0. W celu zespolenia tętnicy nerkowej z przerwanymi szwami należy umieścić szwy podtrzymujące w pozycjach zespolenia na godzinie 12 i 6. Zszyj w równej odległości jedną stronę zespolenia między dwoma szwami podciągowymi za pomocą dwóch do trzech szwów.

Odwróć szwy sztywne i podobnie zszyj drugą stronę zespolenia między dwoma szwami szpilkowymi za pomocą dwóch do trzech szwów. Aby zespoleć żyłę nerkową ze szwami ciągłymi, należy umieścić szwy podtrzymujące w pozycji godziny szóstej i dwunastej zespolenia. Zszyj jedną stronę zespolenia od pozycji godziny 12 za pomocą czterech do pięciu szwów za pomocą szwów biegowych.

Odwrócić szwy sztagowe i podobnie zszyć drugą stronę zespolenia od pozycji godziny szóstej. Ponownie wykonać fuzję nerki dawcy poprzez uwolnienie nieinwazyjnego zacisku mikronaczyniowego żyły nerkowej, zidentyfikować miejsca krwawienia i w razie potrzeby założyć dodatkowe szwy. Następnie zwolnij nieinwazyjny zacisk mikronaczyniowy tętnicy nerkowej, zidentyfikuj miejsca krwawienia i w razie potrzeby wykonaj dodatkowe szwy.

Pod 20-krotnym powiększeniem podwiązać lub zszyć koniec moczowodu dawcy za pomocą nici z poliamidu 4-0 jako holu, aby przeciągnąć koniec przez tunel pęcherza biorcy. Zamocuj moczowód dawcy z pęcherzem biorcy, zszywając przydankę moczowodu dawcy z warstwą mięśniową pęcherza biorcy na zewnątrz w czterech równoodległych pozycjach za pomocą 8-0 Szew poliamidowy monofilamentowy. Następnie należy przeciąć koniec moczowodu dawcy szwem na zewnątrz pęcherza biorcy i pozwolić moczowodowi dawcy skurczyć się z powrotem do pęcherza biorcy.

Umieść jelita z powrotem w jamie brzusznej i zamknij nacięcie brzuszne ciągłymi szwami w warstwie mięśniowej, a następnie warstwie skóry szwem z monofilamentu poliamidowego 4-0. Po dziesięciu tygodniach od przeszczepu barwienie hematoksyliną i eozyną oraz barwienie okresowym przesunięciem kwasu ujawniło stwardnienie kłębuszków nerkowych, zwłóknienie śródmiąższowe, zanik kanalików i stwardnienie śródmiąższowe tętnicze w alloprzeszczepie nerkowym w przeciwieństwie do nerki izogenicznej. Zabarwienie srebrem wykazało pogrubienie błony podstawnej kłębuszków nerkowych w nerce przeszczepu alloidalnego w porównaniu z nerką przeszczepu isogenicznego, co wskazuje na sukces ortotopowego modelu przeszczepu nerki u szczurów.

Ponieważ otwór naczyniowy nerki jest bardzo cienki, aby uniknąć nieprawidłowego szycia, należy pamiętać o wykonaniu zespolenia w polu o dużym powiększeniu.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Ortotopowe przeszczepienie nerki u szczura odrzucenie alloprzeszczepu nerki badania przedkliniczne przeżycie długoterminowe zespolenie end-to-end zespolenie moczowodu mechanizmy odrzucenia immunologicznego techniki przeszczepiania nerki zabieg chirurgiczny mikrokleszcze zacisk naczyniowy lodowaty roztwór UW heparyna zachowanie nerki dawcy

Related Videos

Zabieg przeszczepu nerki u myszy

18:48

Zabieg przeszczepu nerki u myszy

Related Videos

30.7K Views

Ortotopowy przeszczep aorty: model szczura do badania rozwoju przewlekłej waskulopatii

08:32

Ortotopowy przeszczep aorty: model szczura do badania rozwoju przewlekłej waskulopatii

Related Videos

12.7K Views

Nieinwazyjne obrazowanie ostrego odrzucenia przeszczepu liogenicznego po przeszczepieniu nerki szczura przy użyciu 18F-FDG PET

17:13

Nieinwazyjne obrazowanie ostrego odrzucenia przeszczepu liogenicznego po przeszczepieniu nerki szczura przy użyciu 18F-FDG PET

Related Videos

17.6K Views

Przeszczep nerki u myszy: modele odrzucenia przeszczepu allogenicznego

16:15

Przeszczep nerki u myszy: modele odrzucenia przeszczepu allogenicznego

Related Videos

21.7K Views

Technika przeszczepu nerki u myszy

08:58

Technika przeszczepu nerki u myszy

Related Videos

17.3K Views

Heterotopowy autotransplantacja nerki w modelu świni: protokół krok po kroku

11:47

Heterotopowy autotransplantacja nerki w modelu świni: protokół krok po kroku

Related Videos

12.5K Views

Ortotopowy przeszczep nerki szczura: nowatorskie i uproszczone podejście chirurgiczne

09:15

Ortotopowy przeszczep nerki szczura: nowatorskie i uproszczone podejście chirurgiczne

Related Videos

17K Views

Uproszczony model heterotopowego przeszczepu zastawki serca u gryzoni

06:33

Uproszczony model heterotopowego przeszczepu zastawki serca u gryzoni

Related Videos

2.8K Views

Heterotopowy pomocniczy model przeszczepu szczura całej wątroby z wykorzystaniem hepaticoureterostomii do badań odrzucenia przeszczepu allogenicznego

11:25

Heterotopowy pomocniczy model przeszczepu szczura całej wątroby z wykorzystaniem hepaticoureterostomii do badań odrzucenia przeszczepu allogenicznego

Related Videos

902 Views

Zabiegi chirurgiczne częściowego ortotopowego przeszczepu wątroby na szczurze modelach z rekonstrukcją tętnic wątrobowych

18:47

Zabiegi chirurgiczne częściowego ortotopowego przeszczepu wątroby na szczurze modelach z rekonstrukcją tętnic wątrobowych

Related Videos

37.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code