Name: Wielokrotne dożylne dawkowanie bolusa i inwazyjna ocena hemodynamiczna w modelu nadciśnienia tętniczego płucnej myszy wywołanego niedotlenieniem (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-11-11T13:10:00.000+00:00
Duration: 8 min 51 s
Description: Poznaj metodę wielokrotnego dożylnego dawkowania bolusa i inwazyjnej oceny hemodynamicznej w modelu nadciśnienia tętniczego płucnego myszy. Protokół umożliwia precyzyjne badanie ciśnienia krwi i rozwoju terapii.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ta praca była częściowo wspierana przez Mikrogrant Joint Biology Consortium udzielony w ramach grantu NIH P30AR070253 (PYC), Cardiovascular Medical Research Education Fund (PYC), VasoRx, Inc. Fund (MS) oraz grantów NIH HL135582 (MS), HL152197 (MS).

<ol><li>McLaughlin, V. V., McGoon, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pulmonary+arterial+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Pulmonary arterial hypertension.</a> Circulation. 114 (1), 1417-1431 (2006).</li>
<li>Hoeper, M. M., Humbert, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+new+haemodynamic+definition+of+pulmonary+hypertension%3A+evidence+prevails%2C+finally%5BTitle%5D)+AND+%22European+Respiratory+Journal%22%5BJournal%5D)">The new haemodynamic definition of pulmonary hypertension: evidence prevails, finally.</a> European Respiratory Journal. 53 (3), 1900038(2019).</li>
<li>Chen, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+rat+model+of+pulmonary+hypertension+induced+by+mono+treatment+with+SU5416%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertension+Research%22%5BJournal%5D)">A novel rat model of pulmonary hypertension induced by mono treatment with SU5416.</a> Hypertension Research. 43 (8), 754-764 (2020).</li>
<li>Xiong, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+model+of+experimental+pulmonary+hypertension%3A+Lung+angiogram+and+right+heart+catheterization%5BTitle%5D)+AND+%22Pulmonary+Circulation%22%5BJournal%5D)">Mouse model of experimental pulmonary hypertension: Lung angiogram and right heart catheterization.</a> Pulmonary Circulation. 11 (4), 20458940211041512(2021).</li>
<li>Kmiotek, E. K., Baimel, C., Gill, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+intravenous+self+administration+in+a+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Methods for intravenous self administration in a mouse model.</a> Journal of Visualized Experiments. (70), e3739(2012).</li>
<li>Potus, F., Martin, A. Y., Snetsinger, B., Archer, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biventricular+assessment+of+cardiac+function+and+pressure-volume+loops+by+closed-chest+catheterization+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Biventricular assessment of cardiac function and pressure-volume loops by closed-chest catheterization in mice.</a> Journal of Visualized Experiments. (160), e61088(2020).</li>
<li>Bueno-Beti, C., Hadri, L., Hajjar, R. J., Sassi, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Sugen+5416%2Fhypoxia+mouse+model+of+pulmonary+arterial+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Models+of+Cardiovascular+Diseases%22%5BJournal%5D)">The Sugen 5416/hypoxia mouse model of pulmonary arterial hypertension.</a> Experimental Models of Cardiovascular Diseases. 1816, 243-252 (2018).</li>
<li>Chen, P. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FGF+regulates+TGF-beta+signaling+and+endothelial-to-mesenchymal+transition+via+control+of+let-7+miRNA+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">FGF regulates TGF-beta signaling and endothelial-to-mesenchymal transition via control of let-7 miRNA expression.</a> Cell Reports. 2 (6), 1684-1696 (2012).</li>
<li>Chen, P. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+TGF-beta+signalling+drives+vascular+inflammation+and+atherosclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Metabolism%22%5BJournal%5D)">Endothelial TGF-beta signalling drives vascular inflammation and atherosclerosis.</a> Nature Metabolism. 1 (9), 912-926 (2019).</li>
<li>Daugherty, A., Rateri, D., Hong, L., Balakrishnan, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+blood+pressure+in+mice+using+volume+pressure+recording%2C+a+tail-cuff+method%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Measuring blood pressure in mice using volume pressure recording, a tail-cuff method.</a> Journal of Visualized Experiments. (27), e1291(2009).</li>
<li>Alam, M. A., Parks, C., Mancarella, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+blood+pressure+measurement+in+freely+moving+mice+using+telemetry%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Long-term blood pressure measurement in freely moving mice using telemetry.</a> Journal of Visualized Experiments. (111), e53991(2016).</li>
<li>Luo, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Invasive+hemodynamic+assessment+for+the+right+ventricular+system+and+hypoxia-induced+pulmonary+arterial+hypertension+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Invasive hemodynamic assessment for the right ventricular system and hypoxia-induced pulmonary arterial hypertension in mice.</a> Journal of Visualized Experiments. (152), e60090(2019).</li>
</ol>

K Zsebo, M Simons i P-Y Chen są naukowymi założycielami i udziałowcami VasoRx, Inc. M Simons jest członkiem Naukowej Rady Doradczej VasoRx, Inc. HJ Duckers jest pracownikiem i udziałowcem VasoRx. Pozostali autorzy deklarują brak sprzecznych interesów.

Stworzono kilka zwierzęcych modeli nadciśnienia płucnego w celu naśladowania zdarzeń zwiększonego oporu naczyniowego płuc u ludzi. Wśród nich model PAH wywołany hipoksją myszy jest szeroko stosowany do oceny skuteczności nowych eksperymentalnych terapii PAH. Badania z wykorzystaniem tego modelu często wymagają podawania związków myszom. W porównaniu z innymi opublikowanymi protokołami iniekcji dożylnej (IV) i inwazyjnej oceny hemodynamicznej, metoda ta zapewnia zarówno ilustrację wizualną, jak i szczegółowy opis.
<p ...

Nadciśnienie tętnicze płucne (PAH) definiuje się jako średnie ciśnienie skurczowe w tętnicy płucnej większe niż 20 mmHg w spoczynku1,2. Jest to postępująca i śmiertelna choroba charakteryzująca się utrzymującym się wzrostem ciśnienia w tętnicy płucnej, prowadzącym do przeciążenia prawej komory i ostatecznie śmierci z powodu niewydolności prawej komory1. Obecnie nie ma lekarstwa na TNP.
Wykorzystanie zwierzęcych modeli nadciśnienia płucnego jest ważne dla testowania skuteczności eksperymentalnych terapii PAH. Wśród tych modeli, model PAH wywołany hipoksją myszy dostarczył kluczowych informacji na temat rozwoju choroby WWA u ludzi grupy 33,4. Badania z wykorzystaniem tego modelu często wymagają podawania związków myszom w celu oceny skuteczności i bezpieczeństwa nowego związku. Dlatego badacze potrzebują szczegółowej procedury eksperymentalnej do dawkowania związków i pomiarów hemodynamicznych, aby zapewnić spójność iniekcji i odtwarzalność pomiaru ciśnienia krwi od początku do końca.
Metody dożylnego wstrzykiwania (IV) i pomiaru ciśnienia krwi zostały opisane w literaturze5,6. W metodologii brakuje jednak ilustracji wizualnej i szczegółowego opisu. Poniżej przedstawiamy kluczowe kroki do udanego wstrzyknięcia bolusa dożylnego oraz dokładnego pomiaru i rejestracji ciśnienia krwi ogólnoustrojowego i prawej komory. Przedstawione tutaj procedury są ważnym źródłem informacji dla badaczy zainteresowanych platformą do podawania związków dożylnie w celu opracowania metody leczenia TNP.

<table><tbody><tr><td>Zestaw szwów prolenowych 5-0</td><td>Ethicon</td><td>8698G</td><td>do zamykania nacięć</td></tr><tr><td>Zestaw szwów nylonowych 8-0</td><td>AROSurgical Instruments</td><td>T06A08N14-13</td><td>do podwiązania</td></tr><tr><td>Komora indukcyjna anestezjologii</td><td>VETEQUIP</td><td>#941444</td><td>Trzyma zwierzę podczas ekspozycji na znieczulenie</td></tr><tr><td>interfejsu cewnika PEC-4D</td><td>Millar</td><td></td><td>do podłączenia cewnika Millar Mikro-Tip do PCU-2000</td></tr><tr><td>Filtry kanistrowe</td><td>węglowe VETEQUIP</td><td>#931401</td><td>&nbsp; aby pomóc usunąć&nbsp; odpady znieczulające&nbsp; gazy</td></tr><tr><td>Waciki bawełniane</td><td>McKesson</td><td>24-106</td><td>do uciskania miejsca wstrzyknięcia w celu zapobieżenia krwawieniu</td></tr><tr><td>Cienkie nożyczki</td><td>Fine Science Tools</td><td>14059-11</td><td>Narzędzia chirurgiczne</td></tr><tr><td>Strzykawka insulinowa 28 G</td><td>EXEL</td><td>26027</td><td>do iniekcji dożylnej żyły szyjnej</td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>COVETRUS</td><td>#029405</td><td>do znieczulenia myszy</td></tr><tr><td>Oprogramowanie LabChart 8</td><td>Narzędzia</td><td></td><td>do analizy danych</td></tr><tr><td>Cewnik ciśnieniowy Mikro-Tip SPR-1000 (1.0 F)</td><td>Millar</td><td></td><td>do inwazyjnego pomiaru ciśnienia krwi</td></tr><tr><td>Igła-25 G</td><td>BD</td><td>305124</td><td>do wykonania małego otworu w naczyniu</td></tr><tr><td>Kontroler tlenu Czujnik tlenu ProOx</td><td>BioSpherix</td><td>E702</td><td>do monitorowania stężenia tlenu</td></tr><tr><td>Jednostka kontroli ciśnienia PCU-2000 Millar</td><td></td><td></td><td>do podłączenia cewnika Millar Mikro-Tip do PowerLab 4/35</td></tr><tr><td>PowerLab 4/35</td><td>ADInstruments</td><td></td><td>for Data Acquisition. Badacz musi podłączyć PowerLab 4/35 do osobistego laptopa zawierającego oprogramowanie LabChart 8 w celu działania.</td></tr><tr><td>Prism 8</td><td>GraphPad</td><td></td><td>do statystyk i wykresów naukowych</td></tr><tr><td>Półzamykalna komora do hipoksji</td><td>BioSpherix</td><td></td><td>: sztuczne środowisko, które symuluje warunki panujące na dużych wysokościach dla zwierząt</td></tr><tr><td>Nożyczki sprężynowe</td><td>Narzędzia do nauki</td><td>15021-15</td><td>Narzędzia chirurgiczne</td></tr><tr><td>Pęseta Styl 4</td><td>Mikroskopia elektronowa Nauki</td><td>0302-4-PO</td><td>Narzędzia</td></tr> <tr><td>chirurgiczneZwiązek VasoRx 7C1 / let-7 miRNA</td><td>VasoRx, Inc.</td><td>Lot# B2-L-16Apr</td><td>IV związek do wstrzykiwań</td></tr><tr><td>VIP 3000 Waporyzator weterynaryjny</td><td>COLONIAL MEDICAL SUPPLY CO., INC.</td><td></td><td>do dokładnego podawania znieczulenia</td></tr></tbody></table>

wielokrotne dożylne dawkowanie bolusa i inwazyjna ocena hemodynamiczna w modelu nadciśnienia tętniczego płucnej myszy wywołanego niedotlenieniem

Multiple Intravenous Bolus Dosing and Invasive Hemodynamic Assessment in a Hypoxia-Induced Mouse Pulmonary Artery Hypertension Model

Tętnicze nadciśnienie płucne (PAH) jest postępującą chorobą zagrażającą życiu, dotykającą głównie małych tętniczek płucnych. Obecnie nie ma lekarstwa na TNP. Ważne jest, aby odkryć nowe związki, które mogą być stosowane w leczeniu WWA. Model PAH indukowany hipoksją myszy jest szeroko stosowanym modelem do badań nad WWA. Model ten podsumowuje kliniczne objawy choroby WWA grupy 3 u ludzi i jest ważnym narzędziem badawczym do oceny skuteczności nowych eksperymentalnych terapii PAH. Badania z wykorzystaniem tego modelu często wymagają podawania związków u myszy. W przypadku związku, który musi być podawany bezpośrednio do krwiobiegu, optymalizacja podawania dożylnego (IV) jest kluczową częścią procedur eksperymentalnych. Idealnie byłoby, gdyby system iniekcji dożylnych umożliwiał wielokrotne wstrzyknięcia w określonym czasie. Chociaż model PAH wywołany hipoksją myszy jest bardzo popularny w wielu laboratoriach, wykonanie wielokrotnego dożylnego dożylnego dawkowania i inwazyjnej oceny hemodynamicznej w tym modelu jest technicznie trudne. W tym protokole przedstawiamy instrukcje krok po kroku, jak przeprowadzić wielokrotne dawkowanie bolusa dożylnego przez żyłę szyjną myszy oraz wykonać cewnikowanie tętnic i prawej komory w celu oceny hemodynamicznej w mysim modelu PAH wywołanym niedotlenieniem.

Znieczulenie często obniża ciśnienie tętnicze. Dlatego w celu zniesienia ruchów w odpowiedzi na bodziec szkodliwy zastosowano minimalną dawkę znieczulenia. Prawidłowy dostęp do jamy prawej komory można zwizualizować jako zmiany w kształcie fali hemodynamicznej w różnych obszarach układów żylnych (Rysunek 8).
W niniejszym badaniu myszy randomly przydzielono do grupy normoksycznej (21% O2) (n = 10), grupy hipoksji (10% O2) (n = 10) lub grupy le...

Ten protokół krok po kroku przeprowadza wielokrotne dożylne podawanie dawki bolusa i inwazyjne monitorowanie hemodynamiczne u myszy. Badacze mogą wykorzystać ten protokół do przyszłych badań przesiewowych związków terapeutycznych w kierunku nadciśnienia tętniczego płucnego.

Wielokrotne dożylne dawkowanie bolusa i inwazyjna ocena hemodynamiczna w modelu nadciśnienia tętniczego płucnej myszy wywołanego niedotlenieniem

Pulmonary arterial hypertension (PAH) is a progressive life-threatening disease, primarily affecting small pulmonary arterioles of the lung. Currently, ...

W przypadku związku, który musi być podawany bezpośrednio do krwiobiegu, optymalizacja podawania dożylnego jest kluczową częścią procedury eksperymentalnej. Nasz szczegółowy protokół zawiera instrukcje krok po kroku, jak przeprowadzić wielokrotne dożylne dawkowanie bolusa przez żyłę szyjną myszy oraz jak wykonać cewnikowanie tętnicze i prawe komorowe w celu dokładnej oceny hemodynamicznej w modelu niedotlenienia tętniczego płuc u myszy. Przedstawione tutaj procedury są ważnymi wynikami dla badaczy zainteresowanych platformą podawania dożylnego pierwiastka w celu opracowania metody leczenia pierwotnego nadciśnienia tętniczego.Badacze mogą użyć tej metody wstrzykiwania bolusa do żyły szyjnej do badań przesiewowych związków związanych z opracowywaniem leków w dowolnych modelach chorób myszy. Skuteczne wstrzyknięcie bolusa dożylnego i pomiary ciśnienia krwi wymagają dużej wprawy. Aby rozpocząć, wyjmij mysz z komory anestezjologicznej.Umieść znieczuloną mysz w pozycji leżącej na platformie iniekcyjnej pod mikroskopem preparacyjnym. Utrzymuj znieczulenie przez stożek nosowy z 1,5% izofluranem i delikatnie przytrzymuj cztery nogi taśmą klejącą, aby unieruchomić ciało. Delikatnie wyszoruj obszar chirurgiczny trzy razy trzema naprzemiennymi rundami roztworu jodu powidonu i 70% etanolu.Po wykonaniu 0,5 centymetrowego cięcia podłużnego za pomocą kleszczy oddzielij tkankę mięśniową i tłuszczową oraz zlokalizuj prawą żyłę szyjną zewnętrzną. Następnie wprowadź sterylną igłę 28G do żyły szyjnej. Ze skosem igły skierowanym do góry.Powoli nacisnąć tłok strzykawki, aby wstrzyknąć związek do żyły. Pozostaw igłę w żyle przez dodatkowe 10 sekund, aby zapobiec cofaniu się. Wyjąć igłę i za pomocą bawełnianego wacika uciskać miejsce wstrzyknięcia, aby zapobiec krwawieniu.Zszyj skórę szwem 5/0 i umieść zwierzę w klatce rekonwalescencyjnej z dnem klatki przykrytym ręcznikiem papierowym bez ściółki. Najpierw zmierz odległość od miejsca wprowadzenia cewnika do żądanego miejsca końcówki cewnika. Zaznacz dwa oznaczenia odległości cewnika, aby zapewnić wizualne wskazanie głębokości wprowadzenia, nałóż maść weterynaryjną bezpośrednio na powierzchnię oczu myszy, aby zapobiec wysuszeniu.Umieścić mysz w pozycji leżącej na plecach na platformie iniekcyjnej pod mikroskopem preparacyjnym. Po nacięciu skóry od żuchwy do mostka należy oddzielić gruczoły ślinowe i odsłonić tchawicę. Umieść 0,5 mililitra PBS w jamie, aby spowolnić rozwój skurczu naczyń podczas manipulowania tętnicą szyjną.Ostrożnie odizoluj pięciomilimetrowy odcinek prawej tętnicy szyjnej, umieszczając kawałek białego papieru pod naczyniem jako tło. Korzystanie z 8-0 szew, zawiąż stały węzeł, aby zamknąć czaszkowy koniec naczynia. Następnie zawiąż pierwszy luźny węzeł, aby tymczasowo zablokować przepływ krwi z aorty.Następnie zawiąż drugi luźny węzeł między pierwszymi dwoma szwami. Za pomocą igły 25G wykonaj mały otwór, który jest wystarczająco duży, aby przejść przez cewnik w jednej linii z naczyniem między stałym a drugim luźnym węzłem. Przytrzymaj cewnik w odległości 1.5 cala od końcówki i delikatnie włóż końcówkę cewnika przez otwór tętnicy.Zaciśnij drugi luźny węzeł wokół cewnika i naczynia, które nadal umożliwia przejście cewnika. Delikatnie zwolnij pierwszy luźny węzeł. Kontynuuj wprowadzanie cewnika w kierunku aorty wstępującej zgodnie z oznaczeniem na cewniku, aż analiza ciśnienia wykaże profil ciśnienia tętniczego krwi.Rejestruj ogólnoustrojowe dane dotyczące ciśnienia krwi za pomocą systemu akwizycji danych i oprogramowania. Poluzuj środkowy węzeł szwu, aby umożliwić wyciągnięcie cewnika. Następnie zapnij pierwszy luźny węzeł, aby zapobiec krwawieniu i wyciągnij cewnik z tętnicy szyjnej.Ostrożnie odizoluj prawą żyłę szyjną zewnętrzną od otaczającej tkanki łącznej. Korzystanie z 8-0 Zszyć, podwiązać wszystkie małe gałęzie i zawiązać stały węzeł, aby zamknąć czaszkowy koniec naczynia. Następnie zawiąż luźny węzeł na ogonowym końcu naczynia.Użyj igły 25G, aby zrobić mały otwór proksymalnie do stałego węzła. Przytrzymaj cewnik i włóż cewnik do nacięcia żyły I zaciśnij węzeł ogonowy wokół cewnika i naczynia. Powoli wepchnij cewnik do prawego serca.Monitoruj głębokość końcówki cewnika na podstawie znaku cewnika. Oceń położenie końcówki cewnika zgodnie ze śledzeniem fal ciśnienia w oprogramowaniu. Gdy końcówka cewnika znajdzie się w prawej komorze, monitor pokaże typowe śledzenie ciśnienia skurczowego w prawej komorze serca.Utrzymuj cewnik stabilnie i zbieraj dane przez pięć minut. Po zakończeniu zapisu ostrożnie wyciągnij cewnik i obserwuj, czy nie ma zapisu ciśnienia. Zawiąż węzeł ogonowy wokół naczynia.Umieść cewnik z powrotem w roztworze PBS. Podczas cewnikowania prawej komory serca w czarnej myszy sześciokomorowej C57 kontrolowanej przez normoksję uzyskano udany dostęp do komory prawej komory, co widać po zmianie przebiegu hemodynamicznego w różnych obszarach układu żylnego. Ogólnoustrojowe ciśnienie krwi i ciśnienie skurczowe prawej komory mierzono u myszy z zamkniętą klatką piersiową cztery tygodnie po ekspozycji na niedotlenienie lub normoksję.W porównaniu z grupą z normoksją, ciśnienie skurczowe prawej komory było znacznie zwiększone w grupie niedotlenionej. Leczenie związkiem mikro RNA 7C1/let-7 skutkowało istotnym obniżeniem ciśnienia skurczowego prawej komory w porównaniu z grupą niedotlenioną, natomiast ogólnoustrojowe ciśnienie krwi nie uległo zmianie w żadnej z grup. Ocena ciśnienia skurczowego czerwonej komory u myszy z zamkniętą klatką piersiową jest wyzwaniem ze względu na złożoną anatomię czerwonej komory.Badacze powinni unikać długotrwałych i powtarzających się prób cewnikowania czerwonej komory. Nasza procedura dawkowania szyjnego i bolusa może być stosowana do badań przesiewowych związków związanych z opracowywaniem leków w dowolnych modelach chorób myszy. Możemy wykorzystać dożylny korzeń platformy do podawania związków w celu opracowania metody leczenia nadciśnienia tętniczego płucnego.

multiple-intravenous-bolus-dosing-invasive-hemodynamic-assessment

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Ten film przedstawia procedurę replikacji udaru zakrzepowego w modelu mysim poprzez zablokowanie prawej tętnicy szyjnej wspólnej i wystawienie myszy na działanie środowiska o niskiej zawartości tlenu. Proces ten zmniejsza przepływ krwi i tlenu do mózgu, powodując tworzenie się skrzepów krwi i uszkodzenie mózgu.

Wywoływanie udaru zakrzepowego poprzez niedotlenienie i niedokrwienie w modelu mysim

Ten artykuł zawiera protokół do echokardiograficznej oceny wielkości prawej komory i nadciśnienia płucnego u myszy.  Zastosowania obejmują określanie fenotypu i seryjną ocenę w transgenicznych i indukowanych toksynami mysich modelach kardiomiopatii i chorób naczyń płucnych.

Echokardiograficzna ocena prawego serca u myszy

Ten film pokazuje, jak nabyć hemodynamikę układu i wątroby u myszy. Całe monitorowanie obejmuje rejestrację parametrów życiowych, ogólnoustrojowego ciśnienia krwi, centralnego ciśnienia żylnego, szybkości przepływu w tętnicy wątrobowej wspólnej i ciśnienia w żyle wrotnej, a także szybkości przepływu wrotnego u myszy.

Monitorowanie parametrów hemodynamicznych układu układowego i wątroby u myszy

Tętnicze nadciśnienie płucne (PAH) to choroba tętniczek płucnych, która prowadzi do ich zatarcia i rozwoju niewydolności prawej komory. Modele WWA u gryzoni mają kluczowe znaczenie dla zrozumienia patofizjologii WWA. Tutaj pokazujemy charakterystykę hemodynamiczną, z cewnikowaniem prawego serca i echokardiografią, u myszy i szczura.

Charakterystyka hemodynamiczna modeli tętniczego nadciśnienia płucnego u gryzoni

Ten artykuł opisuje, jak przeprowadzić obejście krążeniowo-oddechowe u myszy. Ten nowatorski model ułatwi badanie mechanizmów molekularnych związanych z uszkodzeniem narządów.

Obejście krążeniowo-oddechowe w modelu mysim: nowatorskie podejście

Tutaj opisujemy szczegółowy protokół inwazyjnych pomiarów parametrów hemodynamicznych, w tym ciśnienia wrotnego, splanchnicznego przepływu krwi i hemodynamiki ogólnoustrojowej, aby scharakteryzować zespół nadciśnienia wrotnego u szczurów.

Inwazyjna charakterystyka hemodynamiczna zespołu wrotno-nadciśnieniowego u szczurów z marskością wątroby

Przedstawiamy protokół tworzenia dysfunkcji prawej komory u świni poprzez indukowanie ARDS. Wykazano inwazyjne monitorowanie rzutu serca lewej i prawej komory za pomocą sond przepływu wokół aorty i tętnicy płucnej, a także pomiary ciśnienia krwi w aorcie i tętnicy płucnej.

Inwazyjne monitorowanie hemodynamiczne hemodynamiki aorty i tętnic płucnych w dużym modelu zwierzęcym ARDS

Prezentujemy protokół do wywołania i fenotypowania ostrej niewydolności prawego serca w dużym modelu zwierzęcym z przewlekłym nadciśnieniem płucnym. Model ten może być wykorzystany do testowania interwencji terapeutycznych, opracowywania wskaźników prawego serca lub lepszego zrozumienia patofizjologii ostrej prawej niewydolności serca.

Indukcja i fenotypowanie ostrej niewydolności prawego serca w dużym modelu zwierzęcym przewlekłego zakrzepowo-zatorowego nadciśnienia płucnego

Tutaj prezentujemy protokół opisujący technikę pozaustrojowego natleniania błony żylno-żylnej (ECMO) u niezaintubowanej, spontanicznie oddychającej myszy. Ten mysi model ECMO może być skutecznie zaimplementowany w badaniach eksperymentalnych nad ostrymi i końcowymi chorobami płuc.

Żylno-żylne pozaustrojowe utlenowanie błony u myszy

Ten protokół opisuje indukcję nadciśnienia płucnego (PH) u myszy na podstawie ekspozycji na niedotlenienie i wstrzyknięcia antagonisty receptora VEGF. U zwierząt rozwija się PH i przerost prawej komory (RV) 3 tygodnie po rozpoczęciu protokołu. Przedstawiono również charakterystykę funkcjonalną i morfometryczną modelu.

Indukcja i charakterystyka nadciśnienia płucnego u myszy przy użyciu modelu hipoksji/SU5416

Tutaj prezentujemy protokół do przeprowadzenia inwazyjnej oceny hemodynamicznej prawej komory i tętnicy płucnej u myszy przy użyciu metody chirurgicznej na otwartej klatce piersiowej.

Inwazyjna ocena hemodynamiczna układu prawej komory i tętniczego nadciśnienia płucnego wywołanego niedotlenieniem u myszy

Poznaj metodę wielokrotnego dożylnego dawkowania bolusa i inwazyjnej oceny hemodynamicznej w modelu nadciśnienia tętniczego płucnego myszy. Protokół umożliwia precyzyjne badanie ciśnienia krwi i rozwoju terapii.

Wielokrotne dożylne dawkowanie bolusa i inwazyjna ocena hemodynamiczna w modelu nadciśnienia tętniczego płucnej myszy wywołanego niedotlenieniem (Wideo) | JoVE Journal

Wielokrotne dożylne dawkowanie bolusa i inwazyjna ocena hemodynamiczna w modelu nadciśnienia tętniczego płucnej myszy wywołanego niedotlenieniem

Przeglądaj więcej filmów