12 kwietnia 2024
Obecność komórek tucznych na wewnętrznym brzegu i obszarach okołonowotworowych raka wątrobowokomórkowego po resekcji daje korzystne rokowanie. Badanie to potwierdza oprogramowanie do analizy obrazu QuPath jako obiecującą platformę, która może zaspokoić potrzebę odtwarzalności, spójności i dokładności w patologii cyfrowej.
Koncentrujemy się na ocenie rozmieszczenia komórek odpornościowych w mikrośrodowisku guza. Po pierwsze, pomagamy w infiltracji komórek odpornościowych w próbce guza i przylegającej wokół tkanki nowotworowej, a następnie określamy ich wpływ prognostyczny w raku wątrobowokomórkowym. Pierwszym wyzwaniem jest złożoność struktur nowotworowych, co sprawia, że oddzielenie tkanki nowotworowej od nienowotworowej jest trudne.
Ponadto ręczne badania w celu ilościowego oznaczania komórek są czasochłonne. Również barwienie niespecyficzne jest problemem dziedzicznym dla wszystkich metod immunohistochemicznych. Większość rokowań przekazywanych przez komórki główne w zakopanym obszarze guza i wewnętrznym marginesie jest wykorzystywana do pierwszych badań nad komórkami głównymi w raku wątrobowokomórkowym i innych nowotworach.
Taka analiza przyniosłaby korzyści z zastosowania oprogramowania do analizy obrazu w celu dokładnej adnotacji obszaru zainteresowania i prawidłowej kwantyfikacji komórek odpornościowych. Na początek zdobądź obrazy wybarwionych immunologicznie skrawków HCC. Pobierz i otwórz program QuPath 0.4.3.
exe na komputerze. Utwórz nowy folder o odpowiedniej nazwie do organizowania projektów QuPath. Kliknij przycisk tworzenia projektu w lewym górnym rogu oprogramowania i wybierz nowo utworzony folder.
Następnie przeciągnij zeskanowane obrazy do okna oprogramowania QuPath. Gdy pojawi się nowe okno, wybierz ustaw typ obrazu i kliknij H-DAB, a następnie importuj. Aby wyświetlić zaimportowane obrazy, sprawdź listę w lewym oknie menu i kliknij dwukrotnie obraz, aby go otworzyć.
Wybierz plik z menu głównego i kontynuuj zapisywanie obrazów jako projektu. Wybierz narzędzia pędzla lub różdżki w menu głównym, aby dodać adnotację do obszaru guza. W przypadku nieciągłych regionów guza należy opisać każdy region osobno.
Naciśnij i przytrzymaj Control podczas wybierania wszystkich regionów. Następnie kliknij prawym przyciskiem myszy i wybierz edytuj wiele i wybierz scal wybrane. Następnie kliknij automatyczną w menu głównym i wybierz pokaż edytor skryptów.
Skopiuj wymagany skrypt, wklej go do edytora skryptów, a następnie kliknij przycisk Uruchom. Alternatywnie wybierz narzędzie Polilinia z menu głównego, aby dokładnie narysować granicę oddzielającą gniazda komórek złośliwych i przylegającą tkankę nienowotworową. Następnie wybierz obramowanie z menu głównego.
Wybierz obiekty, kliknij adnotację i wybierz, rozwiń adnotacje. Ustaw promień rozprężania na 500 mikrometrów i wybierz płaski jako nasadkę linii. Aktywuj usuń wnętrze i upewnij się, że aktywowany jest ograniczony do rodzica.
Teraz kliknij prawym przyciskiem myszy nowo utworzoną adnotację. Wybierz opcję edytuj pojedynczy i wybierz opcję podziału. Aby poprawnie nazwać regiony z adnotacjami, kliknij prawym przyciskiem myszy adnotację na liście po lewej stronie, wybierz ustaw właściwości i wprowadź odpowiednie nazwy regionów marginesów wewnętrznych i zewnętrznych.
Zdefiniuj pozostały obszar guza jako centrum guza. Rozciągnij obszar okołonowotworowy o szerokości 500 mikrometrów przylegający do zewnętrznego brzegu, jak pokazano wcześniej. Aby uzyskać szczegółową analizę pikseli, wybierz narzędzie prostokąt z menu głównego.
Następnie opisz region obejmujący wszystkie typy pikseli, które mają zostać rozróżnione. Następnie przejdź do menu głównego. Wybierz opcję Analizuj i kliknij przycisk Przetwarzanie wstępne.
Następnie kliknij oszacuj wektor plamy. Po aktywowaniu wizualnego edytora plam wybierz auto i kliknij OK. Nazwij szacowany wektor plamy H-DAB.
W przypadku analizy pikseli alternatywna metoda polega na użyciu narzędzia prostokąt z menu głównego w celu podświetlenia niewielkiej części jądra wybarwionego hematoksyliną. Następnie uzyskaj dostęp do menu po lewej stronie i wybierz obraz. Następnie kliknij dwukrotnie plamę i wybierz tak.
Ponownie użyj narzędzia prostokąta, aby dodać adnotację do małego obszaru wykazującego pozytywne barwienie za pomocą DAB. Następnie wybierz obraz z menu po lewej stronie i kliknij dwukrotnie plamę drugą, a następnie tak. Aby ocenić ułamek obszarowy dodatnich komórek odpornościowych z menu głównego, kliknij opcję klasyfikacji, wybierz klasyfikację pikseli i kliknij utwórz próg.
Następnie ustaw rozdzielczość na wysoką, wybierz kanał DAB i zastosuj wstępny filtr Gaussa o Sigma 0,5. Dostosuj próg w zakresie od 0,2 do 0,3. Zdefiniuj piksele powyżej progu jako dodatnie, a poniżej progu jako ujemne.
Aby wybrać region, wybierz dowolną adnotację, nadaj klasyfikatorowi nazwę, a następnie kliknij Zapisz, Zmierz i OK. Aby udokumentować wyniki, skopiuj wyniki wyświetlane w menu po lewej stronie i przenieś je do arkusza kalkulacyjnego. Wybierz pomiar z górnego menu głównego jako alternatywną metodę.
Następnie wybierz, pokaż pomiary adnotacji. Wybierz opcję kopiuj do schowka i wklej te wyniki do arkusza kalkulacyjnego, aby uzyskać szczegółowy rekord. Na koniec kliknij obraz prawym przyciskiem myszy, przejdź do widoku wielu i kliknij zamknij przeglądarkę, aby zamknąć obraz.
Białko CD117 obserwowano głównie w błonach cytoplazmatycznych zaokrąglonych komórek w zrębie guza i przestrzeniach okołonaczyniowych. Komórki CD117-dodatnie obserwowano również w torebkach guza i obszarach okołonaczyniowych na zewnętrznym brzegu i okołoguzie. Białko NKp46 obserwowano głównie w błonach cytoplazmatycznych zaokrąglonych komórek w przestrzeniach sinusoidalnych, zrębie centrum guza i wewnętrznym brzegu.
Komórki NKp46-dodatnie obserwowano w torebkach wokół gniazd nowotworowych i zrębu dróg wrotnych na zewnętrznym brzegu i obszarach okołonowotworowych. Białko CD1a obserwowano głównie w błonach cytoplazmatycznych zaokrąglonych komórek, rozproszonych lub w agregatach w zrębach i przestrzeniach przypominających sinusoidy w centrum guza i obszarach wewnętrznego marginesu. Komórki CD1a dodatnie znaleziono w sinusoidach i nabłonku dróg żółciowych w okolicy okołoguzowej.
Niniejsze badanie ocenia rozkład komórek odpornościowych w raku hepatokomórkowym (HCC) oraz ich znaczenie prognostyczne. Podkreślono w nim zastosowanie oprogramowania do analizy obrazów QuPath w celu dokładnej kwantyfikacji komórek odpornościowych w guzie i tkankach przyległych.
Ilościowa patologia cyfrowa z wykorzystaniem programu QuPath umożliwia precyzyjne profilowanie komórek odpornościowych w raku hepatokomórkowym (HCC), rozwiązując problemy związane z adnotacją i powtarzalnością analizy mikrośrodowiska guza. Zautomatyzowany pomiar ułamka powierzchni komórek tucznych, komórek dendrytycznych i komórek NK wspiera rzetelną ocenę prognostyczną, dostarczając informacji dla wczesnego etapu odkryć i decyzji w badaniach translacyjnych. Ten schemat pracy zwiększa pewność predykcyjną dla biomarkerów związanych z odpornością i wspiera rozwój portfela projektów w badaniach i rozwoju onkologicznym z uwzględnieniem analizy ryzyka.
Ten cyfrowy przepływ pracy w patologii integruje etapy od wczesnego odkrywania po badania translacyjne, wspierając walidację biomarkerów komórek odpornościowych oraz badania mechanistyczne w HCC i powiązanych modelach onkologicznych.