-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Ortotopowy przeszczep lewego płuca u szczurów
Ortotopowy przeszczep lewego płuca u szczurów
JoVE Journal
Medicine
This content is Free Access.
JoVE Journal Medicine
Orthotopic Left Lung Transplantation in Rats

Ortotopowy przeszczep lewego płuca u szczurów

Full Text
835 Views
08:22 min
July 3, 2025

DOI: 10.3791/68106-v

Hailin Liao*1, Xiaohua Wang*1,2, Yi Lu*1, Wenshan Zhong1, Jiang Shi1, Xihui Huang1, Xu Chen1, Guilin Li1, Penghui Yang2, Chunrong Ju1,2

1State Key Laboratory of Respiratory Diseases, National Clinical Research Center for Respiratory Diseases, Guangzhou Institute of Respiratory Health,the First Affiliated Hospital of Guangzhou Medical University, 2Department of Organ Transplantation,the First Affiliated Hospital of Guangzhou Medical University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol describes an improved technique for orthotopic left lung transplantation in rats, focusing on reducing operational difficulty and improving survival rates. The standardized model allows for better investigation of post-transplant complications, particularly chronic rejection.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Transplantation Biology
  • Experimental Surgery

Background

  • Chronic rejection is a significant barrier to long-term graft survival.
  • Existing techniques for lung transplantation can be complex and difficult to reproduce.
  • A standardized model can facilitate research into post-transplant complications.
  • Improving operational efficiency can enhance survival rates in animal models.

Purpose of Study

  • To develop a reproducible left lung transplantation model.
  • To investigate mechanisms driving long-term graft failure.
  • To improve understanding of chronic rejection in lung transplants.

Methods Used

  • Preparation of donor lung using specific surgical techniques.
  • Use of intravenous catheters for lung transplantation.
  • Heparinization to prevent clot formation during surgery.
  • Post-operative monitoring of lung function via CT imaging.

Main Results

  • Successful transplantation with preserved lung function observed at six months.
  • No significant pathological changes in transplanted lungs compared to sham group.
  • Standardized model showed higher reproducibility and shorter learning curve.
  • Transplanted lungs maintained normal alveolar structures and absence of inflammation.

Conclusions

  • The improved technique enhances the feasibility of lung transplantation studies.
  • Standardization can lead to better understanding of chronic rejection.
  • This model can accelerate translational research for lung transplant recipients.

Frequently Asked Questions

What is the main focus of this study?
The study focuses on developing a standardized technique for left lung transplantation in rats to investigate post-transplant complications.
How does this technique improve upon existing methods?
It offers a shorter learning curve, single operational capability, and higher reproducibility.
What are the key findings regarding lung function post-transplant?
CT imaging showed that the ventilation of transplanted lungs was comparable to the sham group, indicating preserved lung function.
What surgical preparations are required for the donor lung?
The donor lung requires careful harvesting, heparinization, and preservation in saline until implantation.
What future research directions does this study suggest?
Future research will focus on studying chronic rejection to improve long-term survival rates of lung transplant recipients.

Protokół ten opisuje ulepszoną technikę ortotopowego przeszczepu lewego płuca u szczurów, koncentrując się na zmniejszeniu trudności operacyjnych i poprawie wskaźników przeżycia.

Moje badania koncentrowały się na opracowaniu ustandaryzowanego, powtarzalnego modelu przeszczepu lewego płuca w celu zbadania powikłań po przeszczepie, w szczególności przewlekłego odrzucenia, oraz lepszego zrozumienia mechanizmu powodującego długoterminowe niepowodzenie przeszczepu. Nasz protokół oferuje krótszą krzywą uczenia się, pojedynczą zdolność operacyjną i wyższą odtwarzalność w porównaniu z istniejącymi technikami. Nasz ustandaryzowany model bezpośredniego przeszczepu płuc stanowi niezawodną platformę do badania powikłań po przeszczepie płuc i może przyspieszyć badania translacyjne w celu poprawy przeżywalności przeszczepów.

W przyszłości nasze laboratorium skupi się na badaniu przewlekłego odrzucania przeszczepu płuc po przeszczepie płuc w celu poprawy długoterminowego wskaźnika przeżycia biorców przeszczepu płuc. Na początek zaopatrz się w cewniki i ostrza dożylne o rozmiarze 14 i 16. Przytnij cewniki do mankietu z ogonem z ostrzem.

Następnie podziel każdy mankiet na ciało i ogon, każdy o długości około dwóch do trzech milimetrów. Za pomocą skalpela utwórz powierzchowne zadrapania na korpusie mankietu, aby zwiększyć tarcie w celu zamocowania szwów. Aby pobrać płuco dawcy, cofnij język znieczulonego szczura na zewnątrz i do góry za pomocą kleszczy.

Umieść lampę chirurgiczną przed szyją, aby wyraźnie oświetlić otwór krtaniowy. Teraz włóż kaniulę dożylną o rozmiarze 14 do dróg oddechowych przez głośnię. Ustaw wentylator w trybie sterowania ciśnieniem.

Następnie wprowadź parametry wagi, dostosuj ciśnienie do 15 centymetrów wody i podłącz wentylator. Obserwuj unoszenie się i opadanie klatki piersiowej, aby zapewnić synchronizację z częstotliwością wentylatora. Następnie przymocuj kończyny i głowę za pomocą taśmy lub pasów.

Wykonaj nacięcie w linii środkowej wzdłuż ściany brzucha. Wstrzyknąć heparynę przez odsłoniętą żyłę otrzewnową, a następnie pozostawić krążenie ogólnoustrojowe na trzy minuty, aby zapewnić całkowitą heparynizację. Przetnij przeponę i otwórz jamę klatki piersiowej od linii środkowej mostka.

Następnie przymocuj ścianę klatki piersiowej po obu stronach za pomocą hemostatów. Usuń grasicę, aby odsłonić narządy jamy klatki piersiowej. Kolejno odetnij żyłę główną górną, żyłę główną dolną oraz lewą i prawą małżowinę uszną.

Teraz wstrzyknij zimną sól fizjologiczną do korzenia tętnicy płucnej za pomocą 20-mililitrowej strzykawki przez jedną minutę w celu perfuzji pod niskim ciśnieniem, aż płuco dawcy zmieni kolor na całkowicie białe. Przeciąć tkanki łączące płuco dawcy i wyekstrahować serce dawcy i płuco w bloku. Namocz blok płuco-serce dawcy we wstępnie schłodzonej soli fizjologicznej.

Umieść blok płuco-serce na lodzie pod mikroskopem. Chwyć tchawicę hemostatem i zabezpiecz ją plasteliną. Przykryj płuca mokrym, sterylnym papierem do soczewek.

Teraz użyj kleszczy, aby oddzielić tętnicę płucną, oskrzela i żyłę płucną pod mikroskopem. Podwiązać oskrzela w pobliżu płuca za pomocą szwów chirurgicznych 6-0. Użyj nożyczek sprężynowych, aby przeciąć tętnicę płucną, oskrzela i żyłę płucną.

Wyciągnij tętnicę płucną, oskrzela i żyłę płucną z odpowiednich mankietów wykonanych z cewników do wgłębień o rozmiarze 16, 14 i 16. Przymocuj ścianki rurki do mankietu za pomocą 8-0 szwy chirurgiczne. Płuca dawcy należy przechowywać w roztworze soli fizjologicznej i umieścić je z powrotem na lodzie do czasu implantacji.

Wykonać depilację w lewy obszar piersiowy zwierzęcia biorcy. Ustaw zwierzę w prawej bocznej pozycji odleżynowej na termostatycznym stole operacyjnym. Teraz wykonaj nacięcie przez skórę i ścianę klatki piersiowej w miejscu impulsu wierzchołkowego w czwartej przestrzeni międzyżebrowej, aby uzyskać dostęp do jamy klatki piersiowej.

Użyj zwijacza powiek, aby otworzyć klatkę piersiową. Następnie delikatnie odepchnij lewe płuco na bok za pomocą wilgotnego bawełnianego wacika, aby odsłonić i ostro przeciąć dolne więzadło płucne. Następnie chwyć lewe płuco kleszczami i wycofaj je na zewnątrz klatki piersiowej.

Zabezpiecz wnękę hemostatem, a następnie ustabilizuj ją modeliną. Teraz wypreparuj wnękę płucną, aby oddzielić tętnicę płucną, żyłę płucną i oskrzela. Zacisnąć proksymalne końce tętnicy płucnej, żyły płucnej i oskrzeli za pomocą zacisków naczyniowych.

Wstępnie zwiąż tętnicę płucną, oskrzela i żyłę płucną biorcy za pomocą 8-0 Szwy chirurgiczne do szybkiego zespolenia. Przytnij platformę na zaciśniętym lewym płucu biorcy, aby ułatwić umieszczenie płuca dawcy. Wykonaj małe nacięcia na dystalnych końcach tętnicy płucnej, żyły płucnej i oskrzeli.

Przepłukać tętnicę płucną i żyłę płucną heparynizowaną solą fizjologiczną, aby zapobiec tworzeniu się skrzepów. Następnie należy pobrać płuco dawcy z lodu i umieścić je na przygotowanej platformie lewego płuca biorcy. Użyj kleszczy, aby podnieść jedną stronę wyciętego otworu, a następnie sekwencyjnie wszczepij i podwiąż mankiety tętnicy płucnej, żyły płucnej i oskrzeli do biorcy.

Otwórz mikroklips hemostatyczny i obserwuj, jak płuco dawcy zmienia kolor z białego na czerwony. Sprawdź miejsca zespolenia pod kątem oznak krwawienia. Teraz usuń lewe płuco biorcy i włóż płuco dawcy do jamy klatki piersiowej.

Wytrzyj klatkę piersiową do sucha sterylną bawełną. Następnie zamknij klatkę piersiową warstwa po warstwie. Poczekaj na spontaniczne odzyskanie oddechu przed odłączeniem respiratora.

Po godzinie odbiorcy mogli swobodnie jeść. Sześć miesięcy po przeszczepieniu obrazowanie CT wykazało, że wentylacja przeszczepionych płuc była porównywalna z grupą pozorowaną, co wskazuje na zachowaną czynność płuc. Makroskopowy wygląd płuc nie różnił się widocznie między grupą pozorowaną a przeszczepioną, nie wykazując żadnych oznak pogorszenia lub nieprawidłowości.

Zabarwienie tkanek płuc hematoksyną i eozyną nie wykazało istotnych zmian patologicznych w przeszczepionych płucach w porównaniu z grupą pozorowaną, z zachowanymi strukturami pęcherzyków płucnych i brakiem nacieku zapalnego.

Explore More Videos

Medycyna wydanie 221 Przeszczep płuc model przeszczepu płuc szczura technika mankietowa zimne niedokrwienie ciepłe niedokrwienie

Related Videos

Ortotopowy przeszczep kończyn tylnych u szczurów

14:03

Ortotopowy przeszczep kończyn tylnych u szczurów

Related Videos

12.3K Views

Rozwój zarostowego zapalenia oskrzelików w mysim modelu ortotopowego przeszczepu płuc

10:01

Rozwój zarostowego zapalenia oskrzelików w mysim modelu ortotopowego przeszczepu płuc

Related Videos

21.2K Views

Ortotopowy przeszczep wątroby u szczurów

18:25

Ortotopowy przeszczep wątroby u szczurów

Related Videos

31.5K Views

Zabiegi chirurgiczne częściowego ortotopowego przeszczepu wątroby na szczurze modelach z rekonstrukcją tętnic wątrobowych

18:47

Zabiegi chirurgiczne częściowego ortotopowego przeszczepu wątroby na szczurze modelach z rekonstrukcją tętnic wątrobowych

Related Videos

37.4K Views

Szczur Heterotopowe serce brzuszne/przeszczep pojedynczego płuca w konfiguracji z obciążeniem objętościowym

06:16

Szczur Heterotopowe serce brzuszne/przeszczep pojedynczego płuca w konfiguracji z obciążeniem objętościowym

Related Videos

8.8K Views

Lewa pneumonektomia w połączeniu z monokrotaliną lub Sugenem jako model nadciśnienia płucnego u szczurów

07:29

Lewa pneumonektomia w połączeniu z monokrotaliną lub Sugenem jako model nadciśnienia płucnego u szczurów

Related Videos

11.4K Views

Model immunologiczny do heterotopowego przeszczepu komórek serca i mięśnia sercowego u szczurów

09:25

Model immunologiczny do heterotopowego przeszczepu komórek serca i mięśnia sercowego u szczurów

Related Videos

8.4K Views

Model przeszczepu płuc szczura uszkodzenia cieplnego niedokrwienia/reperfuzji: optymalizacje w celu poprawy wyników

07:37

Model przeszczepu płuc szczura uszkodzenia cieplnego niedokrwienia/reperfuzji: optymalizacje w celu poprawy wyników

Related Videos

3.5K Views

Przeszczepienie ortotopowe lewego płuca w modelu młodocianych świń do ESLP

06:55

Przeszczepienie ortotopowe lewego płuca w modelu młodocianych świń do ESLP

Related Videos

2.2K Views

Ustanowienie modelu szczura perfuzyjnego płuc ex vivo dla wglądów translacyjnych w transplantację płuc

05:49

Ustanowienie modelu szczura perfuzyjnego płuc ex vivo dla wglądów translacyjnych w transplantację płuc

Related Videos

1.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code