Name: Translacyjny chirurgiczny model wieprzowy dla powstawania zrostów wewnątrzbrzusznych po operacji (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-03-13T12:55:00.000+00:00
Duration: 3 min 47 s
Description: Poznaj model chirurgiczny wieprzowy do badania powstawania zrostów wewnątrzbrzusznych po operacji. Protokół obejmuje resekcję jelita cienkiego z anastomozą i abrazję otrzewnej, co pozwala oceniać terapie przeciwzrostowe.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Badania opisane w tej publikacji zostały wsparte przez program Stanford SPARK, grant American College of Surgeons Surgical Adhesions Improvement Project, hojnie wspierany przez rodzinę Carlino, oraz Katedrę Chirurgii Uniwersytetu Stanforda. Chcielibyśmy podziękować Stanford Veterinary Service Center oraz personelowi Comparative Animal Pavilion. Wszystkie pomysły, analizy, odniesienia i liczby zostały stworzone i zweryfikowane przez autorów. Narzędzia AI były używane tylko do drobnych poprawek językowych i gramatycznych.

Oświadczenie etyczne
Wszystkie badania na świniach były przeprowadzane według protokołów zatwierdzonych przez protokół #34052 Komitetu ds. Opieki i Użycia Zwierząt Uniwersytetu Stanforda (IACUC), jak opisano wcześniejw 28.
1. Hodowla zwierząt
<ol>
	<li>Zdobądź mini świnki Yucatan (zalecane 9-12 kg, 7-9 tygodni) od sprawdzonego sprzedawcy. Zalecamy n = 4 świnie na kohortę. Zwierzęta domowe w parach w pomieszczeniach z kontrolowaną światłem i temperaturą.</li>
	<li>Zapewnij standardowe jedzenie dla wieprzi ad libitum. Zwierzęta powinny mieć stały dostęp do wody, aby uniknąć odwodnienia. UWAGA: Zwierzęta były głodzone przez 12 godzin przed operacją i ostatecznym pobraniem.</li>
	<li>Monitorować i rejestrować masę ciała oraz ogólny stan zdrowia w regularnych odstępach czasu zgodnie ze standardami instytucjonalnymi.</li>
</ol>
2. Znieczulenie i przygotowanie przedoperacyjne
<ol>
	<li>Świnie uśpione w domowych terrarium, stosujące domięśniową ksylazynę (2,2 mg/kg, domięśniowo) oraz ketaminę (12 mg/kg domięśniowo). Uzyskaj dostęp dożylny (dożylny). Ostrożnie przetransportuj zwierzęta do sali operacyjnej, gdy weterynarz uzna za odpowiednią sedację. Prosimy o zapoznanie się z Tabelą Uzupełniającą w celu uzyskania informacji o znieczuleniu i analgezji, ponieważ protokoły mogą się różnić w zależności od instytucji.</li>
	<li>Po wejściu do sali operacyjnej zabezpiecz drogi oddechowe zwierzęcia za pomocą intubacji endotchawicznej. Utrzymuj znieczulenie przez cały zabieg, podając izofluran w tlenie za pomocą precyzyjnego waporyzatora przez obwód znieczulony wyposażony w usuwanie gazów ścielinowych pod nadzorem licencjonowanego weterynarza.</li>
	<li>Podawaj dożylnie (dożylnie), leki przeciwwymiotne (Cerenia 1-2 mg/kg dożylnie), leki zwężające naczynia oraz inotropy w razie potrzeby w leczeniu niedociążenia śródoperacyjnego, aby uniknąć hipoperfuzji jelit i potencjalnego ryzyka wycieku zespolenia. Szczegóły dotyczące leków znajdują się w Tabeli Uzupełniającej , schematy leczenia różnią się w zależności od instytucji.</li>
	<li>Stosuj maść okulistą, aby nawilżyć oczy i zapobiec otarciom rogówki. Podaj cefazolinę (25 mg/kg, dożylnie) lub równoważny antybiotyk na godzinę przed nacięciem, aby zapobiec infekcji rany. Należy stosować intraoperacyjny schemat leczenia przeciwbólowego zgodnie ze standardami weterynaryjnymi instytucji. Schemat referencyjny znajduje się w Tabeli Uzupełniającej i obejmuje kombinację karpofenu (25 mg/kg dożylnie), buprenorfiny ER (0,18 mg/kg dożylnie).</li>
</ol>
3. Zabieg chirurgiczny
<ol>
	<li>Ułóż zwierzątko na plecach na termoforze, aby utrzymać normotermię. Mierz nasycenie tlenem (SpO2) za pomocą pulsoksymetru, puls za pomocą monitora tętna oraz temperaturę co 10 minut.</li>
	<li>Usuń włosy z brzucha za pomocą maszynki do obcinania, a następnie przygotuj skórę jednym wymazem alkoholowym, a następnie gazą nasączoną povidon-jodem. Usuń nadmiar środka antyseptycznego z odwłoka za pomocą sterylnego ręcznika.</li>
	<li>Okryj brzuch sterylnymi ręcznikami i chirurgicznymi zasłonami, aby zachować sterylność przez cały zabieg. Wprowadzić lidokainę (2 mg/kg podskórnie (SQ)) do ściany brzucha w planowanym miejscu nacięcia za pomocą igły o rozmiarze 25 gauge.</li>
	<li>Wykonaj laparotomię środkową, wykonując nacięcie o pełnej grubości przez skórę, tkankę podskórną i mięśnie ściany brzucha wzdłuż linea alba, aby wejść do jamy otrzewnej za pomocą skalpela z 10 ostrzami. Załóż retraktory ściany brzucha i wypruż jelita.</li>
	<li>Zidentyfikuj obszar jelita ~10-15 cm bliskogo od zastawki kościowej i wyciąj nożyczkami segment jelita cienkiego o średnicy 2,5 cm (1 cal). Usunięcie powiązanej krezki elektrokauterem w celu wybuchu hemostazy naczyń krezkowych. Zamknij oba otwarte końce jelita za pomocą przerwanych szwów jedwabnych 3-0, aby uzyskać szczelne zamknięcie. Wykonaj dwuwarstwową, boczną anastomozę pierwotną (funkcjonalną end-to-end). Zrekonstruuj wewnętrzną warstwę lumenu syntetycznym szwem 3-0 chłonnym w sposób biegający, a zewnętrzną warstwę z niechłonnym szwem 3-0. Staraj się ograniczyć wycieki jelit podczas całego zabiegu.</li>
	<li>Delikatnie zetłuknij przekrój otrzewnej ciemieniowej o wymiarach 3 x 5 cm wzdłuż prawej ściany brzucha, używając sterylnej gazy lub elektrokauterycznej poduszki drapnej, aż powierzchnia otrzewna będzie postrzępiona lub pojawi się obrzęk podpożyciowy w ścianie brzucha (10-15 ruchów przy średnim ciśnieniu). Lewa ściana boczna brzucha może być nieścierana, aby służyć jako techniczna kontrola, choć przy tym modelu stochastyczne zrosty tworzą się w całej części jamy brzusznej w sposób podobny do chorób ludzkich.</li>
	<li>Przesuń jelito do jamy brzusznej i usuń retraktory ściany brzucha. Płukaj brzuch 1 litrem podgrzanej bezpłodnej soli fizjologicznej, usuń cały płyn i potwierdź hemostazę (brak aktywnego krwawienia) przed zamknięciem.</li>
	<li>Zamknij powięzi szwem 2-0 chłonnym. Zamknij skórę biegającym ściegiem 2-0 lub 3-0 niechłonnym baseballowym i przykryj nacięcie sterylnym opatrunkiem. Średni czas trwania zabiegu wynosił 1 godzinę.</li>
	<li>Na koniec zabiegu podaj Atipamezol (0,2 mg/kg dożylnie), aby odwrócić sedację przed unieszkodliwieniem. Ekstubuj zwierzęta po powrocie do samoistnego oddychania. Monitoruj parametry życiowe (puls, nasycenie tlenem, temperatura, ciśnienie krwi) do pełnego wyzdrowienia po znieczuleniu.</li>
</ol>
4. Opieka pooperacyjna
<ol>
	<li>Podawaj karprofen (25-50 mg) dwa razy dziennie doustnie (PO) przez pierwsze 3 dni po zabiegu, a następnie w razie potrzeby (PRN) na ból. Utrzymuj zwierzęta na diecie płynnej bogatej w białko (1,5 butelki dwa razy dziennie) przez pierwsze 3 dni po operacji. UWAGA: Warto zauważyć, że choć rutynowe usuwanie szwów 10–14 dni po operacji jest powszechną praktyką, u zwierząt bez oznak infekcji rany lub rozprzestrzeniania się pozostawiano szwy, aby uniknąć dodatkowej ekspozycji na znieczulenie przed planowanym 4-tygodniowym pobraniem.</li>
	<li>Podawaj amoksycylinę (10 mg/kg) dwa razy dziennie doustnie przez tydzień, a następnie PRN w przypadku objawów infekcji rany (zaczerwienienie, ciepło, obrzęk z lub bez drenażu).</li>
	<li>Sprawdzajcie zwierzęta dwa razy dziennie pod kątem apetytu, aktywności, funkcji jelit i integralności rany. Jeśli obawiają się infekcji, omów dawkę i czas trwania antybiotyku z weterynarzem. Sterylny opatrunek powinien być założony przez pierwsze 3 dni po zabiegu, aby zminimalizować ryzyko infekcji rany. Rejestruj wagę w odstępach 2-3 dni, aby zapewnić utrzymanie wagi po operacji.</li>
	<li>Przejście zwierząt na stałe jedzenie zaczynając od 4. dnia po operacji (POD4). Łącz spożycie stałego jedzenia dodatkową dietą płynną bogatą w białko, aż znosisz wystarczającą ilość kalorii z samej pokarmy stałej.</li>
</ol>
5. Eutanazja
<ol>
	<li>Uśpienie zwierząt po 4 tygodniach pod nadzorem weterynaryjnym przed sekcją zwłok i pobraniem tkanek za pomocą dożylnego roztworu eutanazji zgodnie ze standardami instytucjonalnymi i AVMA.</li>
	<li>Oceniaj zrosty bardzo dokładnie. Natychmiast pobierz tkanki i próbki krwi do dalszych analiz. Utylizuj wszystkie odpady biologiczne i farmaceutyczne zgodnie z wytycznymi dotyczącymi środowiska, zdrowia i bezpieczeństwa w Twojej instytucji.</li>
</ol>

<ol><li>Ellis, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adhesion-related+hospital+readmissions+after+abdominal+and+pelvic+surgery%3A+a+retrospective+cohort+study%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Adhesion-related hospital readmissions after abdominal and pelvic surgery: a retrospective cohort study.</a> Lancet. 353 (9163), 1476-1480 (1999).</li>
<li>Stommel, M. W. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multicenter+Observational+Study+of+Adhesion+Formation+After+Open-and+Laparoscopic+Surgery+for+Colorectal+Cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Surg%22%5BJournal%5D)">Multicenter Observational Study of Adhesion Formation After Open-and Laparoscopic Surgery for Colorectal Cancer.</a> Ann. Surg. 267 (4), 743(2018).</li>
<li>Krielen, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adhesion-related+readmissions+after+open+and+laparoscopic+colorectal+surgery+in+16+524+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Colorectal+Dis%22%5BJournal%5D)">Adhesion-related readmissions after open and laparoscopic colorectal surgery in 16 524 patients.</a> Colorectal Dis. 24 (4), 520-529 (2022).</li>
<li>Krielen, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adhesion-related+readmissions+after+open+and+laparoscopic+surgery%3A+a+retrospective+cohort+study+%28SCAR+update%29%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Adhesion-related readmissions after open and laparoscopic surgery: a retrospective cohort study (SCAR update).</a> Lancet. 395 (10217), 32636-32644 (2020).</li>
<li>Tabibian, N., Swehli, E., Boyd, A., Umbreen, A., Tabibian, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abdominal+adhesions%3A+A+practical+review+of+an+often+overlooked+entity%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Med+and+Surg+%28Lond%29%22%5BJournal%5D)">Abdominal adhesions: A practical review of an often overlooked entity.</a> Ann Med and Surg (Lond). 15, 9-13 (2017).</li>
<li>van den Beukel, B. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+treatment+of+adhesion-related+chronic+abdominal+and+pelvic+pain+after+gynaecological+and+general+surgery%3A+a+systematic+review+and+meta-analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Reprod+Update%22%5BJournal%5D)">Surgical treatment of adhesion-related chronic abdominal and pelvic pain after gynaecological and general surgery: a systematic review and meta-analysis.</a> Hum Reprod Update. 23 (3), 276-288 (2017).</li>
<li>Duron, J. -J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Postoperative+intraperitoneal+adhesion+pathophysiology%5BTitle%5D)+AND+%22Colorectal+Dis%22%5BJournal%5D)">Postoperative intraperitoneal adhesion pathophysiology.</a> Colorectal Dis. 9 (s2), 14-24 (2007).</li>
<li>Carmichael, S. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Scoping+Review+of+Animal+Models+for+Development+of+Abdominal+Adhesion+Prevention+Strategies%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">A Scoping Review of Animal Models for Development of Abdominal Adhesion Prevention Strategies.</a> J Surg Res. 302, 364-375 (2024).</li>
<li>Marshall, C. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Creation+of+Abdominal+Adhesions+in+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Creation of Abdominal Adhesions in Mice.</a> J Vis Exp. (114), e54450(2016).</li>
<li>Kraemer, B., Wallwiener, C., Rajab, T. K., Brochhausen, C., Wallwiener, M., Rothmund, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Standardised+models+for+inducing+experimental+peritoneal+adhesions+in+female+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+Res+Int%22%5BJournal%5D)">Standardised models for inducing experimental peritoneal adhesions in female rats.</a> Biomed Res Int. 2014, 435056(2014).</li>
<li>Whang, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+search+of+the+best+peritoneal+adhesion+model%3A+comparison+of+different+techniques+in+a+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">In search of the best peritoneal adhesion model: comparison of different techniques in a rat model.</a> J Surg Res. 167 (2), 245-250 (2011).</li>
<li>Dawson, H. D., Smith, A. D., Chen, C., Urban, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+in-depth+comparison+of+the+porcine%2C+murine+and+human+inflammasomes%3B+lessons+from+the+porcine+genome+and+transcriptome%5BTitle%5D)+AND+%22Vet.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">An in-depth comparison of the porcine, murine and human inflammasomes; lessons from the porcine genome and transcriptome.</a> Vet. Microbiol. 202, 2-15 (2017).</li>
<li>Hassanabad, A. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prevention+of+Post-Operative+Adhesions%3A+A+Comprehensive+Review+of+Present+and+Emerging+Strategies%5BTitle%5D)+AND+%22Biomolecules%22%5BJournal%5D)">Prevention of Post-Operative Adhesions: A Comprehensive Review of Present and Emerging Strategies.</a> Biomolecules. 11 (7), 1027(2021).</li>
<li>Burns, J. W., Colt, M. J., Burgees, L. S., Skinner, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preclinical+evaluation+of+Seprafilm+bioresorbable+membrane%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Surg+Suppl%22%5BJournal%5D)">Preclinical evaluation of Seprafilm bioresorbable membrane.</a> Eur J Surg Suppl. (577), 40-48 (1997).</li>
<li>Trew, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gynaecological+endoscopic+evaluation+of+4%25+icodextrin+solution%3A+a+European%2C+multicentre%2C+double-blind%2C+randomized+study+of+the+efficacy+and+safety+in+the+reduction+of+de+novo+adhesions+after+laparoscopic+gynaecological+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Reprod%22%5BJournal%5D)">Gynaecological endoscopic evaluation of 4% icodextrin solution: a European, multicentre, double-blind, randomized study of the efficacy and safety in the reduction of de novo adhesions after laparoscopic gynaecological surgery.</a> Hum Reprod. 26 (8), 2015-2027 (2011).</li>
<li>van den Tol, P., ten Raa, S., van Grevenstein, H., Marquet, R., van Eijck, C., Jeekel, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Icodextrin+reduces+postoperative+adhesion+formation+in+rats+without+affecting+peritoneal+metastasis%5BTitle%5D)+AND+%22Surgery%22%5BJournal%5D)">Icodextrin reduces postoperative adhesion formation in rats without affecting peritoneal metastasis.</a> Surgery. 137 (3), 348-354 (2005).</li>
<li>van der Wal, J. B. C., Iordens, G. I. T., Vrijland, W. W., van Veen, R. N., Lange, J., Jeekel, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adhesion+prevention+during+laparotomy%3A+long-term+follow-up+of+a+randomized+clinical+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg%22%5BJournal%5D)">Adhesion prevention during laparotomy: long-term follow-up of a randomized clinical trial.</a> Ann Surg. 253 (6), 1118-1121 (2011).</li>
<li>Burkina, V., Rasmussen, M. K., Pilipenko, N., Zamaratskaia, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+xenobiotic-metabolising+human%2C+porcine%2C+rodent%2C+and+piscine+cytochrome+P450%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicology%22%5BJournal%5D)">Comparison of xenobiotic-metabolising human, porcine, rodent, and piscine cytochrome P450.</a> Toxicology. 375, 10-27 (2017).</li>
<li>Kramer, K., Senninger, N., Herbst, H., Probst, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effective+Prevention+of+Adhesions+With+Hyaluronate%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Surg%22%5BJournal%5D)">Effective Prevention of Adhesions With Hyaluronate.</a> Arch Surg. 137 (3), 278-282 (2002).</li>
<li>Crispi, C. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Practical+considerations+in+the+use+of+a+porcine+model+%28Sus+scrofa+domesticus%29+to+assess+prevention+of+postoperative+peritubal+adhesions%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Practical considerations in the use of a porcine model (Sus scrofa domesticus) to assess prevention of postoperative peritubal adhesions.</a> PLoS One. 15 (1), e0219105(2020).</li>
<li>Iliopoulos, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+a+bioabsorable+polylactide+film+in+a+large+animal+model+for+the+reduction+of+retrosternal+adhesions%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Evaluation of a bioabsorable polylactide film in a large animal model for the reduction of retrosternal adhesions.</a> J Surg Res. 118 (2), 144-153 (2004).</li>
<li>Turcotte, S., Sideris, L., Younan, R., Drolet, P., Dubé, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pharmacokinetics+of+intraperitoneal+irinotecan+in+a+pig+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Oncol%22%5BJournal%5D)">Pharmacokinetics of intraperitoneal irinotecan in a pig model.</a> J Surg Oncol. 101 (7), 637-642 (2010).</li>
<li>Pu, Z., Nian, H., Li, Z., Zhong, P., Ma, S., Li, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Research+progress+on+animal+models+of+peritoneal+adhesion%5BTitle%5D)+AND+%22Surgery%22%5BJournal%5D)">Research progress on animal models of peritoneal adhesion.</a> Surgery. 178, (2025).</li>
<li>Lauder, C. I. W., Strickland, A., Maddern, G. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+a+modified+chitosan-dextran+gel+to+prevent+peritoneal+adhesions+in+a+porcine+hemicolectomy+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Use of a modified chitosan-dextran gel to prevent peritoneal adhesions in a porcine hemicolectomy model.</a> J Surg Res. 176 (2), 448-454 (2012).</li>
<li>Crispi, C. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Practical+considerations+in+the+use+of+a+porcine+model+%28Sus+scrofa+domesticus%29+to+assess+prevention+of+postoperative+peritubal+adhesions%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Practical considerations in the use of a porcine model (Sus scrofa domesticus) to assess prevention of postoperative peritubal adhesions.</a> PLoS One. 15 (1), (2020).</li>
<li>Chen, M. D., Teigen, G. A., Reynolds, H. T., Johnson, P. R., Fowler, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laparoscopy+versus+laparotomy%3A+an+evaluation+of+adhesion+formation+after+pelvic+and+paraaortic+lymphadenectomy+in+a+porcine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Obstet+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Laparoscopy versus laparotomy: an evaluation of adhesion formation after pelvic and paraaortic lymphadenectomy in a porcine model.</a> Am J Obstet Gynecol. 178 (3), 499-503 (1998).</li>
<li>Dubcenco, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adhesion+formation+after+peritoneoscopy+with+liver+biopsy+in+a+survival+porcine+model%3A+comparison+of+laparotomy%2C+laparoscopy%2C+and+transgastric+natural+orifice+transluminal+endoscopic+surgery+%28NOTES%29%5BTitle%5D)+AND+%22Endoscopy%22%5BJournal%5D)">Adhesion formation after peritoneoscopy with liver biopsy in a survival porcine model: comparison of laparotomy, laparoscopy, and transgastric natural orifice transluminal endoscopic surgery (NOTES).</a> Endoscopy. 41 (11), 971-978 (2009).</li>
<li>Foster, D. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Postoperative+adhesions+are+abrogated+by+a+sustained-release+anti-JUN+therapeutic+in+preclinical+models%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Postoperative adhesions are abrogated by a sustained-release anti-JUN therapeutic in preclinical models.</a> Sci Transl Med. 17 (789), (2025).</li>
<li>Foster, D. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Elucidating+the+fundamental+fibrotic+processes+driving+abdominal+adhesion+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Elucidating the fundamental fibrotic processes driving abdominal adhesion formation.</a> Nat Commun. 11 (1), 4061(2020).</li>
<li>Sullivan, T. P., Eaglstein, W. H., Davis, S. C., Mertz, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+pig+as+a+model+for+human+wound+healing%5BTitle%5D)+AND+%22Wound+Repair+Regen%22%5BJournal%5D)">The pig as a model for human wound healing.</a> Wound Repair Regen. 9 (2), 66-76 (2001).</li>
<li>Lunney, J. K., Van Goor, A., Walker, K. E., Hailstock, T., Franklin, J., Dai, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Importance+of+the+pig+as+a+human+biomedical+model%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Importance of the pig as a human biomedical model.</a> Sci Transl Med. 13 (621), (2021).</li>
<li>Walters, E. M., Wells, K. D., Bryda, E. C., Schommer, S., Prather, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Swine+models%2C+genomic+tools+and+services+to+enhance+our+understanding+of+human+health+and+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim+%28NY%29%22%5BJournal%5D)">Swine models, genomic tools and services to enhance our understanding of human health and diseases.</a> Lab Anim (NY). 46 (4), 167-172 (2017).</li>
<li>Ribitsch, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large+Animal+Models+in+Regenerative+Medicine+and+Tissue+Engineering%3A+To+Do+or+Not+to+Do%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Bioeng+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Large Animal Models in Regenerative Medicine and Tissue Engineering: To Do or Not to Do.</a> Front Bioeng Biotechnol. 8, 972(2020).</li>
<li>Prabhakar, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Translational+research+challenges%3A+finding+the+right+animal+models%5BTitle%5D)+AND+%22J+Investig+Med%22%5BJournal%5D)">Translational research challenges: finding the right animal models.</a> J Investig Med. 60 (8), 1141-1146 (2012).</li>
</ol>

Autorzy nie mają żadnych istotnych ujawnień.

Proponowany model zrostów wieprzowych stanowi klinicznie istotną i wiarygodną metodę modelowania zrostów wewnątrzbrzusznych. W przeciwieństwie do modeli urazów ogniskowych lub jednomiejscowych, celowo wybrano połączenie laparotomii środkowej, resekcji jelita cienkiego z anastomozą oraz standaryzowanej tarty otrzewnej ciemieniowej, aby odtworzyć wieloczynnikowe uszkodzenia otrzewnej występujące podczas otwartych zabiegów brzusznych. Kontrolowane ścieranie otrzewnej ciemieniowej wzdłuż bocznej ściany brzucha naśladuje uraz...

Zrosty pooperacyjne są głównym źródłem zachorowalności po operacjach brzusznych i miednicy, rozwijając się u nawet 93% pacjentów 1,2, z czego około 20% wymagało hospitalizacji w ciągu pięciu lat z powodu powikłań związanych z zrojecami 3,4. Uszkodzenie otrzewnej powstaje w wyniku zabiegów chirurgicznych jamy brzusznej, a także podrażnienia jamy brzusznej (infekcja lub ekspozycja chemiczna) lub przewlekłych stanów zapalnych, takich jak zapalne choroby jelit. Powstałe zrosty mogą prowadzić do szerokiego zakresu konsekwencji klinicznych, w tym nawracających niedrożności jelita wymagających dodatkowych operacji lub powodować niepłodność i przewlekły ból 5,6,7. Powstawanie zrostów może być szczególnie poważne po wielotrzewnych resekcjach nowotworowych, takich jak operacje cytoredukcyjne, przewlekłe zapalenie czy perforacja jelit, gdzie rozległe uszkodzenia otrzewnej wzmacniają odpowiedź włóknistą. Dodatkowo, choroba adhezji może znacznie utrudniać kolejne zabiegi chirurgiczne, często uniemożliwiając podjęcie minimalnie inwazyjnej metody lub powodując niezamierzone uszkodzenia jatrogenne jelit lub innych narządów.
Pomimo ich znaczenia klinicznego, rozwój skutecznych strategii przeciwadhezjowych jest ograniczony – prawdopodobnie częściowo utrudniony przez ograniczenia w modelach przedklinicznych, które odtwarzają anatomię, fizjologię i reakcje na gojenie ran obserwowane u ludzi8. Modele gryzoni są szeroko stosowane ze względu na dostępność, eksperymentalną łatwość do wykonywania oraz niezawodną generację przyczepności 9,10,11. Jednak ich mała jama otrzewna, cienka krezka oraz wyraźne środowisko zapalne mogą ograniczać znaczenie translacyjne 8,12. Takie modele przyczyniły się do rozwoju podejść antyadhezjijowych, które wykazały solidną skuteczność w badaniach na zwierzętach, ale wykazały ograniczone lub zależne od kontekstu korzyści kliniczne u ludzi 8,13,14,15,16,17. Ponadto procedury chirurgiczne porównywalne z człowiekiem, takie jak resekcja jelit i anastomoza, są trudne do modelowania w sposób translacyjnie istotny u gryzoni, a różnice w metabolizmie leków specyficzne dla gatunku dodatkowo ograniczają ekstrapolację kliniczną18.
Modele dużych zwierząt, szczególnie świń, są szeroko wykorzystywane do badania wyrostków brzusznych ze względu na ich anatomiczne i fizjologiczne podobieństwo do ludzi oraz porównywalną metodę chirurgiczną, co stanowi platformę do badania zarówno powstawania zrostów, jak i testowania interwencji terapeutycznych 19,20,21,22 . Istniejące modele zrostów u wieprzi dostarczyły ważnych informacji, jednak wiele z nich koncentruje się na formowaniu zrastów specyficznych dla procedur i często brakuje ustandaryzowanych procedur, co ogranicza ich zastosowanie szczególnie do ciężkich zrostów powstałych po otwartej operacji jelita 23,24,25,26,27.
Aby złagodzić te ograniczenia, opracowaliśmy model wieprzowy z pooperacyjnymi zrostami wewnątrzbrzusznymi, który integruje laparotomię środkową, resekcję jelita cienkiego oraz jednostronne, ciemieniowe otarcie otrzewnej. Ta wieloogniskowa metoda otrzewna powtarza zrosty sprzyjające zrostom często spotykane podczas zabiegów chirurgicznych jamy brzusznej i powoduje zrosty o różnej sile i lokalizacji w ciągu czterech tygodni, z gwarantowanymi zrostami po stronie brzucha, gdzie wykonywane jest precyzyjne otarcie ciemieniowe, a także stochastyczne zrosty w całym brzuchu. Poprzez zastosowanie klinicznie istotnego zabiegu chirurgicznego jelit z wyraźnie określonym i powtarzalnym urazem otrzewnej, model ten przezwycięża kluczowe ograniczenia wcześniejszych systemów świńskich i zapewnia spójną platformę do badania powstawania zrostów pooperacyjnych oraz oceny interwencji przeciwprzyrostowych.

<table><tbody><tr><td><silny>Zwierzęta</silny></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Samice mini świnek z Jukatanu, masa ciała 9–12 kg (7–9 tygodni)</td><td>S& S Farms</td><td></td><td>8</td></tr><tr><td>Zaopatrzenie chirurgiczne</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>DMI4000 Mikroskop B</td><td>Leica Microsystems</td><td></td><td>Histologia</td></tr><tr><td><Mocne>Materiały</wytrzymałe></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Euthasol&nbsp;</td><td>Virbac</td><td></td><td>Eutanazja</td></tr><tr><td>Eosin-Y Alcoholic Stain</td><td>Azer Scientific&nbsp; &nbsp;</td><td>Cat#ES709</td><td>Histologia</td></tr><tr><td>Zjeżdżalnie z matem</td><td>Fisher Scientific &nbsp;</td><td>Katalog#12-550-400</td><td>Histologia</td></tr><tr><td>Mayer&prime; Roztwór hematoksyliny&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich&nbsp;</td><td>Cat#MHS80&nbsp;</td><td>Histologia</td></tr><tr><td><silne>Leki</mocne></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Amoksycylina</td><td>Covetrus</td><td>59629</td><td>Zapobieganie infekcjom 10mg/kg PO BID x1</td></tr><tr><td>Ancef/Cefazolin</td><td>Covetrus</td><td>84773</td><td>Kontrola infekcji przedoperacyjna 25 mg/kg dożylnie</td></tr><tr><td>Atipamezol</td><td>Covetrus</td><td>82124</td><td>Środek odwracający sedację 0,2 mg/kg&nbsp;</td></tr><tr><td>Atropina</td><td>Covetrus</td><td>74760</td><td>Bradykardia 0,04mg/kg&nbsp; &nbsp;</td></tr><tr><td>Bupernorfina z przedłużonym uwalnianiem (ER)</td><td>Wedgewood Pharamcy</td><td></td><td>Analgezja 0,18 mg/kg dożylnie</td></tr><tr><td>Karprofen – śródoperacyjny</td><td>Dechra</td><td></td><td>Analgezja 25 mg/kg dożylnie;</td></tr><tr><td>Karprofen – pooperacyjny</td><td>Dechra</td><td></td><td>Analgezja 25-50mg PO PRN</td></tr><tr><td>Cerenia</td><td>Zoetis</td><td></td><td>Przeciwnudności 1-2 mg/kg dożylnie po śródoperacji</td></tr><tr><td>Izofluran</td><td>Dechra</td><td></td><td>Sedacja&nbsp;</td></tr><tr><td>Lidokaina 2%</td><td>VetOne</td><td>V1 510212</td><td>Analgezja 2 mg/kg SQ przed nacięciem</td></tr><tr><td>Ketamina</td><td>Dechra</td><td></td><td>Anestezja i Analgezja 12 mg/kg domięśniowo</td></tr><tr><td>Dobutamina</td><td>Hospira &nbsp;</td><td></td><td>Dawkowanie i miarkowanie według anestezjologa&nbsp;</td></tr><tr><td>Povidone-jod (betadyna)</td><td>ValleyVet</td><td>12265</td><td>Środek odkażający</td></tr><tr><td>Ksylazyna (Rompun)</td><td>Dechra</td><td>GW l400000</td><td>Sedacja/Analgezja 2,2 mg/kg domięśniowo</td></tr><tr><td><Silne>Materiały Chirurgiczne</Silne></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Szew 3-0 PDS (polidioksan)</td><td>Ethicon</td><td>Cat#Z316H</td><td>Anastamosis Ilość - 2&nbsp;</td></tr><tr><td>3-0 Jedwabny Szew (Pop-off) &nbsp;</td><td>Ethicon</td><td>Cat#1679H</td><td>Anastamosis Ilość - 1 opakowanie pop-off</td></tr><tr><td>Szew 0-0 PDS (polidioksan)</td><td>Ethicon</td><td>Cat#Z990G</td><td>Zamknięcie Linea Alba Ilość - 1</td></tr><tr><td>3-0 Szew Prolene</td><td>Ethicon</td><td>Katal#8684G</td><td>Closure Ilość - 1</td></tr><tr><td>Bovie Electrocautery&nbsp;</td><td>Grayline Medical Supply</td><td>Cat#E2516</td><td>Homeostaza i cięcie</td></tr><tr><td>Standardowy zestaw sterylnych narzędzi chirurgicznych abomdinalnych z retraktorami ściany brzucha, takich jak reaktory Army/Navy czy Richardson.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>3M Tegaderm + Pad&nbsp;</td><td>3M</td><td>Kata#3593</td><td>Opatrunki chirurgiczne</td></tr><tr><td>Dieta płynna bogata w białko</td><td>Upewnij się</td><td></td><td>Diet 1,5 butelki BID</td></tr><tr><td><silne>Oprogramowanie</silne></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>BioRender</td><td>Umowa numer SH28Z3OOKI</td><td></td><td>Generowanie figure&nbsp;</td></tr><tr><td>Adobe Illustrator</td><td>Adobe</td><td>v29.8.1</td><td>Generowanie figure&nbsp;</td></tr><tr><td>FIDŻI</td><td>NIH</td><td></td><td>Generowanie figure&nbsp;</td></tr><tr><td>*Uwaga: narzędzia AI były używane wyłącznie do drobnych poprawek językowych i gramatycznych</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>*BID - dwa razy dziennie,&nbsp; IV - dożylnie, domięśniowo - domięśniowo, PO - per os/ doustnie, SQ - podskórne, PRN - w razie potrzeby</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

translacyjny chirurgiczny model wieprzowy dla powstawania zrostów wewnątrzbrzusznych po operacji

A Translational Surgical Porcine Model for Postoperative Intra-Abdominal Adhesion Formation

Model wieprzowinki powstawania zrostów wewnątrzbrzusznych został opracowany na świnie z użyciem mini świń z Jukatanu. Protokół łączy laparotomię środkową, resekcję jelita cienkiego z dwuwarstwową pierwotną anastomozą oraz jednostronne otarcie otrzewnej ciemieniowej w formie otwartego zabiegu brzusznego. Tworzenie zrostów oceniano cztery tygodnie po operacji przy użyciu ustalonych kryteriów oceny brutto i histologicznej, a oceny przeprowadzili niewidomi obserwatorzy. Zrosty rozwijały się u wszystkich zwierząt korzystających z tego modelu i były wieloogniskowe, obejmujące pętle jelitowe między jelitem a ścianą brzucha, obejmujące otrzewną leżącą nad innymi narządami jamy brzusznej (np. wątrobę) oraz miejscami operacyjnymi, o różnym nasileniu. Analiza histologiczna po czterech tygodniach wykazała zrosty składające się głównie z macierzy zewnątrzkomórkowej, fibroblastów i naczyń krwionośnych, co odpowiada fenotypowi tkanki gojącej się rany w fazie remodelingu. Model ten jest istotny do badań biologii włóknienia zraszy brzusznej i/lub oceny translacyjnej kandydatów na terapię przeciwadhezyjną. Łącząc klinicznie istotny zabieg chirurgiczny jelita z określonym urazem otrzewnej oraz standaryzowaną strategią oceny, protokół ten zapewnia powtarzalne podejście do indukowania i oceny pooperacyjnych zrostów wewnątrzbrzusznych w modelu dużego zwierzęcia.

Proponowany model zrostów pooperacyjnych u świń (Rysunek 1) został połączony z dostosowanym systemem punktacji, aby w czasie rzeczywistym ocenić zrosty28. Ocena adhezji została przeprowadzona niezależnie przez 3 członków zespołu zaślepionych na warunki eksperymentalne w okresie 4 tygodni na reprezentatywnej kohorcie n=4 świń; wyniki były uśredniane dla końcowego wyniku adhezji na każde zwierzę (Rysunek 2A). Zrosty wewnątrzbrzuszne powstał...

Protokół ten opisuje model świniowy pooperacyjnego powstawania zrostów wewnątrzbrzusznych z użyciem mini świń z Jukatanu poddawanych otwartej operacji brzusznej z resekcją jelit. Podejście to niezawodnie wywołuje zrosty wewnątrzbrzuszne i stanowi platformę do oceny rozwoju zrostów oraz testowania strategii antyadhezji.

Translacyjny chirurgiczny model wieprzowy dla powstawania zrostów wewnątrzbrzusznych po operacji

A porcine model of postoperative intra-abdominal adhesion formation was established using Yucatan mini pigs. The protocol combines midline laparotomy, ...

W tym badaniu opracowano klinicznie istotny model zrostów wewnątrzbrzusznych pooperacyjnych, aby badać biologię zrostów i testować terapie przeciwprzyrostowe. Chociaż modele gryzoni dostarczają cennych informacji, ten protokół lepiej odwzorowuje operację jamy brzusznej u ludzi i niezawodnie generuje klinicznie istotne zrosty. Na początek przykryj odwłok świni znieczulonej, używając sterylnych ręczników i chirurgicznych zasłon, aby zachować sterylność przez cały zabieg.Wykonaj laparotomię na linii środkowej, wykonując pełne nacięcie przez tkankę podskórną i mięśnie ściany brzucha wzdłuż liniowego alba, aby wejść do jamy otrzewnej za pomocą skalpela o 10 ostrzach i elektrokauteryzmu. Potem rozpruj jelita. Zidentyfikuj obszar jelita, około 10 do 15 centymetrów blisko od zastawki krętokrętowej, i wyciąj sekcję jelita cienkiego o długości 2,5 centymetra za pomocą nożyczek.Należy usunąć powiązany śródzrok elektrokauteryjny w celu uzyskania hemostazy naczyń krezkowych. Wykonaj dwuwarstwową anastomozę pierwotną na boki. Odbuduj wewnętrzną warstwę lumenu syntetycznym szwem 3-0 wchłaniającym w sposób biegający, a zewnętrzną warstwę odtworz za pomocą szwu 3-0 niechłonnego o przebiegu.Delikatnie zetrzesz przekrój otrzewnej ciemieniowej trzy na pięć centymetrów wzdłuż prawej ściany brzucha, używając sterylnej gazy lub elektrokauteryjnego podrobika do drapania. Zamknij powięzi szwem 2-0 chłonnym. Zamknij skórę biegającym ściegiem 2-0 lub 3-0 niechłonnym baseballowym i przykryj sterylnym opatrunkiem.Uśpij zwierzę po czterech tygodniach i dokładnie oceniaj zrosty. Natychmiast pobierz tkanki i próbki krwi do dalszych analiz. Zrosty wewnątrzbrzuszne powstały u 100% zwierząt ocenianych zarówno na obtartych, jak i niepotartych stronach odwłoka.Zrosty boczne z plecionkami wykazały znacznie wyższe wskaźniki zrostów niż strona nieścierana. U wszystkich zwierząt zrosty obejmowały wiele miejsc brzusznych, w tym jelito cienkie, jelito grube, wątrobę i otrzewną ciemieniową. Tkanka adhezji została starannie rozczłonkowana i pobrana w izolacji do dalszych analiz.Ocena histologiczna po czwartym tygodniu wykazała, że zrosty składają się z macierzy zewnątrzkomórkowej zdominowanej przez fibroblasty oraz nowego naczyń krwionośnych. Protokół ten pozwala badaczom badać biologię zraszeń, rozwój włóknienia oraz testować potencjalne terapie zapobiegające zrostom pooperacyjnym. Najważniejszym czynnikiem jest przeprowadzenie ustandaryzowanych operacji urazów otrzewnej i jelit, aby zapewnić regularne i powtarzalne powstawanie zrostów.Naukowcy mogą wykonywać oceny zrostów całkowitych i histologicznych oraz pobierać tkanki do dalszych analiz molekularnych, komórkowych i włóknienia.

a-translational-surgical-porcine-model-for-postoperative-intra

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Ten artykuł opisuje nowatorski nonocklazyjny łącznik zespolenia wieńcowego w modelu pomostowania tętnic wieńcowych (OPCAB) u świń. Ten łatwy w użyciu łącznik wieńcowy ma wewnętrzny potencjał, aby ułatwić minimalnie inwazyjną operację OPCAB.

Ocena nowatorskiego łącznika zespolenia wieńcowego wspomaganego laserem - klipsa Trinity - w modelu pomostowania poza pompą u świń

Ten manuskrypt opisuje metody związane z tworzeniem i naprawą wady brzusznej ściany brzucha (przepukliny). Model ten można wykorzystać do badania strategii naprawczych, takich jak te, które wykorzystują wszczepione materiały. W niniejszym manuskrypcie jako przykład przedstawiono naprawę eksperymentalnej przepukliny z błoną podśluzówkową jelita cienkiego świni.

Wykorzystanie modelu szczurzego do badania naprawy brzusznej przepukliny brzusznej

Zrosty brzuszne, które tworzą się po operacji, są główną przyczyną bólu, bezpłodności oraz hospitalizacji i reoperacji z powodu niedrożności jelita cienkiego. Nasza chirurgiczna procedura tworzenia zrostów brzusznych u myszy jest niezawodnym narzędziem do badania mechanizmów leżących u podstaw powstawania zrostów.

Tworzenie zrostów brzusznych u myszy

Tutaj prezentujemy protokół użycia płata perforatora tętnicy nadbrzusza świni jako modułu uczenia się do rekonstrukcji mikrokrążenia głowy i szyi.

Świnia jako moduł treningowy do rekonstrukcji mikrokrążenia głowy i szyi

Nieszczelność zespolenia lub awaria po operacji jest główną przyczyną zachorowalności i śmiertelności pooperacyjnej. Nasz zabieg chirurgiczny do tworzenia zespolenia jelita grubego jest wiarygodną i powtarzalną metodą badania mechanizmów gojenia się zespoleń.

Tworzenie zespolenia okrężnicy u myszy

Ten nowatorski model tworzy silne tętniaki aorty podnerkowej u świń za pomocą kombinacji angioplastyki balonowej, perfuzji elastazy/kolagenazy, miejscowego stosowania elastazy i doustnego podawania związków β-aminopropionitrylu, które zakłócają sieciowanie kolagenu.

Świński model tętniaka aorty brzusznej

Wypadanie narządów miednicy dotyka miliony kobiet na całym świecie, a mimo to niektóre powszechne interwencje chirurgiczne mają wskaźnik niepowodzeń sięgający nawet 40%. Brak standardowych modeli zwierzęcych do badania tego schorzenia hamuje postęp. Proponujemy następujący protokół jako model do zawieszenia więzadła maciczno-krzyżowego i prób rozciągania in vivo.

Opracowanie szczurzego modelu zawieszenia więzadła maciczno-krzyżowego

Opisujemy mysi model pooperacyjnej niedrożności jelit generowany przez manipulację jelitową. Funkcję pasażu pokarmowego, zmiany patologiczne i aktywację komórek odpornościowych oceniano 24 godziny po zabiegu.

Pooperacyjny model mysiej niedrożności jelit

Zrosty wewnątrzmaciczne (IUA), najczęstsza patologiczna konsekwencja uszkodzenia endometrium, poważnie upośledzają funkcje rozrodcze. Urazy i infekcje są powszechnie uznawane za kluczowe czynniki ryzyka rozwoju IUA. Udało nam się stworzyć powtarzalny szczurzy model wkładki domacicznej, łącząc dwie krytyczne metody urazów: kiretaż mechaniczny i indukcję infekcyjną za pomocą lipopolisacharydu.

Opracowanie modelu szczurzego dla zrostów wewnątrzmacicznych poprzez podwójny uraz: łyżeczkowanie i infekcję

Ten protokół demonstruje jednoportową (SP) robotyczną transanalną resekcję tota mesorektalną (taTME) na modelu świń, podkreślając wykonalność proceduralną, kroki techniczne i zastosowanie przedkliniczne dla minimalnie inwazyjnej chirurgii odbytnicy.

Jednoportowa robotyczna resekcja mezorektalna przez odbytnicę u świń domowych (Sus scrofa domesticus)

Poznaj model chirurgiczny wieprzowy do badania powstawania zrostów wewnątrzbrzusznych po operacji. Protokół obejmuje resekcję jelita cienkiego z anastomozą i abrazję otrzewnej, co pozwala oceniać terapie przeciwzrostowe.

Translacyjny chirurgiczny model wieprzowy dla powstawania zrostów wewnątrzbrzusznych po operacji

Przeglądaj więcej filmów