Recolha e criopreservação de óvulos e embriões de camundongos Hamster

Cuidados com os animais e os procedimentos foram realizados de acordo com as diretrizes e as normas aprovadas pelo Comitê de Ética em Pesquisa Animal e Humana da Universitat Autònoma de Barcelona, ​​Espanha.

I. coleta de oócitos

1. Verifique e selecione hamsters feminino (Mesocricetus auratus; 12/08 semana de idade) da cepa de Ouro da Síria para a presença de um corrimento vaginal espesso (descarga pós-ovulatória).
2. Induzir fêmeas selecionadas para superovulate por injeção intraperitoneal de 40 UI de PMSG (Pregnant Mare Serum Gonadotropin), seguido de 40 UI de hCG (gonadotropina coriônica humana) 60 horas depois.
3. Euthanize hamsters fêmeas 16 horas após a administração de hCG em uma câmara de dióxido de carbono.
4. Isolar ovidutos das fêmeas, como mostrado no vídeo e transferi-los para uma queda de KSOM-H médio.
5. Coletar oócitos cumulus complexos rasgando a ampola do oviduto sob um microscópio estereoscópico em uma gota de hialuronidase (156 U / ml) a 37 ° C. Oócitos serão liberados a partir de células cumulus em cerca de 5 minutos.
6. Pick up ovócitos de hialuronidase e lavá-los duas vezes em KSOM-H médio.

Para a coleta de embriões de camundongos, ratos fêmeas (Mus musculus; 6-8 semana de idade) são induzidos a superovulate por injeção intraperitoneal de 5 UI de PMSG seguido por 5 UI de hCG 48 horas mais tarde e acasaladas com ratos machos. As fêmeas são sacrificadas por deslocamento cervical em 24-26, 44-46 ou 54-56 horas após a administração de hCG para obtenção de pronuclear, 2 de células ou embriões de 4 células estágio, respectivamente. Colheita de embriões pronuclear é realizado exatamente como descrito para oócitos de hamster. Embriões nas fases 2 e 4 células de células são recolhidas através de lavagem com o ovidutos KSOM-H médio [6].
Nota: Na sequência deste protocolo aproximadamente 20 a 30 oócitos / embriões podem ser coletadas de cada fêmea.

II. Preparação de soluções de congelamento e descongelamento

1. Prepare solução que eu diluindo 0,57 ml de propilenglycol em 5 ml de KSOM-H (1,5 M de propilenglycol).
2. Prepare a solução de descongelamento, adicionando 2 ml de KSOM-H para um tubo com 0,2052 g de sacarose (0,3 M de sacarose).
3. Preparar a solução de congelamento, adicionando 2 ml de solução I a um tubo com 0,0684 g de sacarose (1,5 M de sacarose e 0,1 propilenglycol M).

Nota: Eu Solution e congelamento e descongelamento, as soluções devem ser preparadas imediatamente antes de seu uso. No entanto, as quantidades especificadas de sacarose a ser usada para a preparação do congelamento e descongelamento soluções podem ser ponderados com antecedência e armazenado em 3 ml de tubos em temperatura ambiente por vários meses.

III. Protocolo de congelamento

1. Ovócitos transferência / embriões a partir do meio KSOM-H para uma gota de solução I e incubar por 7-15 minutos em temperatura ambiente.
2. Enquanto isso, prepare uma placa de Petri 90 milímetros para carregar a palha, colocando 90 gotas mL de congelamento e descongelamento soluções como é mostrado no vídeo (1 gota de cada solução / palha).
3. Transferir o número desejado de oócitos / embriões para as gotas de solução de congelamento.
   Nota: Nós normalmente transferência entre 5 a 30 oócitos ou embriões / gota.
4. Anexar uma palha para um sistema de aspiração de boca controlada e carregá-lo seguindo esta ordem: solução I, do ar, queda de congelamento com os oócitos, ar, queda de descongelamento, o ar.
5. Uma vez que a palha é carregada, manter aspiração até que a primeira gota introduzido (solução I) atinge o polímero no topo do canudo e sela o fim. Termo-selar o outro lado da palha ou selar com um plugue de plástico.
6. Ligue o freezer programável e selecione o programa de congelamento. O programa de congelamento utilizado neste protocolo é baseado nas taxas de resfriamento publicado originalmente por Lassalle et al. [7]:
   • 2 ° C / min da temperatura ambiente até -7 ° C
     0 ° C / min para 10 min para permitir equilíbrio de temperatura e indução de semeadura (veja abaixo)
   • 0,3 ° C / min de -7 ° C a -30 ° C
     0 ° C / min por 2 min para permitir equilíbrio de temperatura
   • 35 ° C / min de -30 ° C a -130 ° C
7. Carregar os canudos nos slots do titular do congelador programável, certificando-se que a parte da palha com a gota de solução descongelamento é voltado para fora. Inicie o programa de congelamento.
8. Quando a temperatura da amostra atinge -7 ° C ea refrigeração está em espera, executar semeadura manual: mergulhar a pinça em nitrogênio líquido, puxe os titulares um pouco fora do freezer para expor a parte da palha contendo as gotas de solução de descongelamento, e imediatamente toque nesta parte do canudos com o fórceps. Repita a operação para cada titular e cada um de palha no suporte, e deixar que o programa de congelamento de correr até o fim.
9. Quando o programa estiver concluído, mergulhe os titulares em nitrogênio líquido.
10. Retire as palhas datitulares e transferi-los para um gobelet rotulados.
11. Finalmente, guarde o gobelet dentro de um tanque de nitrogênio líquido.

IV. Descongelamento protocolo

1. Remover a palha do tanque de nitrogênio líquido.
2. Manter a palha em temperatura ambiente por 40 segundos.
3. Mergulhe a palha em banho-maria a 30 ° C durante 40 segundos.
4. Retire a ficha da palha ou cortar a ponta termo-selado.
5. Esvaziar a palha numa placa de Petri de 35 mm e misture delicadamente as duas gotas que contêm o congelamento e descongelamento soluções.
6. Deixe oócitos / embriões na mistura por 15 minutos em temperatura ambiente.
7. Transferência de oócitos / embriões frescos para uma queda de KSOM-H para um adicional de 15 minutos a 37 ° C.
8. Oócitos / embriões estão agora prontos para manipulação posterior.

Nota: Durante as etapas 6 e 7 você verá que os oócitos descongelados / embriões lentamente inchar devido à reidratação.

Representante Resultados V.

O uso do protocolo de criopreservação aqui relatados resulta em uma taxa de sobrevivência de cerca de 95% para oócitos de hamster e de> 90%, 85% e 80% para mouse B6CBAF1 embriões no pronuclear, 2-estágios e de célula de 4 células, respectivamente. Quando embriões de camundongos são cultivadas in vitro em KSOM após o descongelamento, pelo menos 70 a 80% devem chegar ao estágio de blastocisto em condições de cultura ideal.

É recomendado que você incluir um grupo controle (palha) de oócitos / embriões em cada experimento de congelamento e descongelamento que este grupo antes do resto dos oócitos / embriões são usados ​​para manipulação posterior. Se as taxas de sobrevivência para o grupo controle é menor do que o esperado, descongele outra palha do mesmo lote. Se as taxas de sobrevivência para este segundo grupo também são baixos, descarte as palhetas restantes deste lote de congelamento.

With this protocol hamster oocytes and mouse embryos can be successfully cryopreserved. Once frozen, oocytes/embryos can be stored in liquid nitrogen tanks indefinitely and recovered at any time or place desired. This offers the advantage of having samples almost ready to use whenever needed. On the other hand, this protocol can also be used to generate embryo cryobanks from valuable mouse strains (such as transgenic lines), as an economical and safer alternative to the maintenance of live animal colonies. It is important to note that this protocol is optimized to cryopreserve hamster oocytes and hybrid B6CBAF1 mouse embryos. Differences in post-thaw survival rates among mouse embryos with different genetic backgrounds have been described ^8,9, thus care should be taken to assess cryopreservation conditions on each species or strain of oocytes/embryos and to establish the appropriate protocol before the generation of oocyte or embryo cryobanks.

Hamster oocytes can be used in human assisted reproduction clinics for the sperm penetration test or for sperm chromosome analysis ¹⁰, or as practicing material for beginners in intracytoplasmic sperm injection (ICSI). On the other hand, mouse hybrid B6CBAF1 embryos at pronuclear or 2-cell stages can be used in human assisted reproduction centers or in research labs to check the quality of the embryo culture media or the proper functioning of the incubators.