Preparação de Saline Veronal 5x Buffered (VBS)
- Para preparar a solução salina Veronal Buffered (VBS), três soluções distintas precisa estar preparado.
- Prepare uma solução através da dissolução de NaCl e 21.25gm 0.94gm de Barbitone de sódio em 350ml de água destilada. A concentração final de NaCl e de sódio Barbitone são 1,02 e 13mm, respectivamente.
- Prepare a solução 2, dissolvendo 1.44gm de Barbitone em 125ml de água destilada quente. A concentração final de Barbitone é 62,5 mm.
- Prepare a solução 3 dissolvendo 20.33gm de MgCl 2 e 4.41gm de CaCl 2 em 100ml de água destilada. A concentração final de MgCl 2 e CaCl 2 é 2.18m e 440mm, respectivamente.
- Mix de soluções 1 e 2 e arrefecer à temperatura ambiente.
- Uma vez que a solução combinada tenha arrefecido, adicione 1.25ml de solução 3 e ajustar o pH a 7,3-7,5 usando HCl 1M.
- Ajustar o volume final de 500ml com água destilada para preparar uma solução estoque de 5x.
- Para preparar uma solução 1x de trabalho, diluir a 1:05 estoque com água destilada.
Sensibilização de hemácias de carneiro com hemolisina
- Prepare a hemolisina, em primeiro lugar diluição 1:50 com VBS
- Para adicionar 4ml de SRBC 6ml de VBS e misture delicadamente por inversão
- Centrifugar a 600g x 5 minutos
- Desprezar o sobrenadante e lavar as células mais 2 vezes
- Após a lavagem final, centrifugar as células de 900g x 5 minutos para arrumar as células
- Descartar o sobrenadante e ressuspender as células em VBS suficiente para preparar uma solução de 10% ou seja, 0,5 ml de hemácias são ressuspenso em 5 ml de tampão
- Gotas adicionar igual volume de hemolisina (coelho anti-ovelha anticorpos de glóbulos vermelhos) para as células enquanto agita continuamente
- Incubar a 30 ° C por 30 minutos em banho-maria
- Misture suavemente as células a cada 15 minutos
- SRBC sensibilizados podem ser armazenados durante a noite a 4 ° C
CH 50 ensaio
- Rotular uma série de tubos em duplicata com 1:08, 1:16, 1:32, 1:64 e 1:128.
- Prepare uma série de duas diluições de controle e soro em cada VBS em duplicado
- Início às 01:04 (100ml + 300ml de soro VBS) e transferência de 200ml de amostra dentro do tubo próxima rotulados.
- Misturar bem entre diluições e 200ml de transferência para a diluição seguinte com uma ponteira de pipeta nova.
- Repita até que todos os cinco diluições são feitas.
- Descartar 200ml da diluição 1:128 final.
- Adicione 200 ml de suspensão SRBC sensibilizados para todos os tubos.
- Identifique dois tubos separados como em branco e adicionar 200ml de sensibilizados SRBC + 200ml VBS. Estes tubos medirá lise espontânea do SRBC na VBS.
- Rótulo mais dois tubos separados como lise TOTAL e adicionar 200ml de água + 200ml SRBC sensibilizados destilada.
- Misture suavemente todos os tubos.
- Incubar a 37 ° C por 30 minutos em banho-maria misturando após 15 minutos.
- Centrifugar as amostras a 1.500 g por 5 minutos para sedimentar as hemácias.
- Transferência de 100ml do sobrenadante de cada tubo para um bem em uma placa inferior 96 bem plana.
- Adicione 100 ml de água destilada para cada poço.
- Ler a absorbância das amostras em 540 nm usando um espectrofotômetro de placas.
Cálculos
- Calcular a média de absorbância para cada amostra
- Subtrair a absorbância BLANK (lise espontânea) de todas as amostras
- Calcular a lise% para cada diluição com a seguinte fórmula:

- Plotar a porcentagem de lise (eixo vertical) versus a diluição de soro no eixo horizontal.
- Calcular a diluição necessária para a hemólise 50% para o controle e soro de ensaio (Fig. 2).
Resultados representativos:
O vídeo inclui um exemplo de resultados representativos. Na prática, um soro de controlo também é executado ao mesmo tempo, como o soro de teste e é tratado da mesma maneira. Abaixo (Tabela 1) são os dados da amostra a partir de uma amostra testada soro. Os dados são manipulados de acordo com a equação apresentada em 5.3.
| Amostra | OD 540 | Média | | |
| Em branco | 0,042, 0,044 | 0,043 | | |
| Lise total | 0,183, 0,183 | 0,183 | | |
|
| Diluição | OD 540 | Média | Dizer-Blank | Lise% |
| 01:08 | 0,200, 0,219 | 0,210 | 0,168 | 116 |
| 01:16 | 0,179, 0,173 | 0,176 | 0,134 | 93 |
| 01:32 | 0,134, 0,110 | 0,122 | 0,08 | 55 |
| 1:64 | 0,053, 0,066 | 0,059 | 0,017 | 12 |
| 1:128 | 0,044, 0,045 | 0,045 | 0,003 | 2 |

Figura 1. Ativação da via clássica do complemento. A via clássica é ativada pela ligação imunoglobulina M (IgM) ou imunoglobulina g (IgG) na superfície de uma célula-alvo. A porção Fc da Ab liga a C1q, C1r é ativado e este por sua vez ativa outra molécula de C1r que, juntos, ativar duas moléculas de C1s. C1s agora cliva C4 que expõe o sítio de ligação para C2 que também é clivada. A ligação do C4b e C2a leva à formação de um complexo chamado de C3 convertase. Este complexo cliva C3 formando agora C3a e C3b, alguns dos quais combinam com o C3 convertase formando uma convertase C5. Este complexo age agora em C5, com a resultante C5b ligação com C6 iniciando a formação do complexo de ataque à membrana (MAC). C5b6 atua em C7, que por sua vez funcionam em C8 e C9 em última análise, resultando na formação do MAC final. (Goldsby et al, 2003).

Figura 2. Plotagem de dados de amostra e cálculo do CH50 para um controle e amostra de soro. (A), a percentagem calculada (%) lise de tanto o controle (•) e teste () amostras de soro são plotados contra o fator de diluição. (B) Para calcular a lise de 50%, uma linha é desenhada a partir do valor percentual de 50% até se cruza com as linhas do gráfico e, em seguida, uma linha vertical é traçada até a diluição. Neste exemplo, uma diluição de 35 vezes, do controle e 21,6 vezes diluição do soro de teste são necessários para alcançar a lise de 50%. Estes dados indicam que há menos complemento presente no soro de teste em relação ao controle, uma vez que necessitou de menos de diluição, antes de lise de 50% foi alcançado. A amostra de controlo também mostra lise> 100% na diluição de 1:08. Isto é provavelmente devido a lise incompleta do SRBC pela água destilada e mais eficiente lise pelos componentes do complemento.