1) Entrega bacteriana da shRNAs
- Antes de iniciar com a cultura bacteriana, um tem que se preparar LB médio e LB-ágar.
- Para o LB médio pesar extrato de levedura (0,5% w / v), Bacto triptona (1,0% w / v) e NaCl (0,6% w / v) e diluir estes componentes em água bidest. As soluções preparadas têm que ser esterilizados em autoclave e são, então, pronto para uso.
- Para LB-agar agar Bacto placas (1,5% w / v) tem de ser adicionado à LB médio anteriores à esterilização.
- Aquecer LB-ágar no microondas até que o LB-ágar esteja completamente dissolvido. Deixe a solução esfriar até que a garrafa pode ser tocado facilmente sem se queimar. Adicionar canamicina (100 mg / ml) para a seleção de clones positivos em outras etapas.
- Prepare LB-ágar placas em um banco de fluxo laminar (condições estéreis) pipetando 20 ml da solução de LB-ágar em 10 cm de Petri-pratos. Deixe arrefecer as placas até que o líquido tornou-se sólido. As placas estão agora prontos para usar e pode ser armazenado a 4 ° C.
- Vetores shRNA codificação expressão são transformados em E. competente ceq221 coli por choque térmico usando o procedimento de CaCl 2.
- A placa de bactérias transformadas em LB-ágar placas contendo 100 mg / ml de canamicina, feche a tampa, selar as placas com parafilme e cultivar de cabeça para baixo a 37 ° C durante a noite.
- Inocular culturas bacterianas com mini-clones positivos escolhendo colônias crescidas com uma picareta do dente. Transferir o palito em 7,0 ml de LB fresco médio, contendo 100 mg / ml kanamicina e cultivar a 37 ° C durante a noite em um shaker a 200 rpm.
- Inocular 100 ml de LB fresco médio, contendo 100 mg / ml kanamicina 1:100 com a cultura ao longo da noite em um mini-1 frasco Erlenmeyer l, e incubar a 37 ° C durante a noite em um shaker a 200 rpm.
- Semente de 25 x 10 4 (número de células inoculadas depende da velocidade do crescimento das células da linha celular de acordo; confluência deve ser 70-80% ~ 24 horas após a semeadura) células de carcinoma gástrico (EPG85-257RDB) por poço em 6 - pratos bem e incubar estes em 37 ° C, em um CO 2, 5% de água atmosfera saturada de vapor durante a noite.
- Anterior à infecção de células cancerosas, ao longo culturas noite de tk RNAi vector contendo E. coli são medidos em um fotômetro para determinar a OD 600. Diluir a solução de bactérias até uma densidade óptica de 0,5 é atingido (OD 600 = 0,5 é igual a 1,6 x 10 8 células bacterianas / ml).
- Substituir o FCS contendo meio de cultura de células do carcinoma de células contra FCS meio livre 30 min anterior para bacterianas co-incubação.
- Lavar as bactérias duas vezes com 1 x PBS, e diluir em soro livre de Leibovitz L-15 médio.
- Adicionar bactérias diluído para as células cancerosas na desejado MOI (multiplicidade de infecção = número de células bacterianas por célula de câncer) e co-incubação de bactérias e células de câncer por 2 horas a 37 ° C.
- Após 2 horas de células co-incubação de câncer foram lavadas duas vezes com PBS 1x x e uma vez com o soro contendo Leibovitz L-15 meio suplementado com 100 u / ml de penicilina, estreptomicina 100 mg / ml, 2,5 mg / ml anfotericina, 150 mg / ml de gentamicina, e 100 mg / ml de canamicina.
- Continuar a cultivar as células cancerosas a 37 ° C, em um CO 2, 5% de água atmosfera de vapor saturado.
- Os efeitos do tratamento de bactérias pode ser visualizada por microscopia fluorescente, medido pelo quantitativo em tempo real RT PCR em nível de mRNA, e pela análise de western blot em nível de proteína, e mostra com ensaios funcionais como FACS, análise e ensaios de proliferação celular. (Se queria, estes procedimentos podem ser descritos em detalhe).
2) Resultados Representante
Se o protocolo for realizado corretamente, os resultados devem ser comparáveis aos mostrado abaixo.
Microscopia de fluorescência
A Figura 1 mostra uma célula de carcinoma gástrico humano três horas após o tratamento bacteriana (a) em comparação com uma célula não tratada (b). Ao redor do núcleo da célula tratada, as bactérias podem ser detectadas.

Figura 1: microscopia fluorescente de células de carcinoma gástrico Humanos após o tratamento de bactérias (1:500) e uma célula de carcinoma gástrico humano sem tratamento como controle, DAPI-coloração, DAPI bandpass filter (Λem = 640 nm), objetiva de 40x.
Quantitativa em tempo real RT PCR
Na figura 2 um regulamento para baixo de MDR1 mRNA de cerca de 70% (feixe de preto) pode ser visto após o tratamento com a bactéria terapêutico. Células dos pais servem como um controle positivo, devido à falta de MDR1 superexpressão. A linhagem celular 257RDB p170 contendo um plasmídeo expressando anti-MDR1 shRNAs s tomado como comparação direta da tecnologia de RNAi para R transkingdom outrosNAi silenciar estratégias. A linhagem de células resistentes tratadas EPG85-257RDB superexpressão MDR1, a linha de celular mesmo tratados com bactérias sem o plasmídeo shRNA expressar, e esta linhagem de células tratadas com bactérias terapêutica carregando um plasmídeo expressando anti-MRP2 shRNAs foram tomados como controles positivos.

Figura 2: quantitativa em tempo real RT PCR a expressão do mRNA MDR1 após o tratamento com E. terapêutica ceq221 coli expressando anti-MDR1 shRNAs (MOI 1: 500). Normalização foi realizada através do aldolase gene housekeeping. A relação MDR1/aldolase de células não tratadas da linha celular EPG85-257RDB foram criados 100%. P-valores foram calculados usando o teste t de Student (* = p <0,05, ** = p <0,005, *** = p <0,001).
Ocidental blot
Figura 3 revela que a MDR1 regulação também ocorreu no nível de proteína após o tratamento de bactérias. Ela mostra a falta de expressão da MDR1 linhagem de células de drogas sensíveis parental (EPG85-257p), a expressão da MDR1 não tratada linhagem de células resistentes aos medicamentos (EPG85-257RDB) ea expressão MDR1 da amostra tratada. A regulamentação clara para baixo de MDR1 das células tratadas com bactérias pode ser observada.

Figura 3: análise de Western blot MDR1 níveis de expressão do tratado de drogas sensíveis EPG85-257p, a não tratada resistentes a drogas EPG-257RDB, e de EPG85-257RDB após co-incubação com E.. coli ceq221 + p43 MDR1. Principal Ab C219 1:100, e anti-actina 1:5 000, secundário Ab anti-mouse 1:10 000.
Ensaio de citotoxicidade
Análise funcional como o ensaio de citotoxicidade mostrado na figura 4 também são indicadores para o funcionamento do RNAi transkingdom. A linhagem de células parentais e da linha de célula que contém um shRNA anit-MDR1 expressar plasmídeo não mostram qualquer resistência à daunorrubicina. A linhagem de células resistentes EPG85-257RDB e dois controles ainda não mostram mudanças significativas na resistência em comparação com a amostra tratada com anti-bactérias MDR1 shRNA expressando onde a resistência à daunorrubicina pode ser revertido em cerca de 90%.

Figura 4: Ensaio de Citotoxicidade. Drogas específicas IC50-valores determinados por um ensaio de citotoxicidade para a sobrevivência da célula. P-valores foram calculados usando o teste t de Student (* = p <0,05, ** = p <0,005, *** = p <0,001).
Antraciclina ensaio de acumulação
De acordo com a baixa resistência de amostras de bactérias tratada (figura 4), o acúmulo de células antraciclina anti-MDR1 shRNA tratada é aumentada em cerca de 90%, como mostrado na figura 5. A linhagem de células parentais e as linha celular 257RDB p170 mostram uma forte acumulação daunorrubicina até 100%. A variante resistente mostra raramente qualquer acumulação. Células tratadas com anti-bactérias MDR1 shRNA expressar mostram um aumento de acumulação anthracyline de 90%.

Figura 5: ensaio de antraciclina acumulação. Antraciclina acúmulo de células de carcinoma seis dias após o tratamento de bactérias medida por citometria de fluxo. P-valores foram calculados usando o teste t de Student (* = p <0,05, ** = p <0,005, *** = p <0,001).