Uma vez que um gene é identificada como potencialmente refratário para o vírus da dengue, deve ser avaliado para o seu papel na prevenção de infecções virais dentro do mosquito. Este protocolo ilustra como a extensão das infecções por dengue de mosquitos podem ser ensaiadas. As técnicas para crescer o vírus em cultura, alimentando-se membrana de sangue os mosquitos humanos e assaying títulos viral no intestino médio do mosquito são demonstradas.
Artigo de método
Protocolo para infecções por dengue em mosquitos (A. aegypti) e Determinação Fenótipo Infecção
Neste artigo
Resumo
Resumo
O objetivo deste procedimento é para infectar o mosquito Aedes com o vírus da dengue em uma condição de laboratório e examinar o nível de infecção e dinâmica do vírus nos tecidos do mosquito. Este protocolo é utilizado rotineiramente para o estudo de interações mosquito-vírus, especialmente para a identificação de novos fatores de host que são capazes de determinar a competência vetorial. Todo o experimento deve ser realizado em um laboratório BSL2. Semelhantes às infecções Plasmodium falciparum, traje apropriado, incluindo luvas e jaleco deve ser usado em todos os momentos. Após o experimento, todos os materiais que entraram em contato com o vírus precisam ser tratados com etanol 75% e branqueadas antes de prosseguir com a lavagem normal. Todos os outros materiais devem ser autoclavados antes de descartá-los.
Protocolo
A. Propagar vírus na linhagem de células C6/36.
- Células crescem a 80% confluência em 75 frasco cm 2;
- Remova a mídia com 3-4 ml que fica no frasco;
- Tomar 0,5 ml do vírus estoque e adicionar na célula acima, com a multiplicidade de infecção de 1,5 partículas de vírus por célula. Agitar o frasco durante 15 minutos lentamente na temperatura ambiente.
- Incubar por 45 minutos em 5% CO 2 e 37 ° C
- Adicionar 30 ml de mídia, e incubar por 5 dias.
B. Prepare a mistura de vírus e de sangue
- Retire a célula com o raspador e transferir o celular e mídia para os 50 mL tubos cônicos;
- Centrifugado a 800g por 10 minutos; coletar o sobrenadante, mas deixar 1ml do sobrenadante com o pellet celular;
- Congelar o pellet celular acima das emissões de CO 2 e, em seguida, secar descongelar em banho-maria 37 ° C, repita duas a três vezes;
- Centrifugado a 800g por 10 minutos, retirar o sobrenadante, e combinam com o sobrenadante do passo 3;
- Coletar sangue humano total com o mesmo procedimento (passo 3) para a preparação da cultura gametócitos para infectar mosquitos Anopheles com Plasmodium falciparum;
- Combinar a quantidade igual de todo o sangue acima do humano com o vírus sobrenadante do passo 4, e adicionar soro humano (10% do volume total).
- Incubar a mistura acima de sangue humano e vírus da dengue durante 30 minutos a 37 ° C banho de água
Alimentação mosquitos C.
Este procedimento é quase idêntico ao que foi descrito na seção de infecções Plasmodium falciparum em mosquitos. Nós ensaio a infecção do intestino médio no dia 7, ea infecção salivar em 14 dias após a sangue-feeding. Todo o material que entrou em contato com o vírus são tratados pela primeira vez com etanol 75% e depois com lixívia a 10%.
D. Ensaio o título do vírus no tecido mosquito
- Dois ou três dias antes da dissecação de tecido mosquito, crescer C6/36 célula em uma placa de 24 poços de tal forma que a célula de chegar a 80% confluência no dia em que o ensaio é realizado;
- Os mosquitos são anestesiados a 4 ° C, sacrificados e surgiu estéril, mergulhando-os em etanol 75% por 1 minuto. Em seguida, os mosquitos foram lavados com água estéril duas vezes antes de dissecção da glândula salivar do intestino médio ou sob o microscópio de dissecação. A partir deste passo, todo o procedimento a seguir deve ser conduzido em um ambiente estéril, como uma cabine de segurança biológica. Estes tecidos são transferidos para um tubo contendo 150 mL de mídia e homogeneizados com uma pelota Kontes pilão do motor por 90 segundos;
- Fazer uma diluição de 1:100, adicionando 10 ml do homogenato em media 990 mL;
- Fazer mais um: 10, 1:100 e 1:1000 de diluição com o meio na placa de 96 poços;
- Remova a mídia na placa de 24 poços, e adicione 100 ml de cada uma das diluições acima de quatro em cada cavidade correspondente;
- Agite a placa lentamente por 15 minutos na temperatura ambiente, em seguida, incubar por 45 minutos em 5% CO 2 e 37 ° C;
- Adicionar 1 ml de Metilcelulosa overlay (1%) a cada poço;
- Incubar as placas a 37 ° C com 5% de CO 2 durante 5 dias;
- Os passos a partir daqui não requerem um ambiente estéril, mas como com qualquer outro cuidado deve ser tomado patógeno em todos os momentos. Descartar overlay Metilcelulosa de cada prato e blot para remover excesso de mídia
- Adicionar 1 ml de metanol / acetona fixador (1:1) a cada poço. Manter a 4 ° C por 1 h;
- Deitar fora o fixador, e lave uma vez com 1X PBS;
- Faça 1:1000 diluição para o anticorpo primário contra o vírus com Blotto 5%;
- Adicionar 200 mL de líquido hiperimune diluído a cada C bem, incubar a 37 ° para 1 hora;
- Remover o líquido hiperimune e placa de lavagem com PBS 1 X
- Prepare uma diluição 1:1000 do conjugado de cabra anti-rato (KPL Cat # 074-1806) em 5% dopada (5g de leite em pó desnatado em 100 ml de PBS 1 X), e depois adicionar 200 mL em cada poço e incubar a 37 ° C por 1 h;
- Prepare substrato da seguinte forma: adicionar 1 comprimido de 3'-diaminobenzidina terrahydrochloride (Sigma Cat # D5905) em 20 ml de PBS 1 X, depois de dissolvido, e então adicionar 8 mL de peróxido de hidrogênio 30%
- Adicionar 200 mL do substrato acima para cada poço. Deixe descansar em temperatura ambiente por 10 minutos
- Remover substrato e parar a reação pela adição de 1ml de água destilada para cada poço
- Despeje em pratos de água e secar para secar
- Contar a partícula do vírus
Materiais
| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários | |
|---|---|---|---|---|
| Incubadora | com 5% de CO₂, 37 °C | |||
| Tubos cônicos de 50 ml | plástico | |||
| Ponteira de pipeta | para cultura de tecidos | |||
| Pipetador | ||||
| Pipetas de Pasteur | vidro, estéreis | |||
| Banho-maria | 37 °C | |||
| Centrífuga | ||||
| Parafina plástica (parafilm) | ||||
| Banho de água com circulação | ||||
| Alimentadores com membrana de vidro | com tubo de borracha para adaptar aos alimentadores | |||
| Copos para mosquitos | ||||
| Etanol 75% | ||||
| Água sanitária 10% | ||||
| Placas de cultura de tecidos | placas de 6 poços, 24 poços e 96 poços | |||
| Placa de Petri | vidro | |||
| Lâminas | ||||
| Pinzas de ponta fina | ||||
| PBS | 1X, estéril | |||
| Microscópio estereoscópico | Microscópio | |||
| Células C6/36 | células | Para propagação de vírus | ||
| Meio C6/36 | MEM com 10% de FBS inativado pelo calor, 1% de L-glutamina e aminoácidos não essenciais e 1% (v/v) de penicilina-estreptomicina. | |||
| 3’-Diaminobenzidina tetrahidrocloridrato | Sigma-Aldrich | D5905 | 1 comprimido em 20 ml de PBS 1X, dissolver e depois adicionar 8 μl de peróxido de hidrogênio a 30% | |
| Peróxido de hidrogênio a 30% | ||||
| A. aegypti | Animal | mosquito |
Reimpressões e permissões
