1. Avaliação da Especificidade de Alvos de microRNA: Ensaio de Disseminação Viral Utilizando Miméticos Sintéticos de microRNA
NOTA: O uso de um mimético de microRNA sintético é realizado para demonstrar a especificidade da interação microRNA:microRNA-alvo.
- Inclua controles de transfeção mock, controle negativo com mimetizador de microRNA e apenas controle com mimetizador de microRNA experimental em cada ensaio para avaliar a toxicidade mediada por microRNA. Também é ideal incluir um controle positivo (ou seja, gene ou genoma alvo do microRNA), pois baixa eficiência de transfeção dos mimetizadores de microRNA pode resultar em falsos negativos.
- Plaque células H1-HeLa em uma placa de cultura tecidual de 96 poços de modo que estejam 80-90% confluentes no momento da transfeção (24 h após semeadura). Plaque as células em DMEM (meio de Eagle modificado por Dulbecco) suplementado com 10% de soro bovino fetal, utilizando 0,1 mL por poço.
NOTA: Realize este ensaio em células permissivas para replicação viral que não expressem os microRNAs cognatos. - Aqueça os reagentes de transfeção à temperatura ambiente. Combine 9 µL de meio sem soro, estoque de mimetizador de microRNA em concentração final de 200 nM por poço, 0,18 µL de reagente potencializador, 0,18 µL de reagente de transfeção e misture. Incube a mistura à temperatura ambiente por 2-5 min.
NOTA: Os volumes listados são por poço. Recomenda-se preparar uma mistura-mestre para a transfeção de todos os poços, a fim de manter a consistência e minimizar erros de pipetagem. A concentração ideal do mimetizador de microRNA pode variar. Consulte as instruções do fabricante fornecidas com o mimetizador de microRNA para obter uma concentração inicial adequada. Geralmente, essa concentração varia entre 5 e 200 nM. - Aspire o meio dos poços e adicione 92 µL de meio completo fresco.
NOTA: Se houver um número significativo de amostras, realize este passo antes de preparar a solução de transfeção e mantenha a placa a 37 °C até o momento adequado. - Adicione toda a mistura de transfeção às células gota a gota.
- Incube a 37 °C por 6 h.
- Infecte cada poço com uma baixa MOI (multiplicidade de infecção) para garantir que uma baixa porcentagem de células seja infectada, permitindo a análise da disseminação viral. Este protocolo utiliza uma MOI de 0,2.
- Dilua os estoques virais em meio sem soro até uma concentração de MOI = 0,2 por 100 µL. Remova o meio dos poços e adicione 100 µL da diluição viral por poço.
- Incube a 37 °C por 2 h.
- Aspire o meio de cada poço e adicione 100 µL de meio completo fresco.
- Incube a 37 °C por 20-22 h.
- Determine a titulação viral nos sobrenadantes.
- Colete o sobrenadante de cada poço e substitua por 100 µL de meio completo fresco.
NOTA: Se estiver usando células em suspensão, re-suspenda o pellet celular do passo seguinte em 100 µL de meio completo fresco e devolva ao poço da amostra para o ensaio de viabilidade. - Remova os detritos celulares dos sobrenadantes coletados por centrifugação a 300 x g durante 5 min a 4 °C.
- Transfira o sobrenadante clarificado para um tubo novo e titule o vírus infeccioso em células permissivas que não expressem os microRNAs cognatos.
NOTA: Mantenha todas as amostras em gelo para evitar perda de infectividade.