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1. Cultura de células epiteliais da córnea humana
- Cultive HCEC imortalizado em frascos revestidos de colágeno de 75 cm² com 20 mL de meio Eagle modificado de Dulbecco/mistura de nutrientes F-12 (DMEM/F12) contendo 10% de soro fetal bovino (FBS) e 1% de penicilina/estreptomicina a 37 °C com 5% de CO2,
NOTA: Não é necessário agitar.
- Mude a mídia a cada 2 a 3 dias.
2. Preparação das células para o ensaio
- Depois que as células estiverem quase confluentes, remova os meios de cultura.
- Adicionar 4−6 ml de solução de dissociação celular a cada balão de 75 cm². Incubar as células a 37 °C até que as células se desprendam (aproximadamente 20−30 min), verificando ao microscópio periodicamente.
- Adicione 2−6 mL de DMEM/F12 contendo 10% de FBS a cada frasco de 75 cm².
- Transferir o conteúdo do balão para um tubo de centrifugação de 50 ml.
- Centrifugue as células a 450−500 x g por 5 min. Pipete o sobrenadante e ressuspenda as células em meio pré-aquecido.
- Conte as células usando um hemocitômetro. Calcule o volume de mídia que contém um total de 1 x 105 células.
- Adicione 1 x 105 células a cada poço de uma placa de cultura revestida com colágeno-1 de 48 poços. Adicione meios suficientes ao poço para que o volume final de meios no poço seja de 0,5 mL de cultura DMEM/F12 com 10% de FBS.
NOTA: Uma formulação de lágrima artificial pode causar citotoxicidade que pode ser medida por uma diminuição na atividade metabólica do HCEC. A consistência dos dados depende da adição do mesmo número de HCEC a cada poço durante a semeadura. A concentração de cultura recomendada para placas de 48 poços é de 1 x 105. Como as células de mamíferos podem se depositar no tubo de centrífuga após a ressuspensão, recomenda-se ressuspender as células por agitação com frequência enquanto semeia as placas com células, de modo que a suspensão celular tenha o HCEC igualmente distribuído.
- Incubar as células a 37 °C e 5% de CO2 durante 24 h.
3. Sem protocolo de dessecação
- Procedimento de controlo
- Após 24 horas de incubação, retirar os meios de cultura da placa.
- Trate imediatamente com 150 μL de uma formulação de teste e solução de controle de meios.
- Incubar as células a 37 °C e 5% de CO2 durante 30 min.
- Remova as soluções de teste das células.
- Adicione 0,5 mL de solução de corante metabólico a 10% para testar a atividade metabólica. Incubar as células por mais 4 h a 37 °C e 5% de CO2.
- Após o período de incubação de 4 h, remova 100 μL de solução de corante metabólico de cada poço e coloque cada 100 μL em um poço de uma placa de 96 poços.
- Meça a fluorescência de cada poço usando um leitor de placas fluorescentes (Tabela de Materiais). Definir o comprimento de onda de excitação em 540 nm e o comprimento de onda de emissão em 590 nm.
- Sem protocolo de dessecação (procedimento de recuperação)
- Repita as etapas 3.1.1 a 3.1.4.
- Adicione 0,5 mL de mídia DMEM/F12 a cada poço.
- Incubar um conjunto de culturas durante 18 h a 37 °C e 5% de CO2.
- Remova o meio e adicione 0,5 mL de solução de corante metabólico a 10%. Repita as etapas 3.1.6 e 3.1.7.