Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária do JoVE.
1. Construção do Microinjetor para Estimulação e Gravação (Figura 1a)
- Meça o comprimento da cânula e da sonda (neste exemplo, um nanossensor). A sonda deve ser mais longa que a cânula pelo comprimento que deve se projetar da ponta da cânula (dependendo do design da sonda), mais aproximadamente 2 cm.
- Sob uma lupa ou um microscópio (ampliação de ~10x), carregue a sonda na cânula; se possível, é preferível uma carga reversa para proteger a ponta da sonda.
NOTA: Esta etapa, realizada manualmente, é desafiadora. Recomenda-se praticar com um microeletrodo sob uma lupa antes de tentar com uma sonda experimental real. - Passe a cânula (contendo a sonda) pela ponteira superior, junção em T e ponteira inferior.
- Se a sonda for apenas um único fio sem nenhum acessório, carregue-a na cânula e insira o conjunto na junção em T a partir da ponteira inferior. A parte superior da cânula (lado plano) deve ser posicionada no meio da junção em T, dentro da parte inferior, mas não na ponteira superior. A sonda experimental ou biossensor deve sobressair acima do topo da ponteira.
NOTA: As ponteiras feitas sob medida também podem ser feitas fazendo um furo nos plugues da ponteira usando microbrocas, sendo o tamanho do furo baseado no diâmetro necessário para apertar a cânula na junção em T.
- Use a chave de ponteira para apertar as ponteiras na parte superior e inferior da junção em T. Não aperte demais. Um pequeno pedaço de tubo pode ser adicionado para fortalecer o suporte do eletrodo dentro da ponteira superior.
- Solde pinos de ouro em cada um dos terminais da sonda (sinal, terra, etc.), de acordo com as especificações da sonda.
- Ajuste a posição relativa da sonda e da cânula. Meça a distância que a sonda está projetando da cânula sob ampliação e ajuste manualmente a partir da extremidade superior (a sonda pode deslizar livremente dentro das ponteiras).
- Adicione cola epóxi entre os pinos dourados e a ponteira superior para prender a sonda à ponteira.
- Desaparafuse a ponteira superior para retrair a sonda dentro da cânula. Confirme visualmente se a sonda está totalmente dentro da cânula sob ampliação.
- Conecte o injetor ao microdrive.
2. Construção do Microinjetor para Infusão de Medicamentos (Figura 1b)
- Fixe a extremidade "não chanfrada" ou plana da cânula na parte inferior da junção em T usando uma ponteira. Use a chave de ponteira para apertar a ponteira.
- Conecte um pequeno pedaço de tubo capilar (~ 1,5 cm) ao topo da junção em T, passando-o pela ponteira padrão. Aperte com uma chave de ponteira.
- Carregue o microeletrodo através da tubulação capilar, junção em T, cânula e ponteiras correspondentes.
- Certifique-se de que a extremidade traseira do eletrodo se projete a menos de 1 cm da parte de trás do tubo capilar e a ponta do eletrodo se projete da cânula na distância desejada na parte inferior. A posição do eletrodo pode ser ajustada manualmente a partir da extremidade superior.
- Solde um pino dourado no terminal do microeletrodo.
- Adicione cola epóxi entre o pino dourado e a ponteira superior para prender o microeletrodo à ponteira.
- Desaparafuse a ponteira superior para retrair a sonda dentro da cânula. Confirme visualmente se o microeletrodo está totalmente retraído para dentro da cânula.
3. Construção do Circuito Microfluídico (Figura 2)
- Coloque uma placa de ensaio em uma superfície estável. Coloque as duas válvulas de três vias paralelas aos lados mais longos da placa de ensaio, cerca de 6 pol. separados, com uma porta (aquela que está sempre aberta) de frente uma para a outra. Use parafusos para fixar as válvulas na placa de ensaio.
- Coloque uma régua ao lado das válvulas (para medir e rastrear o movimento dos fluidos dentro da tubulação capilar).
- Coloque uma mistura de óleo de baixa viscosidade 1:1 e corante alimentar (marcador) na seringa estanque ao gás e coloque na bomba marcadora. Corte um pedaço de tubo capilar e use ponteiras padrão e conectores Luer-lock para conectar a seringa a uma das portas da válvula de entrada. Esta é a "linha marcadora".
- Corte um pequeno pedaço de tubo capilar para a "linha da régua". Use ponteiras padrão para apertar as portas de face das válvulas.
- Corte dois pedaços mais longos de tubo capilar para conectar a válvula de saída à microinjeção e para conectar a bomba de drogas à válvula de entrada (use ponteiras padrão).
NOTA: O comprimento dessas duas linhas depende da configuração experimental, uma deve ser longa o suficiente para alcançar do aparelho de infusão ao animal e a outra da bomba de drogas à válvula de entrada. Use uma pedra de clivagem para cortar o tubo capilar.
4. Montagem do Microinjectrode no Microdrive (Figura 3)
- Certifique-se de que o microeletrodo/sonda experimental esteja retraído na cânula antes da montagem.
NOTA: O tubo guia deve estar em uma posição no microdrive. - Conecte um adaptador feito sob medida ao microinjetor.
- Carregue a microinjeção através do tubo guia e prenda-a ao adaptador usando parafusos.
- Meça a posição do microdrive (profundidade) na qual a microinjeção se projeta do tubo guia e, em seguida, retraia-a ~ 1 cm para se preparar para a inserção.
- Para experimentos de microinfusão, conecte a "linha cerebral" à abertura da junção em T não utilizada do microeletrodo. Use uma ponteira padrão e aperte-a com uma chave de ponteira.
5. Lavagem e preparação do sistema microfluídico
- Posicione o microdrive com a microinjeção sobre um copo de resíduos.
- Carregue a clorexidina (por exemplo, nolvasan, dissolvido a 20 g/L) na seringa estanque a gás de 1 mL e coloque-a na bomba de medicamentos. Gire a direção do fluxo das válvulas de forma que o fluido passe da bomba de drogas através da válvula para a linha da válvula e saia pela "linha do cérebro".
- Lave o circuito com clorexidina usando uma baixa vazão (50-200 μL/min) por um mínimo de 10 min. Repita as etapas 5.2 a 5.3 com solução salina estéril e depois arejado.
NOTA: É importante verificar se há vazamentos neste stage. Aplique suavemente lenços sem fiapos nas junções para ajudar a revelar qualquer vazamento de líquido através das ponteiras. - Carregue o medicamento na seringa estanque a gás de 500 μL, comprima o ar e coloque na bomba de medicamentos. Fluxo a 50 μL / min até que algumas gotas fluam da microinjetora.
- Mergulhe o tubo-guia em clorexidina (dissolvido a 20 g/L) por 15 min.
- Gire a direção da válvula de saída em direção à "linha de lavagem". Avance a bomba Marker até que uma borda clara de cor e óleo seja observada na linha da régua. Certifique-se de que sempre haja óleo entre o medicamento e a cor para não misturar os dois materiais solúveis em água e perder a borda afiada entre eles. Marque a posição inicial desta linha de óleo/corante (com um pedaço de fita adesiva ou marcador).
- Gire a direção da válvula de saída em direção à linha do cérebro.
6. Realização de gravação ou experimento de infusão
NOTA: As etapas de manuseio do animal variam de acordo com o laboratório e o experimento. As etapas a seguir devem ser realizadas após a configuração cirúrgica necessária e a preparação para expor a dura-máter. Após o experimento, todas as etapas pós-procedimento necessárias devem ser realizadas de acordo com os protocolos aprovados institucionalmente.
- Conecte o microdrive à câmara de gravação. Abaixe o tubo-guia para penetrar na dura-máter.
NOTA: O tubo-guia não deve penetrar além da dura-máter para evitar danos ao córtex. - Abaixe o microinjetor para cerca de 2 mm acima do local de registro / injeção no cérebro.
- Aperte a ponteira superior (microeletrodo/biossensor saliente) e conecte os pinos dourados ao sistema de gravação. Continue avançando a microinjeção até o local alvo.
NOTA: Lembre-se de incluir a distância que o microeletrodo se estende além da cânula nos cálculos. - Para experimentos de infusão, use a bomba de microsseringa manual para mover a coluna de óleo em 1 cm a cada 3 min (~ 60 nL / min). Uma vez que o volume desejado tenha sido infundido, mude a válvula de saída para a linha de lavagem.
NOTA: O volume infundido varia de acordo com a espécie do modelo e a área do cérebro visada. Taxas de fluxo mais rápidas podem danificar o tecido neural. - Quando os experimentos estiverem concluídos, retraia a microinjeção dentro do tubo guia (deixe a sonda saliente). Em seguida, remova o microdrive para lavagem. Lave o sistema microfluídico para se preparar para a reutilização. nota: Em nossa experiência, a microinjeção durará vários usos se forem tomados os devidos cuidados. A qualidade do registro eletrofisiológico cai mais rápido do que a capacidade de injeção.