1. Isolamento da principal cultura de fibroblastos humanos normais mamárias
Procedimentos experimentais para isolar principal cultura de fibroblastos humanos normais mamárias são descritas na fig. 1A.
- Prepare a célula tampão dissociação, como descrito anteriormente 12: Médio Modified Dulbecco Águia (DMEM) com 10% de soro fetal bovino (FCS), a penicilina-estreptomicina (200 unidades / ml), colagenase tipo I (1 mg / ml) e hialuronidase ( 125 unidades / ml).
- Lave o tecido mamário dissecada a partir de uma mamoplastia de redução (~ 0,5 grama) várias vezes em tampão fosfato salino (PBS). Picar o tecido em fragmentos pequenos (<1,5 mm 3) com lâminas de barbear estéril.
- Transferir os fragmentos de tecido em um tubo cônico de 15 ml contendo uma quantidade adequada de células acima dissociação buffer (10 ml por 0,5 grama de tecido) e vortex por 1 min em velocidade máxima.
- Digerir os fragmentos de tecido na célula dissociação tampão f18/12 h ou a 37 ° C com agitação lenta. * Nota que haverá ainda muitos pedaços de fragmentos de tecido não digerida restante no tubo.
- Incubar o tubo por 5 min à temperatura ambiente sem agitação. Transferência resultante do estroma celular enriquecido sobrenadante para um novo tubo cônico com uma pipeta de 5 ml sorológicos.
- Centrífuga a fração estromal por 5 min a 250 X g e ressuspender o sedimento celular em PBS. Centrifugar novamente por 5 min a 250 X g e ressuspender o pellet celular em DMEM suplementado com 10% SFB. Cultura as células em DMEM contendo 10% SFB em um prato de 15 centímetros de Petri a 37 ° C e dióxido de carbono de 5%.
- Propagar as células até confluentes. Pode levar 80-10 dias. Armazenar as células a -80 ° C, utilizando meio de congelamento (10% dimetil sulfóxido e FCS de 20% em DMEM). Prepare 5 frascos congelados como um estoque original. Descongelar um frasco e expandir as células para preparar 5 frascos para a secundária de ações contendo fibroblastos várias passagens dentro de 5 a populaçãoduplicações (PDs) para os experimentos subseqüentes. Estes procedimentos minimizar seleção clonal e estresse cultura que poderia ocorrer durante a cultura de tecidos estendidos. * Nota: P1.1-7 também podem ser usados para isolar FAC de carcinomas de mama obtidos por uma mastectomia 12.
2. Geração de GFP-etiquetadas, puromicina resistente, imortalizado humano normal fibroblastos mamárias
- Para imortalizar o principal fibroblastos humanos normais mamárias isoladas em P1.7), introduzir um pMIG retroviral (MSCV-IRES-GFP) vector 12, expressando tanto hTERT e GFP. Cultura das células para os dias 05/04 e, em seguida, classificar a GFP células positivas por citometria de fluxo.
- Introduzir uma retroviral pBabe-puro construir codificação de um gene de resistência puromicina para os fibroblastos GFP-etiquetadas imortalizado. Cultura das células durante 5-7 dias na presença de puromicina (concentração final: 1 mg / ml) para isolar a GFP-positivo (GFP +), puromicina-resistente (R puro
- Em seguida, examinar se esses fibroblastos produzem vírus ativo, o que pode levar à transferência horizontal de genes que codificam GFP e resistência puromicina, crescer 2.5x10 5 GFP + puro R imortalizado fibroblastos humanos mamária em uma placa de Petri seis centímetros por 2 dias.
- Meio filtrante condicionada por estes fibroblastos utilizando um filtro de seringa (tamanho dos poros: 0,45 mm) e adicioná-lo em 10T1 / 2 células de camundongos fibroblástica por 12h na presença de sulfato de protamina (5 mg / ml), que aumenta a eficiência da infecção pelo vírus. O meio é, então, alterado para 10% FCS-DMEM por mais 2 dias.
- Examine as células por uma microscopia de fluorescência. 10T1 / 2 células infectadas pelo vírus da GFP se tornará GFP-positivo. Também tratar as células com puromicina (1 mg / ml) por 5-7 dias e observar a placa se houver puro R 10T1 / 2 células são colônias presentes e forma após o tratamento puromicina.
- Note que o gene horizontal transfer por vírus ativo produzido pelo GFP parental puro + R fibroblastos humanos mamárias pode tornar as células ao redor murino e / ou carcinoma de células GFP + R puro dentro xenoenxertos tumor. Isto pode dificultar os processos de isolar a GFP inicialmente injetado + puro R fibroblastos humanos mamárias da xenoenxertos tumor.
3-A. Coinjection de fibroblastos humanos com células mamárias carcinoma de mama em um mouse imunodeficientes
Procedimentos experimentais para a geração de exp-FAC são ilustrados na figura. 1BA.
- Mix 1x10 6 MCF-7-ras células de carcinoma de mama humano e 3x10 6 GFP + R puro, imortalizado fibroblastos humanos mamárias gerada em P2.2). Prepare as células em 400 mL de meio de cultura com 50% (v / v) Matrigel por injeção.
- Injete a mistura de células por via subcutânea em um mouse imunodeficientes nude. Quando FAC são extraídos de forma independente a partir de diferentestumores, implantes cada mistura em flancos direito e esquerdo de vários ratos.
3b. Injeção de fibroblastos humanos mamárias em um mouse imunodeficientes
- Para gerar fibroblastos controle contra exp-FAC, prepare 3x10 6 GFP + puro R imortalizado fibroblastos humanos mamárias gerada em P2.2 em 400 mL de meio de cultura com 50% (v / v) Matrigel por injeção (Fig. 1BB). NÃO misturar os fibroblastos com células de carcinoma.
- Implante os fibroblastos preparado em P3b.1 em sites subcutânea de camundongos nude.
* Note-se que os fibroblastos inoculados formarão o tecido fibroblástico tumor, mas não sob a pele.
4a. Dissecção do tumor xenoenxerto
- Eutanásia o mouse abrigar um subcutânea humana xenoenxerto de câncer de mama 42 dias pós-implantação (Fig. 1BA). * Nota que, quando células de carcinoma outros e / ou fibroblastos são coimplanted, Fibroblastos podem precisar de ser incubadas por mais de 42 dias dentro do xenoenxerto tumor para iniciar seu fenótipo miofibroblástica.
- Colheita do xenoenxerto tumor do flanco do mouse por dissecção romba com a pinça e tesoura. Mergulhe o tecido tumoral em PBS.
4b. Dissecação de xenoenxerto fibroblastos
- Eutanásia o mouse abrigar o xenoenxerto de fibroblastos 42 dias pós-implantação (Fig. 1BB).
- Dissecar o xenoenxerto de fibroblastos subcutânea usando uma pinça e tesouras. Coloque o tecido fibroblástico em PBS. * Nota que um xenoenxerto de fibroblastos, que aparece como um tecido transparente pequena, pode ser difícil encontrar sob a pele.
5. Preparação de células primárias cultivadas a partir de xenoenxertos
- Use um gabinete de biossegurança estéril para dissecar o tumor (~ 0,5 grama) ou tecido fibroblástico (~ grama 0,1). Transferir os tecidos extirpados para o topo de uma cultura de 15 centímetros dish com 1 ml de PBS. Picar os tecidos em fragmentos de tecido pequenos (<1,5 mm 3) com lâminas de barbear estéril. * Observe que se o xenoenxerto de fibroblastos pesa menos de 0,1 grama, recolher alguns xenoenxertos fibroblastos adicionais e misturá-los juntos para aumentar o número de células para isolamento.
- Transferir os fragmentos de tecido em um tubo cônico de 15 ml que contém a célula dissociação buffer (10 ml por 0,5 grama de tecido) e vortex por 1 min em velocidade máxima.
- Incubar a suspensão de células por 3 horas a 37 ° C com agitação lenta e contínua.
6. Isolamento de puromicina resistentes células em cultura
- Centrifugar a suspensão de células dissociadas a partir de fibroblastos de tumor ou xenoenxerto por 5 min a 250 X g e ressuspender o pellet celular em PBS. Centrifugar novamente por 5 min a 250 g. X Ressuspender o pellet celular, resultando em 10% FCS-DMEM. Cultura as células em um prato de 15 centímetros de petri na presença de puromicina (1 mg / ml) a 37 ° Ce dióxido de carbono de 5%, a fim de eliminar quaisquer células de carcinoma contaminação e / ou murino células do estroma. Propagar as células até confluentes (2-4 semanas). Armazenar as células a -80 ° C, utilizando meio de congelamento. * Observe que o resultado puro células R, designado exp-Caf1 de 42 dias de idade (Fig. 1BA) ou controle de fibroblastos-1 células (Fig. 1BB), são imortais e positivas para GFP. É recomendável verificar se essas células produzem vírus ativo usando 10T1 / 2 células, como descrito em P2.3-6.
7a. Isolamento de exp CaF2-células em cultura
Para impulsionar ainda mais o fenótipo ativado miofibroblástica da FAC, misture os 42 dias de idade exp-Caf1 células com MCF-7-ras células e injetá-las novamente por via subcutânea em um rato nu por períodos adicionais de 200 dias. Dissecar e dissociar a xenoenxerto tumor em uma suspensão de uma única célula e cultura as células em um prato de 15 centímetros de Petri com 10% FCS-DMEM, na presença de puromicina (1 mg / ml), como indicado na P6.1. Propagar as células até confluentes (8-10 dias). Armazenar as células a -80 ° C, utilizando meio de congelamento. O resultado células são nomeadas puro R 242 dias de idade exp-CaF2 células (Fig. 1BA).
7b. Extração de controle de fibroblastos-2 células em cultura
Para gerar fibroblastos controle contra exp-CaF2 células, injetar 42 dias de idade controle de fibroblastos-1 células sozinho, sem células de carcinoma por via subcutânea em um rato nu adicionalmente para 200 dias. Dissecar e dissociar o tecido fibroblástico em uma suspensão de células individuais e cultura as células em um prato de 15 centímetros de Petri com 10% FCS-DMEM, na presença de puromicina (1 mg / ml), conforme indicado em P6.1. Propagar as células até confluentes (3-4 semanas). Armazenar as células a -80 ° C, utilizando meio de congelamento. O resultado células puro R são nomeados de fibroblastos-2 controle de células (Fig. 1BB).
8. Resultados representativos:
Controle de fibroblastos-2 e exp-CaF2 cells, que foram extraídos de tumor de mama xenoenxertos, corados fortemente positiva para marcadores mesenquimais, incluindo humanos específicos vimentina, prolil-4-hidroxilase, 1A colagénio, fibronectina, S100A4, e proteína de superfície de fibroblastos (Fig. 2A) 11, indicando humana origem ea natureza dessas células mesenquimais. Em contraste, a citoqueratina, um marcador de células epiteliais, não foi manchado nestes + GFP fibroblastos (Fig. 2B). Esses achados, portanto, sugerem que o extraído exp CaF2 e controle de fibroblastos-2 células ter se originado a partir da dos pais humanos fibroblastos mamárias, inicialmente introduzido xenoenxerto mouse.
Importante, uma maior proporção de exp-CaF2 células coradas positivas para α-SMA e da glicoproteína da matriz extracelular tenascina-C 5, sendo que ambos são marcadores de miofibroblastos em comparação com 42 dias de idade exp Caf1 e controle de fibroblastos-2 células (Fig . 2C, D) 11. Estes dados indicam que fibr humana residente mamáriasoblasts progressivamente evoluir para miofibroblastos CAF dentro xenoenxertos tumor.

Figura 1 Representação esquemática do isolamento de fibroblastos humanos mamária. A) O tecido mamoplastia de redução foi picada utilizando lâminas de barbear estéril (P1.2) e transferido para um tubo cônico de 15 ml (P1.3). Os pequenos fragmentos de tecido foram digeridos na célula dissociação buffer (P1.4) e preparado para a cultura in vitro (P1.5-7). Para imortalizar o isolado humanos primários fibroblastos mamárias, uma pMIG retroviral (MSCV-IRES-GFP) vector, expressando tanto hTERT e GFP, foi introduzido, ea GFP-positivos resultantes células foram classificados usando citometria de fluxo (P2.1). Um vetor pBabe puro-retroviral codificação de um gene de resistência puromicina foi, então, introduzidos nessas células. Após o tratamento puromicina, GFP-etiquetadas (GFP +) puromicina-resistente (Puro R), immortalised fibroblastos humanos mamária foram isolados (P2.2).
Ba) Para gerar exp-FAC, GFP + puro R imortalizado fibroblastos humanos mamária foram coinjected com MCF-7-ras células de carcinoma de mama por via subcutânea em um mouse imunodeficientes nude (P3a). O xenoenxerto tumor foi retirado em 42 dias após a implantação (P4a) e dissociada em uma suspensão de uma única célula (P5). Essas células foram então cultivadas in vitro na presença de puromicina para eliminar qualquer contaminação e células de carcinoma de células do estroma do mouse (P6). O resultado puromicina resistentes células foram denominadas experimentalmente gerados Caf1 (exp-Caf1) células. Estas células, ressecadas 42 dias pós-implantação, foram mais uma vez misturado com MCF-7-ras células e implantado por via subcutânea em um rato de acolhimento, como antes (P7a). O tumor resultante foi permitido crescer por períodos adicionais de 200 dias, em seguida, dissecado, dissociado, e cultivadas na presença de puromicina. O isoladopuromicina resistentes células foram denominadas células-exp CaF2 (242 dias de idade).
Bb) Para isolar as células controle contra exp-FAC, GFP + puro R imortalizado fibroblastos humanos mamárias foram injetados em um rato nu como culturas puras sem MCF-7-ras células (P3b). O tecido fibroblástico, dissecados 42 dias pós-implantação (P4B), foi dissociada em uma única célula suspensões (P5) e puromicina resistentes células, chamado de controle de fibroblastos-1 células, foram isoladas como descrito anteriormente (P6). Esses fibroblastos foram mais uma vez implantado no subcutâneo em um rato nu sem MCF-7-ras células adicionalmente para 200 dias (p7b). O tecido fibroblástico foi dissecada, dissociado, e cultivadas na presença de puromicina. O isolado puromicina resistentes células foram denominadas de fibroblastos-2 controle de células (242 dias de idade).

Figura 2 (B) Em contrapartida, pan-citoqueratina, um marcador de células epiteliais , não é detectado no exp-CaF2 células expressando GFP (verde). Núcleos das células são coradas com 4'-6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) (azul). Barra de escala, 50 mm (designado de Kojima et al. 11)
(C) imunofluorescência de exp-CaF2 células fibroblasto-2 e controle de células (controle f.), utilizando anticorpos contra α-SMA (vermelho) ou tenascina-C (TN-C) (vermelho). Núcleos das células são coradas com DAPI (azul). Barra de escala, 50 mm. (D) 48% de exp-CaF2 células mancha positiva para α-SMA, enquanto que um4% de 42 dias de idade exp-Caf1 e 2,5% do controle populações de fibroblastos-2 de células positivas para α-SMA. (Referido a partir de Kojima et al.11)