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Consulte a Figura 1 para um esquema básico do início procedimento com o homogeneizado. Tempo estimado desde a preparação de extratos celulares para eluição de Cam-bound proteínas é de cerca de 6-7 horas.
1. Preparação dos tecidos
- Injetar organotípicas fatias do hipocampo com um vírus que contém um plasmídeo expressando a proteína recombinante de interesse (neste exemplo, proteína fluorescente verde (GFP) marcadas Ng) e permitir que o tecido que expressam a proteína durante a noite.
- Cerca de 12 a 18 horas após a injeção viral (dependendo da época expressão viral), prepare-se para coletar o tecido. Adicionar tampão dissecção 1mL (glicose 10mM, KCl 4 mM, NaHCO3 26mm, sacarose 233mM, MgCl 5mM 2, 1 mM CaCl 2, e 0,1% de fenol-vermelho, gaseados com 5% de CO 2 95% O 2) a uma placa de Petri. Transferência de tecido cultivado / inserir a placa de Petri e adicionar 2 ml de buffer dissecção para a inserção de submergir o tecido.
- Coletat organotípicas tecido do hipocampo (entre 5 e 10 fatias) delicadamente raspando o tecido livre da membrana inserção utilizando um bisturi. Especificamente a remoção de uma determinada região de interesse (por exemplo, CA1) também é uma opção. Transferência de suspensão do tecido para um tubo de microcentrífuga 1,5 ml usando uma pipeta Pasteur invertida.
- Centrifugar amostras em 1500 rcf para 1 min para separar tecido do tampão dissecção. Remova cuidadosamente o sobrenadante por aspiração. Certifique-se de não perturbar o sedimento.
- Para cada fatia usada, adicione 30-60 mL de tampão de homogeneização (150mm NaCl, 20mM Tris pH 7.5, 1mM DTT, 1μg/mL leupeptin, 1μg/mL chemostatin, 1μg/mL Antipaína, pepstatin 1μg/mL, e 1% Triton X -100) para o tecido e homogeneizar cuidadosamente com o pilão.
- , A fim de remover os restos celulares, centrifugar o homogeneizado restante em 1100 rcf durante 10 minutos e remova cuidadosamente o sobrenadante por aspiração, evitando a contaminação do sedimento.
- Ter 10% do sobrenadante como amostra da entrada (amostra 1). Guarde o sobrenadante restante no gelo durante a preparação das contas CaM-sepharose para uso no passo 3.
Nota: O tecido utilizado aqui estão organotípicas fatias do hipocampo. No entanto, pode-se usar os neurônios dissociados ou qualquer sistema de cultura de outras células. Nesse caso, comece com a etapa 1,4 depois de coletar o tecido de maneira apropriada.
2. Preparação de grânulos de pull-down
No manuseio das contas, é importante para salvar as contas e maximizar a eficiência das reações, impedindo as contas de secagem sobre os lados do tubo. Para isso, é melhor para rodar seus tubos do lado deles, permitindo que solução para molhar as contas nas paredes do tubo, imediatamente antes da centrifugação.
- Para cada pull-down, pipeta de 400 mL suspensão Calmodulina Sepharose-beads em um tubo de microcentrífuga 2 mL com um fla relativamentet-bottom para maximizar a área de superfície e interação de suas soluções com as contas durante a sua incubação.
- Centrífuga contas a 21.000 rcf durante 30 segundos e remova cuidadosamente o sobrenadante por aspiração. Certifique-se de não perturbar as contas.
- Para lavar as contas, adicionar 100 mL do tampão de homogeneização respectivos contendo um ou dois mM CaCl 2 para aqueles que estão sendo usados para puxar para baixo Ca 2 +-CaM proteínas de ligação e 2 mM EDTA (um conhecido Ca 2 + quelante) para contas puxando para baixo ApoCaM proteínas de ligação. Bata suavemente o tubo para re-suspender contas e centrifugar a 1500 rcf para 1 min. Remova cuidadosamente o sobrenadante por aspiração, certificando-se para não perturbar as contas.
Nota: Para todos os passos de aspiração, é recomendado o uso de uma ponteira que tem uma abertura fina (por exemplo, dicas de carga gel) para permitir a remoção da solução sem remover contas.
3. CaM-sepharose ligação de proteínas
- Dividir o seu sobrenadante em duas condições que contenham um volume igual. Dependendo da sua condição, adicionar a quantidade apropriada de CaCl 2 ou EDTA para o sobrenadante até 2 mM para cada concentração.
- Adicionar sobrenadante do passo de 1,7 a contas lavados em tampão de homogeneização correspondente. Bata suavemente o tubo para misturar.
- Incubar as amostras a 4 ° C por 3 horas em uma coqueteleira. Re-suspender contas a cada 30 minutos ou mais para aumentar a eficiência da ligação.
- Tubo de centrífuga contendo amostras e contas de 1500 rcf durante 3 min.
- Tome 50μL do sobrenadante como amostra de proteína unbound (amostra 2) e remova cuidadosamente o sobrenadante por aspiração e restantes descartar.
- Lavar contas três vezes como descrito no passo 2,3 utilizando 100μL de tampão de homogeneização respectivos.
4. Eluição
- Adicionar 50μL de tampão de eluição (50 mM Tris-HCl pH 7.5, NaCl e 150 mm), contendo a condição oposta (10mM CaCl 2 ou 10mM EDTA) para as contas. Por exemplo, as amostras que foram homogeneizadas e ligado em tampão contendo Ca 2 + são eluídos em tampão de eluição contendo EDTA e vice-versa.
Opcional: O aquecimento do tampão de eluição a 37 ° C antes de adicionar contas pode aumentar o rendimento.
- Incubar solução com contas em temperatura ambiente por 30 min em um agitador. Misture as contas batendo o tubo a cada 5 min.
- Centrífuga contas em 1500 rcf por 3 min e remova cuidadosamente a 50μL do sobrenadante para a ligação às proteínas (amostra 3) por aspiração. Certifique-se de não perturbar as contas.
- Adicionar tampão de carregamento de proteína para todas as amostras (ou seja, proteínas unbound homogeneizado, e amarrou bem como aqueles que ainda estão vinculados às esferas).
Nota: Para maximizar a eluição (especialmente no caso de eluição ineficiente), adicionar 50μL do tampão de eluição correspondentes (por exemplo, a adição de EDTA buf contendofer de contas vinculadas em CaCl 2) para as contas antes de aquecer as amostras para ajudar a eluir qualquer proteína ligada restantes e repita os passos descritos no item 4.3 para remover proteínas restantes vinculados.
5. SDS-PAGE e western blot
Conduta SDS-PAGE e analisar usando western blot sondando para a sua proteína de interesse e sonda para uma proteína conhecida por se ligar CaM na condição oposta como controle positivo.
6. Resultados representante
Figura 2B mostra um exemplo de um ensaio de CaM-pull-down testar a ligação da CaM GFP-tagged Ng comparação com Ng endógena. Para isso, GFP-Ng foi overexpressed em nosso organotípicas fatias do hipocampo durante a noite e o tecido foi homogeneizado. O homogenato foi incubado com CaM-sepharose contas na presença de um Ca 2 + ou EDTA. Homogenato de entrada mostra que a GFP-Ng foi expressa, além de Ng endógenos e Ca 2 + / CaM quinase II dependente de(CaMKII). Como era esperado com base na ligação conhecida de Ng endógena (ilustrado na figura. 2A), GFP-tagged Ng foi eluída na ausência de Ca 2 + (EDTA ligação às proteínas) e não ligado, na presença de Ca 2 + (Fig. 2B) . Em contraste, o controle, CaMKII, foi eluído apenas na presença de Ca 2 + (proteínas) e foi unbound na sua ausência (EDTA). Isso mostra que as contas foram CaM funcionando corretamente eo elutions foram eficientes. Mais importante, isso mostra que GFP-Ng se liga a ApoCaM de forma semelhante à forma endógena, sugerindo que a tag GFP não alterou a função da nossa proteína recombinante.

Esboço figura 1. CaM do ensaio de pull-down
(A) homogeneizado de tecido é girado para baixo para remover os restos celulares. Cerca de 10% do sobrenadante é tida como uma amostra da entrada (1). O sobrenadante restante é dividido igualmente para os diferentescondições e os reagentes apropriados (CaCl 2 ou EDTA) são adicionados ao teste obrigatório em tais condições. Cada sobrenadante (contendo um ou outro CaCl 2 ou EDTA) é carregado no respectivamente preparado CaM-sepharose contas e (B) incubado para permitir a ligação. Proteínas não ligados são removidos (2) e (C) as proteínas ligados (3) são eluídos fora das esferas usando tampão de eluição (EB), contendo a condição oposta, como a ligação. A composição das proteínas dessas três amostras de proteínas podem ser analisadas utilizando SDS-PAGE e western blot.

Figura 2. A. esquemática) de Ca 2 + dependentes de ligação CaM e eluição em Exemplos de pull-down ensaio são dadas de dois tipos de proteínas que se ligam CaM em Ca 2 + forma-dependente. Neurogranin (Ng) representa proteínas que se ligam apo-CaM e CaMKII representa proteínas que se ligam ao Ca 2 + ricosCaM. CaM é mostrada em seu estado dissociado antes da incubação com as proteínas homogeneizado. Uma vez incubados sob condições de altas concentrações de Ca 2 + (2 mM) ou na presença de um quelante de Ca 2 +, EDTA (2 mM), as proteínas se ligam a CaM em conformidade. Ng liga CaM na condição de EDTA como há pouca ou nenhuma Ca 2 + presente, e seria eluído fora as contas CaM-sepharose na presença de Ca 2 +. CaMKII, porém, se ligariam a CaM na presença de quantidades elevadas de Ca 2 + e que dissociar uma vez que o Ca 2 + foi quelatado.
B.) Os resultados de CaM exemplo pull-down ensaio. Este número demonstra o resultado final esperado de um CaM-sepharose puxar para baixo com as amostras sondado por Ng e CaMKII. Ambos Ng endógeno e GFP-Ng estão presentes nas pistas de proteínas ligados a CaM na presença de EDTA. Ng não é obrigado quando as amostras são incubadas com CaM na presença de Ca 2 +, demonstrando que Ng só liga apo-CaM. Nosso controle positivo, CaMKII, por outro lado, liga-se a CaM apenas na presença de Ca 2 +.