1. Coleta de Amostras de próstata
- Recolher as amostras da próstata, no momento da prostatectomia. A amostra é orientada usando marcos anatômicos. A próstata e as vesículas seminais são pintadas como segue: verde do lado direito, azul lado esquerdo.
- Um midsection aleatória transversal da próstata é tomada perpendicularmente à superfície rectal, congelados em azoto líquido e armazenado a -80 ° C 9.
- Bancados fatias de espécimes são fotocopiadas, orientado (anterior, posterior, direita e esquerda), quadrisected. As secções são cortadas utilizando o criostato.
- As seções são corados com H & E e revisadas por um patologista para determinar e delinear áreas de tumor versus normal nas lâminas coradas e uma imagem correspondente. As áreas marcadas são usadas como um guia para indicar as áreas a partir da qual para extrair o tecido do tumor a partir do qual o RNA será extraído nos passos subsequentes.
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2. Isolando RNA totais, incluindo miRNA, a partir de amostras
- Colocar as amostras congeladas de próstata em gelo seco e referindo-se à fotocópia delineada, cortada uma pequena porção do tumor da próstata (entre 50 a 100 mg).
- Homogeneizar o tecido do tumor da próstata em 1 mL de reagente Trizol. As quantidades em os seguintes passos são baseadas no uso de 1 mL de reagente Trizol.
Nota: Aqui temos utilizado reagente Trizol para RNA de extracção, no entanto outros kits que isolam pequenos ARN contendo RNA total pode também ser usado.
- Incubar as amostras homogeneizadas durante 5 minutos à temperatura ambiente.
- Adicionar 0,2 mL de clorofórmio às amostras e agitar vigorosamente por 15 segundos. Incubar as amostras durante 3 minutos a temperatura ambiente, em seguida, centrifugar a 12.000 xg durante 15 minutos a 4 ° C.
- Transferir a fase superior incolor aquosa para tubos frescos e adicionar 0,5 mL de álcool isopropílico.Incubar as amostras durante 10 minutos à temperatura ambiente, em seguida, centrifugar a 12.000 xg durante 10 minutos a 4 ° C.
- Aspirar cuidadosamente o sobrenadante sem perturbar o sedimento contendo o RNA. Lava-se a pelete de RNA com 1 mL de etanol a 75%. Vórtice a amostra e re-sedimento por centrifugação durante 5 minutos a 7500 xg, a 4 ° C.
- Aspirar cuidadosamente o sobrenadante e secar o pellet de RNA por 5-10 minutos, certificando-se o pellet de RNA não está completamente seca. Dissolver em água livre de nuclease adequada ao tamanho da pelota. Medir a concentração de RNA usando o espectrofotómetro 1000 NanoDrop (absorvância medida a 260 nm e 280 nm).
- Verifique a qualidade ea integridade das amostras de RNA usando Agilent Bioanalyzer.
3. Transcrição Reversa de RNA
- A transcrição reversa do RNA foi realizada utilizando Kit de Transcrição Reversa miScript de acordo com as instruções do fabricante (Qiagen). Este kit inclui umtranscriptase reversa e um poli-polimerase (A). O miScript tampão RT inclui Mg 2 +, dNTPs, primers oligo-dT, e iniciadores aleatórios.
- Use entre 10 pg e 1 ug de RNA para sintetizar cDNA. Se utilizar mais do que 1 ug de RNA, dimensionar-se a reacção linearmente para o volume apropriado.
- Prepara-se uma mistura mestra que contém 5X tampão RT miScript (4 ul), miScript Mix Transcrição Reversa (1 uL), e livre de RNase água para trazer reacções volume final de 20 uL. Também incluem RNA modelo (até 1 mg) na mistura principal.
- Incubar as amostras durante 60 minutos a 37 ° C, seguida imediatamente por uma incubação durante 5 minutos a 95 ° C. Este passo pode ser realizado numa máquina de PCR, o aquecimento de banho de bloco, ou água. Termocicladores são o método mais adequado e preciso. Armazenar o ADNc em gelo durante curto prazo, e -20 ° C para armazenamento a longo prazo.
4. Gerando uma curva padrão
- Antes de experiment com miRNAs alvo, uma curva padrão é gerada usando cDNAs de concentrações conhecidas contra os seus pontos de cruzamento (CP) (Figura 2).
- Prepara-se uma série de diluições de 2 vezes, 10 vezes, 50 vezes, 250 vezes, e 1250 vezes o ADNc original é de uma amostra que é conhecido por ter uma expressão substancial do seu gene de interesse.
- Execute o PCR, conforme especificado na Seção 5 "Real-time PCR para a detecção de miRNA", com a modificação que é cDNA em diluições seriadas não diluição estática 40x.
- Realizar a análise utilizando o software RelQuant (Roche) para gerar a curva padrão.
Nota: uma nova curva padrão devem ser gerados para cada gene de interesse.
5. Real-time PCR para a detecção de miRNA
- PCR em tempo real para miRNAs foi realizada utilizando miScript SYBR Green PCR Kit e miScript Assay Primer de acordo com as instruções do fabricante (Qiagen). Prepare uma mistura master contendo2x QuantiTect SYBR Green PCR Master Mix, Primer Universal miScript 10x, 10x Ensaio Primer miScript, e RNase água. Preparar um master mix para uma reação volume de 20 l.
- O Ensaio Primer é específico para o miRNA de interesse. Para reconstituir Assay 10x miScript Primer, centrifugar o frasco de forma breve, e adicionar 550 uL de tampão TE, pH 8,0. Frasco Vortex brevemente para misturar, primers alíquotas para volumes menores, e armazenar a -20 ° C. Dois iniciadores são necessários:. Iniciadores para o gene alvo eo gene de referência RNU6B é usedas o gene de referência.
- Diluir o cDNA 40x e armazenamento de alíquotas adicionais a -20 ° C.
- ADNc serve como molde para a PCR. Use 2 ul de cDNA 40x diluída e dispensar para o reciclador 20 uL de luz capilares (Roche).
- Adicionar 18 ul da mistura principal para cada capilar, e centrífuga, usando um adaptador capilar.
- Coloque os vasos capilares no capilar termociclador em tempo real baseado, como LightCycler 3.5 Real-Time PCR System com um formato de carrossel 32-capilar.
- Executar o programa de ciclos de PCR como se segue:
Para activar Polimerase HotStarTaq que está no 2x QuantiTect SYBR Green PCR Master Mix, pré-incubar a 95 ° C durante 15 minutos.
Seguido por 50 ciclos de:
Desnaturação, 15 s, 94 ° C;
Recozimento, 30 s, 55 ° C;
Extensão, 30 s, 70 ° C. - Selecione uma amostra para ser o calibrador, e definir seu valor alvo normalizado para 1. Comparar a expressão relativa da miRNA em todas as outras amostras para o calibrador.
Nota: Dentro de um estudo, a mesma amostra de calibração deve ser usado para manter a consistência dos resultados.
6. Análise de Dados
- As curvas de amplificação para as reacções de PCR são representados graficamente e numericamente por Molecular Software versão Biochemicals LightCycler 3,5 (Roche). Quantificar reações na "quantificação" guia, umnd exportar os dados para um arquivo de texto.
- Importe os dados para o software de análise RelQuant (Roche) para gerar resultados de quantificação. Importar ficheiros separados para o gene alvo, o gene de referência, e os dados da curva padrão.
- Especifique a posição do calibrador para ambos alvo e gene de referência. Também indicar as posições das amostras. Os dados são expressos como o alvo para fazer referência a proporção de diferentes amostras dividido pelo alvo para relação de referência do calibrador. A curva padrão gerada anteriormente para um miRNA particular e do gene de limpeza é utilizado como um padrão de referência para extrapolação dos dados quantitativos para alvos miRNA de concentrações desconhecidas.
- Três repetições de amostras são analisadas como um grupo e as concentrações médias e desvios-padrão da triplicata é calculado. Se um dos triplicados é inconsistente com o resto do conjunto, ele irá ser excluídos pelo programa.
7. Os resultados representativos
Um exemplo de qPCR análise de amostras da próstata é mostrado na Figura 3. Os resultados são representados numericamente, bem como graficamente. Os gráficos que mostram os níveis de expressão do gene de referência, U6, começam a amplificação exponencial menos cerca de ciclo 20, enquanto que a expressão do gene alvo, miR-98, mostrou amplificação retardada aproximadamente no ciclo 25. Os dados deste experimento foi exportado como arquivo de texto e analisados pelo software de análise RelQuant. Posições dos capilares que contêm o calibrador e as amostras são especificados. Figura 4 ilustra a forma como o calibrador é ajustado para ser 1, ea expressão de outras amostras em relação ao calibrador.

Figura 1. Várias etapas miScript transcrição reversa e PCR em tempo real.

Figura 2. Uma curva padrão é gerada por meio de uma série de diluições de 2 vezes, 10 vezes, 50 vezes, 250 vezes, e 1250 vezes amostra original de cDNA.

Figura 3. Roche Molecular Software LightCycler Biochemicals mostra toda a informação do experimento graficamente e pelo texto. Quantitativas em tempo real parcelas de amplificação por PCR mostram aumento na fluorescência a partir de amostras diferentes.

Dados Figura 4. Foram quantificados utilizando o software de análise RelQuant LightCycler. Normalmente, três repetições de amostras são analisadas como um grupo e amostras que produzem resultados claramente inconsistentes são excluídos e as concentrações médias e desvios-padrão da triplicata é calculado.