O método aqui apresentado descreve um ensaio para seguir a activação de factores específicos RhoA GDP / GTP Câmbio (GEFs) em células de cultura, fazendo uso de uma proteína de fusão GST mutante RhoA que tem elevada afinidade para GEFs activados. GEFs são precipitados a partir de lisados celulares, detectadas por Western blotting e quantificada por densitometria.
Artigo de método
Afinidade Precipitação do Active Rho-GEFs Usando um GST-marcado Mutant proteína Rho (GST-RhoA (G17A)) a partir de lisados de células epiteliais
Neste artigo
Resumo
Resumo
As proteínas da família Rho de GTPases pequenas são reguladores centrais do citoesqueleto, e controlar uma grande variedade de processos celulares, incluindo a migração de células, a expressão do gene, a progressão do ciclo celular e adesão celular 1. Proteínas Rho são interruptores moleculares que estão ativos no GTP-bound e inativos do PIB-bound estado. A sua activação é mediada por uma família de guanina-nucleotídicas de Câmbio Fator (GEF) proteínas. Rho-GEFs constituem uma grande família, com sobreposição de especificidades 2. Embora muito progresso tem sido feito na identificação dos GEFs ativados por sinais específicos, existem ainda muitas questões pendentes relativas ao regulação da via específica dessas proteínas. O número de Rho-GEFs excede 70, e cada célula expressa mais do que uma proteína GEF. Além disso, muitas destas proteínas activar não só Rho, mas outros membros da família, contribuindo ainda mais a complexidade das redes de regulação. Importante, explorandocomo GEFs são regulados requer um método de seguir a piscina activa de GEFs individuais em células activadas por estímulos diferentes. Aqui, fornecemos um protocolo passo-a-passo para um método utilizado para avaliar e quantificar as disponíveis activas Rho-específicos GEFs usando um ensaio de precipitação de afinidade. Este ensaio foi desenvolvido há alguns anos no laboratório Burridge 3,4 e nós tê-lo usado em linhas de células renais tubulares 5,6,7. O ensaio de tira proveito de um "nucleótido livre" mutante RhoA, com uma elevada afinidade para GEFs activas. A mutação (G17A) torna a proteína incapaz de se ligar PIB ou GTP e este estado imita o estado intermediário que é ligado ao GEF. Uma versão GST-etiquetados desta proteína mutante é expressa e purificada a partir de E. coli, ligada a esferas de glutationa Sepharose e usado para precipitar GEFs activas a partir de lisados de células não tratadas e estimulada. Como a maioria dos GEFs são ativados através de modificações pós-tradução ou versão de ligações inibitórias, seu estado ativoé preservada em lisados de células, e eles podem ser detectadas por este ensaio 8. Proteínas capturados podem ser sondado para GEFs conhecidos pela detecção de anticorpos específicos utilizando Western blot, ou analisados por espectrometria de massa para identificar GEFs desconhecidos ativados por estímulos certos.
Protocolo
1. Transformação de E. coli com o pGEX-RhoA (G17A) Construct
- Preparar LB-Agar por dissolução de 2,5 g LB e 1,5 g Ágar em 100 ml dH 2 O. Autoclave e fresco para uma estimativa de 50-55 ° C, que, como regra geral, é quando o balão pode ser realizada confortavelmente.
- Preparar Ampicilina stock (Amp) por dissolução de 50 mg / ml em dH 2 O. Filtro de seringa e congelar alíquotas não utilizadas. Adicionar 100 ul de estoque Amp (concentração final 50 ug / ml) à LB-Agar a partir de 1,1. Agite para misturar e despeje em pratos de 10 cm bacterianas (15-20 ml / prato). Permitir que a solidificar (15-30 min.) E armazenar as placas não utilizados invertida a 4 ° C durante 2-3 semanas.
- Para transformar E. Coli, rapidamente descongelar uma aliquota de DH5a competentes em um banho de gelo. Adicionar 1 ul de DNA pGEXRhoA (G17A) diluída a 25-50 ng / uL. Flick o tubo para misturar e incubar em gelo durante 30 minutos. Choque térmico a 42 ° C durante 45 segundos e volte a colocar em gelo durante 2 minutos. Adicionar 900 e mu; L meio SOC e crescer durante uma hora a 37 ° C com agitação.
- Espalhe 50-100 uL das bactérias transformadas numa placa de LB-Agar-Amp usando uma pipeta de Pasteur estéril dobrada. Incubar a placa lado direito para cima numa incubadora a 37 ° C durante 5 minutos e, em seguida, inverter e crescer durante a noite.
- Uma única colónia irá ser escolhido a partir da placa para a preparação da proteína GST-tag (passo 2.1). Para uso futuro, as placas do envoltório e armazenar invertido a 4 ° C durante cerca de 3 semanas. Além disso, as unidades de bactérias podem ser preparadas para armazenamento mais prolongado por crescentes colónias individuais em 2 ml estéril LB Amp-durante a noite a 37 ° C com agitação. Misturar uma aliquota com glicerol a 80% estéril numa proporção de 1:1 e congelamento a -80 ° C.
2. Preparação de contas (G17A) GST-RhoA
- Preparar LB pela adição de 25 g LB a 1 L dH 2 0 e da autoclavagem. Quando esfriar, adicione 50 Amp ul do estoque para 50 LB ml (50 mcg / ml concentração final). Inocular com uma col bem isoladoony de bactérias transformadas e crescer durante a noite a 37 ° C com agitação. Quando a densidade total (OD 600> 1,0) diluir com 450 ml LB Amp e crescer durante mais 30 minutos a 37 ° C.
- Preparar uma solução-mãe 100 mM de isopropil BD-tiogalactopiranósido (IPTG) por dissolução de 0,238 g em 10 ml dH 2 O. Armazenar em alíquotas a -20 ° C. Induzir bactérias para produzir proteína Rho por adição de 500 ul de 100 mM IPTG a 500 cultura ml (uma concentração final de 100 uM). Reduzir a temperatura para 22-24 ° C e crescer durante ~ 16 horas h.
- Girar cultura a 3600 g durante 10 minutos a 4 ° C. Se necessário, a 500 ml de cultura pode ser dividida em tubos de 50 ml de centrifugação. Congelar pelete (s) durante pelo menos 1 hora (ou, de preferência durante a noite) a -80 ° C.
- Preparar tampão de lise 200 ml contendo 20 mM de HEPES (0,95 g) / pH 7,5; 150 mM de NaCl (1,75 g); 5 mM de MgCl2 (0,203 g); 1% TX-100 (2 ml). Prepare soluções estoque de 1M DTT (1,542 g em 10 ml de dH2O) E 100 mM de PMSF (0,174 g/10 ml de EtOH). Para preparar + tampão de lise, suplemento de 10 ml com 1 mM de DTT (10 ul de estoque) e 1 mM de PMSF (100 uL de stock) e uma completa Mini comprimido inibidor da protease.
- Trabalhando em gelo, adicionar 10 ml de tampão de lise + para os peletes a partir do passo 2.3. Ressuspender bem em vórtice suave e pipetagem. Evite a formação de espuma. Sonicar em gelo durante 1 minuto a configuração 4 com o pulso de 50%. Girar o lisado sonicada a 15.000-20.000 g durante 15 minutos a 4 ° C, e remover o sonicado clarificado (sobrenadante) a um tubo ml estéril tapado 15.
- Preparar a Sepharose Glutationa suavemente a mistura do tubo original contendo uma lama de 75% e 335 uL de transferência para um tubo de 15 ml. Use uma ponta larga furo para pipetar contas. Adicionar 10 ml PBS frio, e gira a 500 g durante 5 minutos a 4 ° C. Descartar o sobrenadante e adicionar 1 ml de tampão de lise + às pérolas e girar como para lavagem anterior. Descartar o sobrenadante e + tampão de lise suplemento para fazer uma suspensão de 50%.
- Adicionar 250 ul de equilibrated suspensão do grânulo para o sobrenadante do passo 2.5. Rodar a 4 ° C durante 45 minutos.
- Preparar 500 ml HBS contendo 20 mM de HEPES (2,38 g) / pH 7,5 e NaCl 150 mM (4,38 g) em dH 2 O. Prepare soluções de reserva de MgCl 1M 2 (0,952 g em 10 ml de dH2O) e DTT 1 M (1,542 g em 10 ml de dH2O). Para preparar HBS +, complementar 100 ml imediatamente antes da utilização com 5 mM de MgCl2 (50 ul de estoque) e 1 mM de DTT (100 uL de stock).
- Girar os grânulos a partir do passo 2,7 a 500 g durante 5 minutos a 4 ° C. Descartar o sobrenadante e grânulos de lavagem 2x com 10 ml de tampão de lise +, e 2x com 10 ml HBS +. Após a lavagem final, fazer uma suspensão de 50% por ressuspensão das pérolas em HBs + suplementadas com BD BaculoGold inibidor de protease (20 uL de 50x BD BaculoGold / ml).
- Diluir 10 ul da preparação final com pérolas de 2x tampão de amostra Laemmli contendo β-mercaptoetanol. Faça albumina bovina (BSA) padrões. Use de 2 mg / ml de caldo de (0,02 g de BSA em 10 ml de dH2O). Misturar 10 ul de estoque com 10 uL Laemmli (20 ug final); 5 ul de estoque com 5 uL de dH2O e 10 uL Laemmli (10 ug final); e 2,5 ul estoque com 7,5 uL de dH2O e 10 uL Laemmli (5 ug final). Ferver as amostras (5 min). Girar a amostra do grânulo e executar o sobrenadante com padrões de BSA e marcadores de peso molecular em um 10% de gel de SDS-poliacrilamida.
- Preparar o Comassie mancha azul (0,1 g em 10 ml de ácido acético, 40 ml de metanol e 50 ml de dH2O) ea solução destain (500 ml de dH2O, 400 ml de metanol e 100 ml de ácido acético). Armazene à temperatura ambiente. Manchar o gel por 20-30 minutos, retire o corante (pode ser reutilizada várias vezes) e lavagem com solução destain duas vezes. Continuar a destain com agitação suave durante várias horas até que as bandas são claramente visíveis.
- Estimar a concentração de GST-RhoA (G17A), acoplado às esferas utilizando os padrões de BSA como referência (Fig. 2). Aliquot por um volume igual de esferas contendo ~ proteína ug 10-15 em 1,5 ml de tubos de centrifugação de micro. Loja contas a 4 ° C para uso dentro de um dia. Congelar a -80 ° C em HBS + glicerol / na proporção de 3:1 para utilizar dentro de poucos dias.
3. GEF Ensaio Pulldown com nucleotídeos livres RhoA (G17A) Beads
- Crescer as células em 10 pratos cm a confluência. Soro privar durante pelo menos 3 horas e tratar como requerido.
- Preparar tampão de lise + como no passo 2.4. Preparar tampão de lise suficiente para 700 ul / prato mais alguma quantidade extra para permitir pipetagem erros. Adicionar os inibidores de protease imediatamente antes da utilização.
- Trabalhando em gelo, remover o meio de cultura a partir dos pratos e lava-se com gelada HBS. Remova todo o HBS e adicionar 700 + tampão ul lise para cada prato. Redemoinho placas para cobrir todas as áreas, raspar e coletar lisados em numeradas tubos de 1,5 ml. Girar a 15.000 g durante 1 min a 4 ° C. O sobrenadante será utilizado para o ensaio.
- Se o seu número de celular é equivalente em todos ospratos a serem testados, você pode omitir a fazer um ensaio de proteína, e passar para o passo 3.5. Caso contrário medir a concentração de proteína de cada sobrenadante utilizando o Bio-Rad ensaio de proteína rápida e equalizar o sobrenadante para o volume e concentração. A quantidade de proteína total depende dos tipos de células utilizados (tipicamente 1-1,5 mg de proteína para as células LLC-PK1).
- Remover 30 ul de cada sobrenadante e misture com 30 2x ul redução amostra Laemmli tampão ferver e reserve para o passo 3.7. Adicionar sobrenadantes restantes para as alíquotas de GST-RhoA (G17A) grânulos a partir do passo 2,12. Girar durante 45 minutos a 4 ° C.
- Girar grânulos em 6800 g durante 10 segundos a 4 ° C. Descartar o sobrenadante e lava-se os grânulos 3x com tampão de lise, a fiação da mesma maneira entre as lavagens. Remover completamente a lavagem final utilizando uma seringa cc 1 equipada com uma agulha 30 G e adicionar 20 uL 2x reduzindo tampão de amostra Laemmli. Ferver durante 5 min. Rodar para contas de pelotização e quer executar o sobrenadante imediatamente (preferível) ou armazená-lo umt -80 ° C para posterior análise.
- Executar 20 uL lisados de células totais e de todas as amostras de proteína precipitados sobre o apropriado percentagem de gel de SDS-poliacrilamida para o tamanho de GEF está a estudar. Detectar a sua GEF da escolha por Western blotting utilizando um anticorpo específico.
4. Os resultados representativos
Parte 1 e 2 do protocolo descreve a preparação de GST-RhoA (G17A) acoplado a GSH-sepharose grânulos e seus testes por SDS-PAGE (ver descrição do protocolo na Fig. 1). Um gel corado com Coomassie típico é mostrado na Fig. 2. A amostra com a proteína eluída deve conter uma única banda a aproximadamente 50 kDa (Fig. 2, pista 6). A concentração da proteína pode ser estimada utilizando as amostras de referência de BSA. No exemplo na Fig. 2, a concentração de RhoA (G17A) é estimada em 15 uL μg/10. Assim, alíquotas de 10 uL / tubo foram preparados. O rendimento típico na nossa mão é 15-20 mg de proteína de 10 ml de lise bacteriana. Parte 3 do protocolo descreve o ensaio de precipitação afinidade (ver sinopse na Figura 1). Um ensaio de GEF bem sucedida detectar a activação do factor de troca GEF-H1 é mostrado na Fig. 3. O RhoA proteína (G17A) capturado alguns GEF-H1 a partir do controle (não tratado) lisados celulares, sugerindo que o GEF-H1 tem actividade basal. A quantidade precipitado no entanto o aumento nas células tratadas com a necrose inflamatória citocina tumoral-α (TNF-α), consistentes com a noção de que o TNF-α activa GEF-H1 5,7. Importante, os lisados de células totais mostram quantidades similares de GEF-H1 no controlo e da amostra tratada, sugerindo que o tratamento não alterou GEF-H1 níveis ea entrada usada no ensaio é de igual.
Figura 1. Visão geral do protocolo.
Figura 2. Resultado representativo do protocolo de preparação do grânulo. Um gel corado com Coomassie com sucesso GST-RhoA preparação do grânulo (G17A) é mostrado. Amostra do grânulo e padrões proteicos de BSA foram separadas por SDS-PAGE utilizando um gel de acrilamida a 10%. Para testar os grânulos, 10 uL da suspensão final talão contendo GST-RhoA (G17A) é diluída 1:01 com tampão de amostra Laemmli redução e fervida durante 5 minutos. As pérolas foram centrifugadas eo sobrenadante brevemente carregado no gel. As seguintes amostras foram carregadas: Pista 1: marcador de peso molecular (MW) (FroggaBio BLUeye prestained escada de proteína); Lanes 2-4: 5, 10 e 20 ug de albumina sérica bovina (BSA); Pista 5 está vazia; pista 6: 10 ul dos preparados na hora RhoA (G17A) contas. Após a separação é completada, o gel é corado usando azul de Coomassie e, subsequentemente, descorados para revelar as proteínas. O peso molecular do GST-RhoA proteína (G17A) é aproximadamente 50 kDa e corre em volta do nível do marcador kDa 48. A concentração da proteína GST-Rho nesta amostra particular é estimado em cerca de 15 lama μg/10 uL.
Figura 3. Representativas ensaio de activação GEF mostrando TNF-α induzida por activação de GEF-H1. Confluentes LLC-PK1 células foram tratadas com 10 ng / ml de TNF-α durante 5 minutos. Após o tratamento, as células foram lisadas e GEFs activas foram capturadas utilizando GST-RhoA (G17A) grânulos ligados. A presença de GEF-H1 nas proteínas precipitadas (blot topo) e amostras de células totais Lysate (blot inferior) foi detectada utilizando Western blotting com um anticorpo anti-GEF-H1 (sinalização celular). Note que o aumento da quantidade de precipitado GEF-H1 em TNF-α-tratados versus não-tratados com células relativos às entradas equivalentes, indicando um bom resultado.
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Figura 4. Um "mau resultado". Embora o ensaio de pulldown GEF mostrado aqui resultou em alguns GEF-H1 capturado pelos grânulos, os montantes precipitado a partir de controlo e TNF-α células tratadas são os mesmos. TNF-α Assim, um ativador de know GEF-H1, neste caso, não induziu a ativação. Neste solução de problemas experiência particular subsequente sugerido que o TNF-α utilizado não era fresco suficiente e, provavelmente, degradada.
Discussão
O método aqui apresentado é o ensaio de ativação só está disponível para não-radioativo GEFs que pode seguir a piscina activa de GEFs nas células. O ensaio é semelhante para os ensaios de precipitação utilizados para a activação seguinte de GTPases pequenas, bem como contra GEFs Rac e Cdc42. Esses ensaios de usar diferentes proteínas GST-etiquetados e têm ligeiras diferenças de a descrita aqui, no entanto os passos básicos são os mesmos. Assim, este protocolo pode ser facilmente adaptado para outros GTPase pequeno e ensaios de activação do GEF.
O ensaio apresentado GEF foi recentemente modificado para pedido de frações nucleares 9,10. Com alterações posteriores, os testes de ativação GEF em outros compartimentos celulares também poderia ser possível.
Nós utilizamos o método apresentado para estudar a activação de GEFs em linhas de células epiteliais 5,6,7. Com algum optimização, neste ensaio devem ser adequados para detectar GEFs a partir de qualquer linha de células. Quando adapting a um tipo específico de célula, localizar o número de células óptima, o volume de tampão de lise, e método de detecção para o GEF a ser testado (um anticorpo bom para Western blotting é importante). Para a configuração inicial do ensaio, é aconselhável utilizar um estímulo que é conhecido para activar o GEF de interesse. Ao usar um estímulo desconhecido, sempre usar um controle positivo para verificar se o ensaio está funcionando. Este ensaio pode ser usado para detectar a activação de GEFs conhecidos por Western blotting. No entanto, também é adequado para identificar GEFs desconhecidos. Para isso, GEFs capturados de controlo e as amostras estimuladas devem ser analisados num gel de Coomassie-coradas. Bandas que aparecem apenas em amostras estimuladas pode conter GEFs ativados e podem ser enviados para identificação por espectrometria de massa (por exemplo, 5).
Finalmente, uma nota de advertência. O ensaio é baseado na suposição de que as modificações pós-tradução que tornam GEFs activas são preservadas após lise celular. Na verdade, este é claramente o caSE para um número de GEFs, e desde que os seus estabelecimentos, este ensaio foi utilizada por vários grupos para detectar a activação de GEFs diferentes, incluindo GEF-H1, p115RhoGEF e XPLN (por exemplo, 5,11,12,13). Preservação do estado ativo, contudo, não pode acontecer no caso de todos os GEFs e, portanto, é concebível que este teste não vai funcionar para todos os GEFs. Tem também a ser observado, que muitos GEFs exercer atividade para mais de um GTPases pequenas. Assim, quando um GEF específica é estudada, é recomendado para complementar este ensaio com os ensaios de precipitação GEF para outros GTPases pequenas, bem como estudos funcionais examinando RhoA, Rac1 e Cdc42.
Etapas críticas do protocolo:
Colônias de bactérias transformadas devem ser colhidos a partir frescas, pratos preparados adequadamente para garantir a adequada seleção de Amp, crescimento bom e produção. Condições de transformação de células competentes obtidos de outras fontes pode variar e deve ser consultado.
Todos os passos do protocolo de preparação de proteína (a partir do passo 2.3) eo ensaio (a partir do passo 3.2) deve ser realizado a 4 ° C com soluções arrefecidas e centrífugas.
A lise bacteriana (passo 2,5) deve ser minuciosa e completa, a fim de obter uma suspensão homogénea. Quando a lise bactérias vórtice, e pipetar o lisado alternadamente, mantendo ao mesmo tempo que a 4 ° C e assegurar sonicação é feito em gelo para evitar a desnaturação da proteína. Se estiver usando um modelo diferente de sonicador, as condições podem ter de ser ajustada. A incubação de sonicado com as esferas devem sempre ser feito a 4 ° C num rotor de ligação para assegurar suficiente, e deve ser tomado cuidado para manter a temporização consistente.
GST-Rho mutantes são um pouco instável quando expresso em bactérias, por isso o melhor é usar contas preparadas imediatamente ou dentro de poucos dias.
O ensaio de precipitação (Parte 3) é o tempo e sensível a temperatura, umaGEFs s activas podem ser facilmente perdido a partir do lisado celular, de modo que os passos deve ser realizado tão rapidamente quanto possível.
A seção seguinte contém algumas dicas de resolução de problemas.
Não ou quantidade muito baixa de proteína mutante Rho na preparação final do grânulo: Isto pode ser causado por indução ineficiente, a lise das bactérias insuficiente, ou uma perda da proteína durante o processo de preparação ou de armazenamento. Para ajudar a resolver algumas dessas possibilidades, as amostras de bactérias podem ser analisada antes e após a indução. Se houver indução pobre da proteína repetir o processo usando uma colónia de uma placa de recém-listradas ou a partir de re-transformadas células competentes. As concentrações IPTG diferentes e tempos de indução também devem ser testados. Se a lise é insuficiente (isto é, a proteína permanece no pelete em vez do sobrenadante) variando de sal e de detergente concentrações no tampão de lise pode ser tentado. Alternados vezes sonicação econfigurações devem ser considerados, e as amostras antes e depois de sonicação pode ser verificada por microscopia para determinar a eficiência de lise.
N precipitado GEF, mesmo que a proteína GST-, está presente nas pérolas: Isto pode ser devido a problemas técnicos durante o ensaio de precipitação, ou por uma ausência real de activação do GEF estudada utilizando o estímulo aplicado. Usar sempre um estímulo conhecido como um controlo positivo para verificar que o seu ensaio funciona. Use as esferas preparadas dentro de poucos dias. Se o ensaio de precipitação captura quantidades indetectáveis de o GEF estudados em todas as condições, verificar que o seu GEF está presente e é bem detectável no sobrenadante após a centrifugação que está a ser utilizado para o ensaio (passo 3.3). Certifique-se de todos os tampões e os inibidores da protease são frescos, e realizar todos os passos sobre o gelo o mais rápido possível. Aumentar a quantidade de proteína de entrada (por exemplo, utilizando lisados a partir de 2 placas / amostra). Se o ensaio de precipitação mostra precipitação basalção do seu GEF, mas nenhuma diferença é observada entre o controle e amostras estimuladas (fig. 4), começar a solucionar por meio da verificação de que o estímulo aplicado funcionou usando outros efeitos conhecidos (por exemplo, detectar a ativação de outras vias de sinalização). Considere alterar as condições de tratamento e / ou concentrações. Conte com os dados do relatório da literatura como o seu estímulo ativa Rho ou sinalização outras vezes para prever prováveis e concentrações. Quando optimizar o tempo de tratamento, utilizar ambos os pontos de tempo curto e longo, tal como a activação GEF pode ser melhor detectável a um ponto de tempo antes da activação bem detectável Rho. Finalmente, o mesmo estímulo pode resultar em um grau variável de activação devido a uma mudança na capacidade de resposta de células causada por número de passagens, a célula de confluência, etc
Divulgações
Os autores não têm nada a revelar.
Agradecimentos
Este trabalho foi financiado pelo Canadian Institute for Health Research (CIHR) (MOP-97774) e Ciências Naturais e Engenharia Council of Canada (NSERC, concessão nr: 480619). KS é um receptor de um Investigator Award KRESCENT Novo (um prêmio de conjunto da Kidney Foundation of Canada, Canadian Society Nephrology e Canadian Institute of Health Research) e um Prêmio Pesquisador precoce do Ministério de Ontário de Investigação e Inovação. FW é suportado por uma bolsa de Li Ka Shing.
Materiais
| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| Nome do reagente | Companhia | Número de catálogo | Comentários (opcional) |
| pGEX-RhoA (G17A) | Addgene | Estará disponível em breve | Gerado no laboratório do Dr. Keith Burridge (University of North Carolina) (ref 3) |
| DH5a | Invitrogen | 18258-012 | Loja -80 ° C |
| SOC médio | BioShop | SOC001.10 | |
| LB | BioShop | LBL407.1 | Mantenha estéril |
| Glicerina | BioShop | GLY002.1 | |
| Ampicilina | BioShop | AMP201.25 | Estoque armazenar a -20 ° C |
| Agar | BioShop | AGR001.500 | |
| IPTG (Isopropil BD-thiogalacto-piranósido) | Calbio bioquímica | 420322 | Solução estoque da loja a -20 ° C |
| Esferas de glutationa Sepharose | GE Healthcare | 17-0756-01 | |
| PBS 10x | SIGMA | D1408 | |
| Hepes | SIGMA | H4034 | |
| NaCl | BioShop | SOD001.10 | |
| MgCl 2 | SIGMA | M-9272 | Adicionar pouco antes de usar |
| TX-100 | Sigma-Aldrich | X100 | |
| TDT | OmniPur EMD | 3860 | Adicionar pouco antes de usar |
| PMSF | SIGMA | P-7626 | Adicionar pouco antes de usar |
| Inibidor da protease 50x | BD Baculo-Gold | 51-21426Z | Adicionar pouco antes de usar |
| Completa Mini, EDTA livre 10x | Roche | 11 836 170 001 | Adicionar pouco antes de usar |
| Amostra tampão Laemmli 2x | Bio-Rad | 161-0737 | |
| β-mercaptoetanol | SIGMA | M7154 | Adicionar pouco antes de usar |
| Azul Brilhante de Coomassie | Bio-Rad | R-250 | |
| Ácido Acético | Caledon | 1000-1 | |
| Metanol | Caledon | 6701-7 | |
| Bio-Rad Protein Assay | Bio-Rad | 500-0114 | |
| Escada BLUeye | FroggaBio | PM008-0500 |
Reagentes Tabela 1. Utilizado.
| Nome do equipamento | Companhia | Número de catálogo | Comentários (opcional) |
|---|---|---|---|
| RC-5B centrífuga | Sorvall | Rotor SS-34 | Use a 4 ° C |
| Centrifugar | Sorvall-Thermo Scientific | ST-16R | Use a 4 ° C |
| Centrífuga de micro | Eppendorf | 5417R | Use a 4 ° C |
| Shaker bacteriano | INFORS HT Ecotron | AG CH-1403 Bottmingen | Use a 37 ° C ou a 22 ° C |
| Sonicador | Branson | Sonifier-450 | Use à RT |
| Rotor | Glas-Col | 099A CR4012 | Use a 4 ° C |
Tabela 2. Equipamentos específicos utilizados.
Referências
- Jaffe, A. B., Hall, A. R. ho GTPases: biochemistry and biology. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 21, 247-269 (2005).
- Rossman, K. L., Der, C. J., Sondek, J. GEF means go: turning on RHO GTPases with guanine nucleotide-exchange factors. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 6, 167-180 (2005).
- Arthur, W. T., Ellerbroek, S. M., Der, C. J., Burridge, K., Wennerberg, K. XPLN, a guanine nucleotide exchange factor for RhoA and RhoB, but not RhoC. J. Biol. Chem. 277, 42964-42972 (2002).
- Garcia-Mata, R. Analysis of activated GAPs and GEFs in cell lysates. Methods Enzymol. 406, 425-437 (2006).
- Kakiashvili, E. GEF-H1 Mediates Tumor Necrosis Factor-{alpha}-induced Rho Activation and Myosin Phosphorylation: role in the regulation of tubular paracellular permeability. J. Biol. Chem. 284, 11454-11466 (2009).
- Waheed, F. Extracellular signal regulated kinase and GEF-H1 mediate depolarization-induced Rho activation and paracellular permeability increase. Am. J. Physiol. Cell Physiol. , (2010).
- Kakiashvili, E. The epidermal growth factor receptor mediates tumor necrosis factor-alpha-induced activation of the ERK/GEF-H1/RhoA pathway in tubular epithelium. J. Biol. Chem. 286, 9268-9279 (2011).
- Garcia-Mata, R., Burridge, K. Catching a GEF by its tail. Trends Cell Biol. 17, 36-43 (2007).
- Dubash, A. D. The small GTPase RhoA localizes to the nucleus and is activated by Net1 and DNA damage signals. PLoS One. 6, e17380-e17380 (2011).
- Guilluy, G., Dubash, A. D., García-Mata, R. Analysis of RhoA and Rho GEF activity in whole cells and the cell nucleus. Nature Protocols. , (2011).
- Guilluy, C., Swaminathan, V., Garcia-Mata, R., O'Brien, E. T., Superfine, R., Burridge, K. The Rho GEFs LARG and GEF-H1 regulate the mechanical response to force on integrins. Nature Cell Biology. 13, 722-727 (2011).
- Dubash, A. D., Wennerberg, K., Garcia-Mata, R., Menold, M. M., Arthur, W. T., Burridge, K. A novel role for Lsc/p115 RhoGEF and LARG in regulating RhoA activity downstream of adhesion to fibronectin. J. Cell Sci. 120, 3989-3998 (2007).
- Arthur, W. T., Ellerbroek, S. M., Der, C. J., Burridge, K., Wennerberg, K. XPLN, a guanine nucleotide exchange factor for RhoA and RhoB, but not RhoC. J. Biol. Chem. 277, 42964-42972 (2002).
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