Teste de estresse cardíaco induzido por dobutamina e Monitorado por cateterismo cardíaco em ratos

Sebastián Dante Calligaris; Micaela Ricca; Paulette Conget

doi:10.3791/50050

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Artigo de método

Teste de estresse cardíaco induzido por dobutamina e Monitorado por cateterismo cardíaco em ratos

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DOI:

10.3791/50050

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10 de fevereiro de 2013

Sebastián Dante Calligaris¹ , Micaela Ricca¹ , Paulette Conget¹

¹Instituto de Ciencias, Facultad de Medicina, Clínica Alemana Universidad del Desarrollo

Neste artigo

Resumo

Nós descrever o protocolo para realizar um teste de estresse cardíaco induzido por dobutamina e monitorado por cateterismo cardíaco em ratos normais. Também vamos mostrar a sua aplicação para desmascarar doença cardíaca subclínica em alto teor de gordura da dieta induzida ratos obesos.

Resumo

A dobutamina é um agonista β-adrenérgico com uma afinidade mais elevada para o receptor expresso no coração (β ₁₎ do que para os receptores expressos nas artérias (β _2). Quando administrada sistemicamente, aumenta a procura cardíaca. Assim, dobutamina desmascara ritmo anormal ou áreas isquêmicas potencialmente em risco de infarto.

A monitorização da função cardíaca durante um teste de esforço cardíaco pode ser realizada por qualquer ecocardiografia ou a cateterização cardíaca. A última é uma técnica invasiva, mas mais preciso e informativo que a primeira.

Teste de esforço cardíaco induzido pela dobutamina e monitorizada por cateterismo realizado como descrito aqui permite, numa única experiência, a medição dos seguintes parâmetros hemodinâmicos: ritmo cardíaco (HR), pressão sistólica, pressão diastólica, a pressão diastólica final, a pressão positiva máxima desenvolvimento (dP / dtmax) e negativa da imprensa máximaure desenvolvimento (dP / dt _min), em condições basais e sob doses crescentes de dobutamina.

Como esperado, em camundongos normais foi observado um aumento relacionado com a dose de dobutamina em RH, dP / dt _max e dP / dt _min. Além disso, na maior dose testada (12 ng / g / min), a descompensação cardíaca de alto teor de gordura da dieta, os ratos obesos induzidos foi desmascarado.

Protocolo

Protocolo foi aprovado pelo Comitê de Ética da Faculdade de Medicina Clínica Alemã-Universidade del Desarrollo.

I. Preparação infusão de dobutamina

Dissolvem-se 10 mg de dobutamina, em 20 ml de água destilada estéril, com o fim de se obter uma solução stock de 500 ug / ml de dobutamina. Alíquota e armazenar a -20 ° C. Esta solução pode ser utilizada, pelo menos, durante 3 meses.
Descongelar uma alíquota da solução de reserva de dobutamina, à temperatura ambiente.
Diluir solução-mãe de dobutamina em NaCl estéril 0,9%, a fim de obter a solução de trabalho de dobutamina, cuja concentração é calculada utilizando a fórmula: dobutamina (ug / ml) = peso corporal x 0,2.
Encha uma seringa 1 ml 29Gx1 / 2 "com solução de trabalho dobutamina.
Inserir a agulha da seringa para um tubo de 20 centímetros PE-10.
Ajuste a seringa na bomba de infusão, seguindo as instruções do fabricante.
Defina-se a infusão de rampa em uma etapa-A-passo com o formato de um aumento de 10 ul / min para cada etapa, de 6 passos.

II. Preparando sensor de pressão

Para minimizar a variação do sinal, o sensor de pressão submergir em água estéril a 37 ° C durante pelo menos 15 min. Não molhe o cateter mais de 0,5 cm de profundidade, de modo a evitar que a pressão hidrostática atinge o sensor de pressão.
Electronicamente calibrar o sensor de pressão a 25 e 100 mmHg. Eléctrico de entrada (Volt) é convertido em sinal de pressão (mmHg).
Definir a taxa de amostragem de 2 k / s e utilizar o filtro passa baixo com um corte de 100 Hz. Definir o sinal de pressão para zero mmHg.
Marcar o cateter 15 mm da ponta. Distante para alcançar o coração a partir do ponto de introdução foi estimada por ecocardiograma, detectando a presença do cateter no interior do ventrículo esquerdo.

III. Preparando Rato para cateterismo

Peso C57BL / 6, machos, 30-32 semanas de idade.
Injectar por via intraperitoneal de cetamina 60 mg / kg e 4 mg / kg de xilazina ^1. Nota: Outros anestésicos podem ser utilizados, por exemplo: 350-450 ug / kg avertina, 50 ug / kg de pentobarbital, ou 1,5-2% ^2-3 isoflurano.
Raspar o pescoço com um barbeador elétrico.
Posicione o mouse anestesiado em decúbito dorsal em uma placa de aquecimento aquecido isotérmica. Fixe seus membros com fita de papel.
Realizar uma pitada de igual para confirmar sedação completa.
Insira com cuidado a sonda retal para monitorar a temperatura do corpo. Usando sonda vaselinized é recomendada.
Se a temperatura do corpo difere de 37 ° C ± 0,5 ° C, ajusta-lo através da placa de aquecimento.
Coloque focinho de rato perto do suprimento de oxigênio.
Coloque a região do pescoço do rato, ao microscópio estereoscópico.

IV. Aquisição de Dados

Na 7 LabChartPro software, selecione um canal para registro de pressão e um canal para a freqüência cardíaca (FC)registro. Para este último, selecione a opção "Medidas cíclicos" e medição de configuração como taxa.
Para o canal de pressão definir a faixa de escala: 0 a 150 mmHg.
Para HR canal definir a faixa de escala: 200-600 bpm.
Pressione a tecla START para iniciar o registro.
Inserir comentários indicando procedimentos realizados, por exemplo: administração de anestesia, o início da infusão de dobutamina, a concentração de dobutamina, respirando alterações.

V. Cateterismo Cardíaco ^4,5

Realizar uma pequena incisão no lado direito, perto da mandíbula. Com uma tesoura separar o tecido conjuntivo da pele-muscular.
Realizar uma dissecção longitudinal (1,5-2 cm), no lado direito da traqueia. Separou-se a gordura do tecido conjuntivo, músculo e com fórceps curvo, de modo a expor a artéria carótida direita perto da traqueia.
Coloque um expansor no lado animal direito para expor a artéria carótida. Pulsátilpressão gerada pelo coração facilita a identificação da artéria. A veia jugular, que é vermelho escuro, está à direita.
Separou-se a artéria a partir de tecidos adjacentes com fórceps curvo. O nervo vago, que se assemelha a uma linha branca, fica ao longo da artéria.
Corte um pedaço de 20 cm de fio 6/0 e seda "double-lo".
Passe a linha "casal" sob a artéria da esquerda para a direita. Cortar o fio, a fim de obter extremidades separadas.
Passar por um terceiro segmento (10 cm) abaixo da artéria.
Dê um nó apertado no fio posicionado perto da cabeça, e um solto no segmento mais distal.
Dê um nó frouxo na linha do meio, e fixar a extremidade direita da linha média para a almofada de aquecimento com uma fita de papel.
Mantenha artéria carótida úmido, largando estéril NaCl 0,9%. Secar o excesso de líquido com cotonetes.
Estique a linha inferior com uma pinça hemostática.
Fixar a posição da tesoura pinça hemostática por pavançando a pele do abdómen, que se estende a linha de cima, a fim de ocluir o fluxo de sangue. Verificar que o tecido conjuntivo em torno da artéria foi removido. A artéria deve estar cheio de sangue e privados de pulso. Prevenir tópicos de produzir uma força de binário sobre a artéria.
Fazer uma secção transversal nick perto da parte inferior da artéria com um Vannas micro-tesoura. Gotas de sangue será derramado.
Inserir o cateter na artéria carótida. Certifique-se de introduzir o sensor de pressão inteiro. Verificar que não há perda de sangue.
Suavemente ajustar o nó rosca do meio, a fim de segurar o cateter no lugar. Não comprimir em demasia, o sensor de pressão é muito frágil.
Solte a tesoura hemostat do abdômen animal.
Segurar o cateter com uma mão e empurra o fio do meio, a fim de evitar a perda de sangue. Nota: artéria deve estar cheio de sangue.
Iniciar sinais de pressão de gravação.
Quando o cateter está dentro, osinal de pressão arterial oscila 60-70 a 100-120 mmHg. A forma do sinal de pressão é mostrada na Figura 1.A. Nota: se estiver interessado em diante, neste ponto do tempo é possível registar a pressão arterial se sinal é estável durante pelo menos 5 min. Valores de FC foram obtidos a partir das formas de onda de pressão, considerando um intervalo de 30 segundos de sinal de gravação. É possível utilizar também um método de ECG para a medição directa da AR, de acordo com os objectivos de investigação.
Suavemente empurrar o cateter se observar uma alteração na forma do sinal de pressão (Figura 1 B). Uma vez que o cateter está no interior do ventrículo esquerdo, o sinal de pressão varia de 0 a 100-120 mmHg. Se for difícil para deslizar o cateter, belisque peito animal com dois dedos.
Continuamente controlar a taxa de respiração, a temperatura corporal, o nível de anestesia e sinal de pressão. Todos eles devem permanecer estáveis.

VI. A infusão de dobutamina

Para a canulação da veia jugular certifique-se de descascar o tecido adiposo em torno da veia, a fim de evitar a sua perfuração. O procedimento cirúrgico para a oclusão da veia é semelhante ao procedimento descrito para a artéria carótida.
Introduzir um tubo de PE-10 para dentro da veia. Confirmar que o fluxo de sangue não é bloqueado se movendo para trás o êmbolo da seringa.
A infusão de dobutamina começa com 10 ul / min e terminar com 60 ul / min. Em cada passo, a velocidade de perfusão é mantida durante 2 min ^6.
Após a última dose de dobutamina, sacrificar o animal com uma overdose de anestesia.

VII. Análise de Dados

Para análise dos dados, escolha a seção dos dados gravados de seu interesse. Certifique-se de considerar um intervalo de tempo em que o sinal de pressão é estável.
Selecione o ícone de configuração no módulo de Pressão Arterial. Indique o tipo selecionado de sinal de pressão.
Automaticamente os LabChartPro 7 software exibe média máxima,e os valores mínimos de RH, pressão arterial sistólica (P _max), pressão diastólica (P _min), pressão diastólica final (PDE), o desenvolvimento positivo pressão máxima (dP / dtmax) e desenvolvimento de pressão negativa máxima (dP / dt _min). Além disso, os parâmetros cardíacos podem ser representadas no traçado da pressão.