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Artigo de método

Um método simples de intubação Lung Rato

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DOI:

10.3791/50318

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21 de março de 2013

Neste artigo

Resumo

Este artigo descreve um método striaghforward e eficiente de entubar ratos para medições de função pulmonar ou instilação pulmonar, que permite que os ratos a se recuperar e ser estudado em momentos posteriores. O procedimento envolve uma fonte de luz de fibra óptica de baixo custo que ilumina diretamente a traquéia.

Resumo

Um procedimento simples para entubar ratos para medições de função pulmonar teria várias vantagens em estudos longitudinais com um número limitado de animais ou caro. Uma das razões que isso não é feito rotineiramente mais é que é relativamente difícil, apesar de haver vários estudos publicados que descrevem formas de o conseguir. Neste artigo é demonstrar um procedimento que elimina um dos principais obstáculos associados com este intubação, que de visualizar a traqueia durante todo o tempo de intubação. A abordagem utiliza uma fonte de luz de 0,5 milímetros de fibra óptica, que serve como um introdutor para dirigir a cânula de intubação para dentro da traqueia do rato. Mostra-se que é possível usar este procedimento para medir a mecânica pulmonar em ratos individuais ao longo de um curso de tempo de pelo menos várias semanas. A técnica pode ser configurado com despesa relativamente pequena e experiência, e pode ser realizado rotineiramente com relativamente pouco treinamento. Isto deve makÊ possível para qualquer laboratório para realizar rotineiramente este intubação, permitindo assim estudos longitudinais em ratinhos individuais, minimizando assim o número de ratinhos necessários e aumentar o poder estatístico usando cada rato como seu próprio controlo.

Introdução

Em 1999, Brown et al. Publicado um artigo científico que descreve um método para intubação de pulmão de rato 1. Tal técnica tem utilidade considerável em fazer função de repetição pulmonar ou lavado bronco-alveolar em camundongos individuais em estudos longitudinais 2. Desde que o papel original, houve vários outros documentos que descrevem abordagens diferentes para intubação rato 3-9. Embora todos estes métodos podem ser utilizados com sucesso, eles normalmente requerem formação considerável ou custo. Um dos principais problemas para intubação tal é que, como as abordagens cânula de intubação se aproxima a inserção traquéia....

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Protocolo

1. Preparando-se para o Procedimento

Deve-se primeiro obter e preparar os seguintes itens:

  1. A cânula. Para intubação de 20-35 ratinhos g, usamos uma polegada de 1 ou 1,5 de comprimento, 20 gauge cateter IV (BD Insylte, Sparks, MD ou Jelco Optiva, Carlsbad, CA). Um novo cateter estéril pode ser usada para cada rato, mas cateteres também pode ser reutilizado depois da esterilização por imersão em etanol a 70% durante a noite. Embora nem faringe nem traqueia do mouse é estéreis procedimentos adequados de limpeza, incluindo a utilização de luvas estéreis e instrumentos, devem ser seguidas.
  2. O cabo d....

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Resultados

Como uma avaliação do método, utilizou-se quatro 20 semanas de idade BALB / c fêmeas com peso médio (± SEM) de 27,7 ± 0,40 g. Eles foram estudados em cinco semanas consecutivas, em que a resistência pulmonar foi medida utilizando um sistema tal como foi previamente descrito 11. Cada rato foi anestesiado com cetamina (100 mg / g de peso corporal) e xilazina (15 mg / g de peso corporal) em solução salina por injecção IP. Eles foram então entubados, como descrito acima. Se houver alguma dúvida sobre se a cânula .......

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Discussão

O procedimento aqui descrito tem várias vantagens. Primeiro, o aparelho é simples e relativamente barata .. A fabricação do aparelho não necessita de quaisquer ferramentas especiais ou equipamento dispendioso. A utilização de um cateter que apresenta também é a fonte de luz quer dizer que nunca perde-se a abertura traqueal como o introdutor se aproxima da abertura traqueal. O uso de um introdutor de 0,5 mm, também serve para minimizar o trauma que pode ocorrer com uma inserção inicial de uma cânula maior. Notamos aqui q.......

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Divulgações

Nenhum dos autores tem quaisquer conflitos de interesse de divulgar.

Agradecimentos

Suportado pelo NIH HL-10342.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Material Companhia Catalogo Comentário
Cânula de intubação BD Insylte, Sparks, MD ou Jelco Optiva, Carlsbad, CA 1-pol de comprimento, 20-gauge cateter intravenoso (IV)
Cabo de fibra óptica Edmund Optics, Barrington, NJ # NT02-542 Cerca de 2 pés de comprimento de 0,5 mm de fibra óptica (Comunicação fibra plástica grau). A aresta da extremidade da fibra, que é inserido na traqueia deve ser suavemente arredondada, segurando a fibra ≈ 2 cm da extremidade e, em seguida, fazendo pequenos círculos ao arrastar a ponta por alguns segundos em 1.000 lixa de esmeril.
Fonte de Luz Volpi NCL-150 Apesar de usar um 150-W fonte de luz halógena, qualquer fonte de luz equivalente, mesmo com potência muito mais baixapode ser usado.
Rolha de borracha de silicone Uma rolha de borracha de silicone n º 1 se ajusta a fonte de luz usada nesta demonstração. Diferentes fontes de luz podem requerer um tamanho diferente.
Tubo de borracha de silicone pequena Cole-Palmer EW-96410-13 Um pedaço ≈ 1,5 cm de tubo de borracha de silicone (0,8 de diâmetro interno de 4 mm de diâmetro exterior)
Pé de apoio angular A nossa é constucted de plexiglass, mas qualquer material ao qual um fio ou fio pode ser afixada para segurar o rato a um ângulo quase vertical pode ser utilizado.

Referências

  1. Brown, R. H., Walters, D. M., Greenberg, R. S., Mitzner, W. A method of endotracheal intubation and pulmonary functional assessment for repeated studies in mice. J. Appl. Physiol. 87, 2362-2365 (1999).
  2. Walters, D. M., Wills-Karp, M., Mitzner, W.

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Reimpressões e permissões

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