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Artigo de método

Medindo espacial e temporal Ca 2 + Sinais em Arabidopsis Plantas

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DOI:

10.3791/51945

2 de setembro de 2014

Neste artigo

Resumo

Sinalização de Ca2 + regula diversos processos biológicos em plantas. Aqui apresentamos abordagens para monitorar o estresse abiótico induzida Ca espacial e temporal 2 + sinais em células e tecidos, utilizando os codificados geneticamente Ca2 indicadores aequorin ou case12 Arabidopsis.

Resumo

Sinais ambientais e de desenvolvimento induzir oscilações de Ca2 + em células de plantas. Espaço-temporais de Ca2 + padrões específicos de estímulo são detectados por proteínas Ca2 + ligação celulares que iniciam Ca2 + cascatas de sinalização. No entanto, ainda sabemos pouco sobre como estímulo sinais de Ca 2 + específico são gerados. A especificidade de um sinal de Ca2 + pode ser atribuído à regulação sofisticados das actividades dos canais de Ca2 + e / ou transportadores, em resposta a um dado estímulo. Para identificar estes componentes celulares e compreender as suas funções, é essencial a utilização de sistemas que permitem a gravação sensível e robusto de sinais de Ca 2 + em ambos os tecidos e níveis celulares. Codificados geneticamente Ca2 indicadores que são direcionados para diferentes compartimentos celulares têm proporcionado uma plataforma para células vivas imagem confocal de celulares Ca2 + sinais. Aqui descrevemos instruçãos para a utilização de dois sistemas de detecção de Ca 2 +: aequorina baseado FAS (mudas adesivas película luminescência) de Ca2 + e de imagiologia case12 confocal de fluorescência de células vivas com base de Ca2 + de imagem. Imaging luminescência usando o sistema FAS fornece uma detecção simples, robusto e sensível de Ca2 + sinais espaciais e temporais em nível tecidual, enquanto células vivas imagem confocal usando case12 fornece detecção simultânea de citosólica e Ca2 + sinais nucleares em uma resolução alta.

Introdução

A célula de planta responde ao meio ambiente através de sinalização que coordena as acções de células. Um evento de sinalização precoce de células em resposta a estímulos do meio ambiente é um aumento transitório de Ca2 +. O padrão, ou a assinatura de um aumento transitório da concentração de Ca2 + livre é caracterizado pela sua amplitude, frequência e duração. Assinaturas Ca2 + espaço-temporais distintas regular diferentes atividades celulares 1. Estímulos específicos, como o calor, o frio, o sal, a seca, a luz, ou hormônios vegetais, pode ajustar a atividade espaço-temporal localizada à membrana canais de Ca2 + e / ou transportadores, resultando em específicos de Ca2 + assinaturas. Embora os transportadores de Ca2 + têm sido bem caracterizados, pouco é conhecido sobre as identidades molecular e as funções de canais de Ca 2 + em plantas 1. Telas genéticos para os mutantes com alteração de Ca2 + resposta ao estresse pode ser um estímulo eficaz aproxoach para identificar os componentes que compõem Ca2 + assinaturas. Ca2 sistemas de detecção com base recentemente vários Aequorina têm sido desenvolvidos que facilitam telas genéticos para componentes de sinalização de Ca2 + em resposta a ataque patogénico e stress abiótico 2-4.

Aequorina foi usado pela primeira vez para detectar sinais de Ca2 + em plantas no início de 1990 5. Desde então, a Aequorina foi orientada para diferentes compartimentos celulares, tais como o 5 citoplasma, núcleo 6, 7 cloroplastos, tonoplast 8, 9 mitocôndrias, e estroma 10, bem como para diferentes tipos de células na raiz para monitorar célula específica de Ca 2 + sinais 11. Medições de Ca 2 + base de Aequorina revelar o espacial e temporal de Ca2 + resposta de uma população de células ao estresse estímulos. No entanto, na maioria dos casos, as respostas do Ca2 + de células individuais são unsynchronized no tecido respondendo 4. Por conseguinte, a Aequorina Ca2 + gravação não necessariamente comunicar o sinal de Ca2 + em células individuais. Nos últimos anos, a proteína fluorescente geneticamente codificado (FP) à base de Ca2 + de indicadores, tais como cameleon amarelo (YCS) 12 e 13 casos12 têm sido utilizados para estudar a sinalização de Ca2 + com alta resolução subcelular. YCS são fluorescência transferência de energia de ressonância (FRET) à base de Ca 2 + indicadores, contendo PCP e YFP variantes ligadas pela Ca2 + liga�o ao calmodulina proteínas e peptídeos de ligação à calmodulina M13. A calmodulina sofre uma alteração conformacional, uma vez que se liga a Ca 2 +, pondo assim PCP e YFP mais juntos, o que resulta num aumento da transferência de energia (reforçada FRET). O nível de FRET ao longo do tempo, calculada aproximadamente como a razão entre a intensidade do sinal YFP PCP, reflecte intracelular de Ca2 + dinâmica. Várias versões YC têm sido utilizados em plantas. YC3.6 era targeted para o citosol 14,15, núcleo 16, 17 mitocôndrias e membrana plasmática 18, e YC4.6 e D4ER foram direcionados para o ER 15,19, e D3cpv foi direcionada para os peroxissomos 20. Plantas transgênicas expressando YCS permitir a geração de imagens de células vivas de Ca2 + dinâmica em diferentes compartimentos celulares de diferentes tipos de células. Casos (presumivelmente Ca lcium se nsor) são proteínas simples permuta circular fluorescentes (cpFPs) abrigam uma calmodulina e peptídeos de ligação à calmodulina M13. Após a ligação ao Ca2 +, os casos sofrer alterações conformacionais, que conduz a um aumento da intensidade da fluorescência. A correlação entre a resposta da fluorescência do CASE e concentração de Ca2 + permite intracelular de Ca2 + dinâmica a ser medido quantitativamente. A variante case12 tem 12 vezes maior de fluorescência nas Ca2 + formas saturados. N. plantas benthiminana transitoriamente expressing case12 ou plantas de Arabidopsis expressando estavelmente Caso 12 foram usados ​​para estudar Ca 2 + sinalização na defesa e abióticos de estresse 4,21. Asynchronous espacial e temporal Ca2 oscilações nas células respondem ao ataque de patógenos, ou ao estresse desidratação foram revelados com base case12 Ca2 + imagem.

Aqui, apresentamos instruções detalhadas para a Aequorina imagem luminescência base de Tecido e estímulos específicos Ca2 dinâmica em plântulas de Arabidopsis, e por imagem confocal de citosólica e Ca 2 + dinâmica nuclear em células das raízes de Arabidopsis que expressam Caso 12 luminescência de imagem de FAS pode ser adaptado para analisar induzidas pelo stress Ca2 dinâmica em plantas ou tecidos intactos não descritos aqui, ou para pesquisar populações de plantas de Arabidopsis mutantes por mutagénese com o stress alterado induzido Ca2 sinais. A configuração da imagem de células vivas de Ca2 + pode ser adaptado para analisar Ca2 + dinâmica em diferentes compartimentos subcelluar ou em diferentes tipos de células utilizando outros indicadores de Ca2 +.

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Protocolo

1. Aequorina Based Ca2 + Imagem Usando o Sistema FAS

  1. Preparar mudas para imagens de luminescência. Esterilizar as sementes de plantas de Arabidopsis expressando a Aequorina com uma solução de lixívia a 10% contendo 0,01% de Triton-100. Semear as sementes estéreis sobre uma placa quadrada (10 x 10 cm quadrados placa de Petri com grade,) contendo força total MS (Murashige e Skoog Basal Mistura de sal), 1% de sacarose, e 1.2% de ágar. Colocar as placas verticalmente em uma câmara de crescimento, após a estratificação a 4 ° C durante 2 dias (Figura 1A).
  2. Transferir as plantas para um filme. Coloque uma película adesiva (Figura 1B) na parte superior, de 7-10 dias de idade em crescimento mudas na placa. Com cuidado, empurre o filme à mão para garantir que as mudas aderir ao filme (Figura 1C). Descascar suavemente a película de modo que as plântulas permanece aderida à película (Figura 1D e 1E)
  3. Incubar as mudas com cofator. Coloque a umdhered mudas para a placa quadrada (10 x 10 cm) contendo 15 ml de 2 ug / ml de h-CTZ (coelenterazina) em água. Incubar as plântulas, à temperatura ambiente durante 4 horas durante a noite (Figura 1F).
  4. Prepare-se para imagens de luminescência. Pegue o filme fora da solução h-CTZ e cortá-la ao meio, formando duas partes. Coloque cada pedaço de filme com mudas de face para cima em duas placas diferentes. Deixe as placas no escuro por 5 min.
  5. Adquirir imagens de luminescência. No escuro, colocar as duas placas ao lado do outro na fase do sistema de imagem de luminescência (Figura 1G). Adquirir imagens imediatamente após a adição de 20 ml de solução de estímulos para as placas simultaneamente.
  6. Analisar imagens de luminescência. Escolha a mesma faixa de exibição para todas as imagens de luminescência. Cortar a região de interesse (ROI) e gerar as imagens como arquivos JPEG (Figura 2A). Alternativamente, exportar as imagens como arquivos de formato SPE e importá-los para oSoftware de análise de imagem ImageJ. Definir medidas para cálculo do valor médio de cinza de ROI. Selecione o mesmo tamanho da área ROI e medir os dados cinza e presentes médios como gráficos de barras (Figura 2B).

2. vivo celular confocal Ca2 + Imagem

  1. Preparar mudas para imagem confocal. Esterilizar sementes de plantas de Arabidopsis expressando case12 com solução de água sanitária a 10% contendo 0,01% de Triton. Semear as sementes estéreis em uma placa contendo sais MS força integral, 1% de sacarose e 1,2% de ágar. Colocar as placas verticalmente em uma câmara de crescimento, após a estratificação a 4 ° C durante 2 dias.
  2. Câmaras de imagem Setup
    1. Monte uma câmara de imagem usando uma lâmina e lamela (Câmara A). Coloque um pedaço de algodão embebido de água para o meio da lâmina. Em seguida, transferir uma ou duas mudas de cinco dias de idade a partir da placa para o topo da água encharcada algodão. Cole pequenos pedaços de barro para cada canto de uma lamela, umd lugar lamela no topo de mudas de criar um espaço (câmara) entre a lamela e corrediça (Figura 3A, painel esquerdo). Ligar uma extremidade do tubo de polietileno (0,58 mm de diâmetro) para uma seringa de 1 ml e colocar a outra extremidade do tubo imediatamente adjacente à câmara. Segurar o tubo no lugar com fita adesiva (Figura 3A, painel da direita).
    2. Monte uma câmara de imagem utilizando uma câmara de plexiglass (Câmara B).
      1. Espalhar uma camada fina de massa de silicone em torno de dois tubos de polietileno (0,58 mm de diâmetro) e pressionar os tubos revestidos para os canais em cada lado da câmara de plexiglass (Figura 3B painel da esquerda). Espalhar uma camada fina de massa de silicone sobre a superfície da câmara que contém as ranhuras do tubo e apertar uma lamela na graxa para vedar um lado da abertura da câmara (cortadas).
      2. Transferir uma plântula cinco dias de idade a partir da placa para a câmara e colocar um pedaço de algodão embebido em água na parte superior of a muda. Espalhe massa de silicone sobre a outra superfície da câmara, e pressionar outra lamela sobre a selar. Ligar a extremidade de um dos tubos a uma seringa de 1 ml. Deixar a extremidade do outro tubo aberto (painel direito Figura 3B).
    3. Preparar uma câmara de imagem usando uma tampa de vidro câmaras (Câmara C). Esterilizar o vidro da tampa câmaras com etanol 70% e deixá-la sobre o capô até secar. Adicionar 0,6 ml ou 0,2 ml de força total meio MS contendo 1% de sacarose e 0,5% de phytagel em cada poço de uma câmara de dois poços ou de uma câmara de 8 poços (Figura 3C painel da direita), respectivamente. Esterilizar sementes e semear as sementes diretamente em uma tampa de vidro câmaras contendo uma fina camada de gel transparente e deixá-los crescer verticalmente, durante 5 dias (Figura 3C).
  3. Adquirir imagens usando um microscópio confocal. Para aplicar estímulos de estresse, tais como sal, frio ou peróxido, lentamente injete cerca de 200 mL de NaCl 150 mM, ice-cold água ou 1 mM de H 2 O 2 a solução para dentro da câmara (Secção A ou B), imediatamente antes da obtenção de imagens, ou adicionar cuidadosamente 500 ul ou 100 ul de solução de estímulo para o poço de uma câmara 2 ou 8 poços, respectivamente . Capturar imagens imediatamente após a aplicação da solução de estímulo usando uma Nikon A1R microscópio confocal de varredura a laser invertido com uma lente de imersão em água 20X (abertura numérica 0,75). Coletar uma série temporal de imagens em intervalos de 4 s com comprimentos de onda de excitação e emissão de 488 nm e 500-550 nm, respectivamente, e com uma resolução de pixel de 512 x 512.
  4. Análise de Imagem
    Usando Nikon Elements, ROIs foram desenhadas ao redor de cada célula (ou área) de interesse. Intensidade total dentro de cada ROI foi medido ao longo do tempo usando a caixa de diálogo Tempo de medição (ImageJ poderia ser usado em vez disso). Total de medições de intensidade foram exportados e processados ​​em DataGraph. Ca2 + spike amplitude foi definida como a intensidade do pico de menos descansando intensidade, duração como the de tempo entre o início ea conclusão de uma espiga, eo período como o intervalo de tempo entre os picos de pico adjacentes de dois picos. teste t foi utilizado para comparar as médias.

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Resultados

Manitol, NaCl e H 2 O 2 foram usados ​​como proxies para a desidratação, de sal e de estresse oxidativo estímulos, respectivamente. Para verificar se o ião de metal pesado Cu2 + sinergiza com qualquer destes três estímulos de stress, comparou-se a resposta de Ca 2 + a cada estímulo na presença ou ausência de Cu2 +. Como mostrado na Figura 2, o FAS luminescência imagiologia revelou que as plântulas Arabidoposis responderam diferentemente a desidrataç...

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Discussão

Nós demonstramos um sistema FAS para a gravação do espaço-temporal de Ca2 + resposta de mudas de Arabidopsis. Este FAS Ca2 + sistema de gravação proporciona uma abordagem simples, sensível e robusto, que pode ser adaptado para medir a Ca2 dinâmica desencadeada por estímulos diversos, para além dos estímulos de stress abiótico, que são aqui apresentados. Usando este sistema, podemos facilmente comparar tecido- ou específicos de estímulos espaço-temporais Ca2 + dinâmica a nível ...

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Divulgações

Os autores não têm nada a divulgar.

Agradecimentos

Somos gratos a B. Stevenson pela assistência técnica e ao Dr. Marc R. Knight por fornecer a linha transgênica Aequorin. Este trabalho foi financiado pelo National Institutes of Health Grant R01 GM059138.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Placa de Petri quadrada de 10 cm x 10 cmVWR60872-310
Película adesivaVWR60941-062
Tubo de polietilenoPerkinElmer9908265
seringa de 1 mlVWR53548-000
Massa lubrificante de siliconeBeckman335148
vidro de cobertura com câmara de 2 poços Nalge Nunc international155379
vidro de cobertura com câmara de 8 poçosNalge Nunc international155409
Sistema de imagem de luminescênciaPrinceton InstrumentsN/A
Microscópio de varredura a laser confocal invertidoNikon Instruments Inc.N/ANikon A1R 
Software de imagemNikon Instruments Inc.N/ANikon Elements 
DataGraphVisual Data Tools IncN/ADataGraph 3.1.1 é a versão mais recente
CoelenterazineNanoLight Technolgies#301B NF-BCTZ-FB
Alvejante multiusoQualquer loja localN/A
Triton X-100FisherBP151500
MS salPhytotechnology LabsM524-50L
SacaroseVWRBDH8029-12KG
ÁgarSigmaA1296-5KG
Phytagel SigmaP8169-1KG

Referências

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