Artigo de método

Imagiologia de Alteração Forma celular e Movimento celular em Drosophila gastrulação Usando Reporter DE-caderina moscas transgénicas

DOI:

10.3791/54764

⸱

29 de dezembro de 2016

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1Biotechnology and Genetic Engineering Department, Jahangirnagar University, 2JT Biohistory Research Hall, 3Division of Cell Regeneration and Transplantation, School of Medicine, Nihon University, 4Graduate School of Life and Medical Sciences, Doshisha University, 5Institute of Genetics and Animal Breeding of the Polish Academy of Sciences

Neste artigo

Resumo

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Aqui descrevemos um procedimento para capturar imagens ao vivo da gastrulação de Drosophila. Isso nos permitiu entender melhor a constrição apical envolvida no desenvolvimento inicial e analisar melhor os mecanismos que governam os movimentos celulares durante a modificação da estrutura do tecido.

Resumo

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Gastrulação é o primeiro conjunto de eventos morfologicamente dinâmicas que ocorrem durante o desenvolvimento embrionário de animais multicelulares, tais como Drosophila. Esta alteração morfológica é também reconhecido como epitelial para mesenquimal (EMT). A desregulação de EMT está associada com fibrose e metástases do cancro. Há uma evidência emergente de que EMT é controlado por um número de mecanismos moleculares. Como tal, muitos genes-chave que controlam a constrição apical também são conhecidos por serem fatores importantes na EMT observado na metástase do câncer. Como EMT durante Drosophila gastrulação, as células epiteliais podem ser induzidas a alterar a sua forma e ser reprogramadas de modo a redireccionar o destino celular no sentido de vários outros tipos de células. Aqui nós fornecemos um método de imagem robusta de Drosophila gastrulação para ensaiar o início de movimentos celulares morfogenéticos e identificação destino celular durante esta fase do desenvolvimento embrionário. Usando este método, identificamos cEll rearranjo no momento da gastrulação e demonstrar a importância de constrição apical durante a gastrulação utilizando GFP marcado DE-caderina.

Introdução

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Gastrulação é o primeiro conjunto de eventos morfologicamente dinâmicas que ocorrem durante o desenvolvimento embrionário de animais multicelulares, tais como Drosophila 1,2. Curiosamente, a evidência emergente sugere que este processo é regulado através da interação entre os mecanismos mecânicos e moleculares 3. Além disso, o epitelial para mesenquimal (EMT), que é um processo crucial para a gastrulação, também está implicado em processos de doenças humanas, tais como metástases de cancro 4-8. Como tal, muitos genes que controlam a constrição apical também são conhecidos por serem factores fundamentais para o EMT observado na metástase do câncer 9. Assim, constrição apical no momento da gastrulação é um excelente modelo para investigar os mecanismos de regulação acima referidas e para aumentar a nossa compreensão da metástase do cancro. A vantagem desta técnica é que podemos observar o movimento celular no momento da gastrulação em tempo real e, por conseguinte, que serácapaz de rastrear os genes envolvidos na gastrulação, bem como metástase do cancro.

Embora relativamente desconhecido, adesão célula-célula é pensada para desempenhar um papel central na constrição apical 1. Genética de Drosophila é bem adequado para investigações de células individuais de nível explorando mecanismos moleculares reguladoras. Este modelo vai permitir-nos descobrir a importância da constrição apical durante a gastrulação. Além disso, este método pode ser utilizado para rastrear os genes envolvidos em metástase do cancro. Captura de imagens ao vivo de Drosophila gastrulação permitiu-nos ainda mais para compreender em maior detalhe os mecanismos moleculares que regulam rearranjo de tecidos. Aqui, nós fornecemos uma descrição abrangente de um método simples para alcançar este objectivo.

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Protocolo

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NOTA: As moscas transgénicas usadas neste estudo incluem as seguintes: DE-CAD :: GFP 10.

1. Preparação da Apple Placa

  1. Prepara-se uma mistura de 12,5 g de agar, 125 mL de 100% disponível comercialmente sumo de maçã, 12,5 g de glucose, e 375 mL de H 2 O. Aquecer a mistura em um forno de microondas e coloque em uma placa de cultura de células a 3 cm. Armazenar a mistura a 4 ° C para uso futuro.
  2. Depois de preparar o prato de maçã, adicione uma camada fina de pasta de levedura amassado em cima dela para permitir que as moscas colocar ovos.

2. Embrião Elaboração e protocolo Imagens ao vivo

  1. Coloque cerca de 50 moscas (25 homens e 25 mulheres) em uma garrafa para acasalar e, posteriormente, põem ovos durante a noite em uma placa de maçã coberta em levedura amassado. Ajuste a placa do sumo de maçã na boca da garrafa. Mantenha o frasco de cabeça para baixo em uma incubadora. Enrole os frascos plásticos Stock Drosophila com folha de alumínio para solicitar the voa para pôr mais ovos.
  2. Na manhã seguinte, substituir a placa de suco de maçã velha por uma nova.
  3. Deixe que as moscas depositam ovos para 3 a 4 h envolvendo a garrafa com folha de alumínio.
  4. Três a quatro horas mais tarde, recolher os embriões em um coador de embrião a partir da placa de suco de maçã com uma escova ou algodão ruim e lavá-los com PBS. Lavar os embriões mais 2 a 3 vezes com PBS, em 12 poços de cultura de pratos.
  5. Dechorionate os embriões com 50% de branqueador durante 5 min em 12 poços de cultura de pratos.
  6. Seguindo o processo dechorionation, lavar os embriões mais 2 a 3 vezes com PBS.
  7. Transferir os embriões para uma placa de cultura de células de 3 cm, que inclua PBS e selecione o estágio 5 embriões sob o microscópio com base no nível de transparência nas suas fronteiras. Pipetar os embriões em estágios usando uma ponteira 200 mL.
  8. Em seguida, coloque dois embriões selecionados em uma lamela de vidro, e remover o excesso de PBS com papel de tecido fino torcido. Orientar os embriões lado dorsal em cimaa lamela usando um lenço de papel fino torcido. Depois disso, coloque os embriões para a lamela de vidro com graxa de silicone usando uma agulha fina e papel de tecido trançado.
  9. Adicionar uma pequena gota de óleo de hidrocarbonetos halogenados 700 sobre os embriões e colocar a lamela contendo os embriões de cabeça para baixo sobre a corrediça recuada, deixando um espaço na parte inferior da corrediça.
  10. Examinar os embriões usando um sistema confocal de imagem, um 488 de laser / Argon, e um objetivo de imersão em óleo (63X).
    NOTA: A identificação do embrião no estágio de desenvolvimento adequada é importante para capturar imagens do evento gastrulação. Sob essas condições, observar quase todos os embriões se desenvolvem normalmente até, pelo menos, estágio 14. O embrião analisados ​​podem ser cultivadas ainda mais para se desenvolver como um adulto.

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Resultados

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Aqui, vamos mostrar os eventos gastrulação do embrião Drosophila e uma visão geral do processo de preparação do embrião (Figura 1). As membranas celulares são marcados utilizando DE-caderina :: GFP e imagem ao vivo dos movimentos de células é realizada no momento da gastrulação em Drosophila (Figura 2). Desde moscas DE-caderina GFP permitem visualizar junções de aderência celular, somos capazes de traçar a forma da célula apical e movimentos usa...

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Discussão

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Embora tenhamos relatado anteriormente um procedimento semelhante para capturar imagens ao vivo do processo de gastrulação em Drosophilla1, o método que descrevemos aqui é detalhado e fácil de rastrear a expressão endógena de caderina e, portanto, é bastante útil para a triagem genética dos principais fatores envolvidos na gastrulação. Para maximizar o sucesso com este procedimento de imagem, é essencial usar uma lâmina recuada. A pressão mecânica às vezes causa morte embrionária. Portanto, também é i...

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Divulgações

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Os autores não têm nada a divulgar.

Agradecimentos

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Este estudo foi apoiado pela Astellas Foundation for Research on Metabolic Disorders (HT), Takeda Science Foundation (HT) e MEXT-Supported Program for the Strategic Research Foundation at Private Universities (HT).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Óleo de halocarbono 700SigmaMKBH 5726
Graxa a vácuo SiliconeBeckman335148
Cobertura de vidro Matsunami vidroEspessura No124 - 36 mm
Embrião starinerCorningCorning3477
Plástico Drosophilla Stock GarrafasHitecMKC-100
DE-Caderina knock-in moscasREF (10)

Referências

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  1. Haruta, T., Warrior, R., Yonemura, S., Oda, H. The proximal half of the Drosophila E-cadherin extracellular region is dispensable for many cadherin-dependent events but required for ventral furrow formation. Genes Cells. 15 (3), 193-208 (2010).
  2. Oda, H., Takeichi, M. Evolution: structural and functional diversity of cadherin at the adherens junction. J. Cell Biol. 193 (7), 1137-1146 (2011).
  3. Fernandez-Sanchez, M. E., Serman, F., Ahmadi, P., Farge, E. Mechanical induction in embryonic development and tumor growth integrative cues through molecular to multicellular interplay and evolutionary perspectives. Methods Cell Biol. 98, 295-321 (2010).
  4. Alderton, G. K. Metastasis: Epithelial to mesenchymal and back again. Nat. Rev. Cancer. 13 (1), 3(2013).
  5. Fabregat, I., Malfettone, A., Soukupova, J. New Insights into the Crossroads between EMT and Stemness in the Context of Cancer. J. Clin. Med. 5 (3), (2016).
  6. Serrano-Gomez, S. J., Maziveyi, M., Alahari, S. K. Regulation of epithelial-mesenchymal transition through epigenetic and post-translational modifications. Mol. Cancer. 15, (2016).
  7. Yu, A. Q., Ding, Y., Li, C. L., Yang, Y., Yan, S. R., Li, D. S. TALEN-induced disruption of Nanog expression results in reduced proliferation, invasiveness and migration, increased chemosensitivity and reversal of EMT in HepG2 cells. Oncol. Rep. 35 (3), 1657-1663 (2016).
  8. Zheng, X., et al. Epithelial-to-mesenchymal transition is dispensable for metastasis but induces chemoresistance in pancreatic cancer. Nature. 527 (7579), 525-530 (2015).
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  10. Huang, J., Zhou, W., Dong, W., Watson, A. M., Hong, Y. Directed, efficient, and versatile modifications of the Drosophila genome by genomic engineering. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106 (20), 8284-8289 (2009).

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