Um protocolo para produzir uma grande área de substrato nanopadronizado a partir de pequenos moldes nanopadronizados para estudo da modulação nanotopográfica do comportamento celular é apresentado.
Artigo de método
Um protocolo para produzir uma grande área de substrato nanopadronizado a partir de pequenos moldes nanopadronizados para estudo da modulação nanotopográfica do comportamento celular é apresentado.
A nanotopografia de substrato demonstrou ser um potente modulador do fenótipo e função celular. Para dissecar a modulação nanotopográfica do comportamento celular, uma grande área de substrato nanopadronizado é desejável para que células suficientes possam ser cultivadas na nanotopografia para análises bioquímicas e de biologia molecular subsequentes. No entanto, as técnicas atuais de nanofabricação têm limitações para gerar nanopadrões altamente definidos em uma grande área. Aqui, apresentamos um método para expandir substratos nanopadronizados de um nanopadrão pequeno e altamente definido para uma grande área usando a técnica de ponto. O método combina várias técnicas, envolvendo litografia macia para replicar moldes de poli (dimetilsiloxano) (PDMS) de um molde bem definido, técnica de ponto para montar vários moldes PDMS em um único molde grande e nanoimpressão para gerar um molde mestre em substratos de poliestireno (PS). Com o molde mestre PS, produzimos substratos de trabalho PDMS e demonstramos a modulação nanotopográfica do espalhamento celular. Este método fornece uma avenida simples, acessível contudo versátil para gerar nanopatterns poço-definidos sobre grandes áreas, e é estendido potencialmente para criar dispositivos do micro/nanoscale com componentes híbridos.
Várias descobertas recentes revelam que a nanotopografia de substrato tem influência pronunciada no comportamento celular, desde a adesão, espalhamento e migração celular, até a proliferação e diferenciação1-6. Por exemplo, um tamanho celular menor e menor taxa de proliferação foram observados em células cultivadas em nanogrades profundas, levando até mesmo à apoptose, embora o alinhamento, alongamento e migração celular tenham sido aumentados, em comparação com os controles planos2,7-10. Além disso, a nanotopografia demonstrou facilitar a diferenciação de células-tronco em certas linhagens, como neurônio2,11,12, músculo13 e osso3,4. Além disso, devido às crescentes preocupações com a toxicidade dos nanomateriais projetados14,15, é necessário incorporar a nanotopografia em modelos in vitro fisiologicamente relevantes para uma avaliação precisa do risco dos nanomateriais. Para realizar as análises bioquímicas e de biologia molecular, são necessárias células suficientes para serem cultivadas em uma grande área de substrato nanopadronizado. No entanto, as técnicas convencionais de nanofabricação têm limitações para gerar nanopadrões altamente definidos em uma grande área.
A automontagem, incluindo litografia coloidal16 e desmistura de polímeros17, pode gerar prontamente nanoestruturas de grande área a baixos custos. Como a automontagem depende de interações entre os elementos de montagem, como partículas coloidais e macromoléculas, e possíveis interações entre esses elementos e o substrato, não pode ser um método autônomo de produção de nanoestruturas com posicionamento espacial preciso e formas arbitrárias18. A alta densidade de defeitos acompanhada também é uma desvantagem. O controle espacial preciso dos nanopadrões pode ser alcançado empregando a automontagem modelada, que usa abordagens litográficas de cima para baixo para fornecer o modelo topográfico e / ou químico para guiar a montagem de baixo para cima dos elementos de montagem19-21. Técnicas alternativas de nanofabricação, como litografia step-and-flash22 e litografia de nanoimpressão rolo a rolo23 foram desenvolvidas, mas têm uso limitado devido ao seu processo sofisticado ou à necessidade de equipamentos especializados. No entanto, um molde ou um molde mestre com padrões definidos em nanoescala é necessário para técnicas de nanofabricação modeladas ou alternativas.
Tais modelos e moldes mestres são gerados convencionalmente usando litografia de feixe de elétrons, íons ou fótons focalizada. Por exemplo, a litografia por feixe de elétrons (EBL)24 e a litografia por feixe de íons focalizados25 podem gerar padrões definidos com uma resolução abaixo de 5 nm. A litografia de dois fótons demonstrou um tamanho de característica tão pequeno quanto 30 nm26. Embora as técnicas de litografia de feixe focalizado permitam a geração de estruturas em nanoescala bem definidas, o investimento de capital e o processo demorado e caro restringem seu uso generalizado em pesquisas acadêmicas27. Portanto, é altamente desejável desenvolver técnicas facilitadoras, porém acessíveis, para produzir uma grande área de superfícies nanopadronizadas com alta fidelidade.
Relatamos uma técnica de ponto simples e econômica para gerar uma grande área de superfície nanopadronizada a partir de um pequeno molde bem definido28. Este protocolo fornece procedimento passo a passo desde a replicação de moldes de poli (dimetilsiloxano) (PDMS) usando um padrão escrito por EBL, até a montagem de vários moldes PDMS em um único molde grande, até a geração de um molde mestre em substratos poliméricos, como poliestireno (PS), até a produção de substratos de trabalho. Com os substratos nanopadronizados expandidos, demonstramos a modulação nanotopográfica do espalhamento celular.
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1. A replicação de PDMS moldes a partir de um molde EBL
2. Costura de PDMS Moldes em um grande, Mold Individual
3. Geração de um molde mestre no PS Substratos
Nota: O molde PDMS costurado imobilizado sobre uma lâmina de vidro pode ser usado para gerar um molde mestre em uma placa de PS ou uma película fina de PS, a partir do qual podem ser produzidos substratos nanopatterned de trabalho.
4. Nanotopographical modulação do comportamento celular
Nota: células epiteliais humanas são cultivadas nas nanotopographies representativos para demonstrar modulação nanotopographical da célula se espalhando.
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A técnica do ponto pode gerar uma grande área de substratos nanopatterned com alta fidelidade. A Figura 1a e 1b exibir a grande área de nanopatterns transferidos a partir do molde PDMS costurada a placa PS e PS película fina sobre um substrato de Si, respectivamente. A comparação entre o molde original é EBL-escrita (Figura 1C) e o PDMS finais de substrato de trabalho (Figura 1D), confirma que os nanopatterns EBL-escrita...
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Nós apresentamos um método simples, acessível, mas versátil para gerar uma grande área de substrato nanopatterned. Para expandir fielmente nanopatterns altamente definidos, grande atenção deve ser dada às várias etapas críticas. O primeiro é para aparar as PDMS vários moldes. unpatterned áreas dos moldes PDMS precisa ser removido. Além disso, as paredes laterais dos moldes deve ser cortada verticalmente perfeito quanto possível para minimizar as diferenças entre os moldes. Colectivamente, a porção de áreas unpatterned n...
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Os autores não têm nada a divulgar.
Este trabalho foi parcialmente apoiado pela NSF CBET 1227766, NSF CBET 1511759 e Byars-Tarnay Endowment. Reconhecemos com gratidão o uso das Instalações de Pesquisa Compartilhada da West Virginia University, que são apoiadas, em parte, pela NSF EPS-1003907.
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| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| JEOL de emissão de campo SEM | JEOL | JSM-7600F | EBL |
| Kurt J. Lesker | Modelo: LAB 18 evaporador de feixe eletrônico | deposição de níquel | |
| Trion Minilock III ICP/RIE | Tecnologia Trion | Modelo: Minilock-phantom III | |
| Máquina de prensa | PHI Prensa Hidráulica | Molde: SQ-230H | |
| Revestidor giratório | Laurell Tecnologias | Modle: WS-400A-6NPP-LITE | |
| CO2 secador crítico | Tousimis | Modle: Autosamdri-815 | |
| Wafer de silício | University Wafer | 1080 | |
| Placas de alumínio | McMaster-carr | 9057K123 | |
| Folhas de teflon | McMaster-carr | 8711K92 | |
| Placa de Petri de 100 mm | FALCON | ||
| Placa de Petri de 60 mm | FALCON | 353004 | |
| Lamínula de vidro | Fisher Scientific | 12-542-B | |
| Corrediça de vidro | Fisher Scientific | 12-550-34 | |
| Barcos de pesagem descartáveis | Fisher Scientific | 13-735-743 | |
| Dessecador de vidro | Fisher Scientific | 02-913-360 | |
| Dessecador de plástico | Bel-Art Products | F42025-000 | |
| Placa de aquecimento | Fisher Scientific | 1110049SH | |
| Pinça Ted Pella, inc. | 5726 | ||
| Lâmina | Fisher Scientific | S17302 | |
| Blocos de metal | McMaster-carr | ||
| Punch | Brettuns Village Leather Craft Supplies Arch | punch | |
| Poli (metacrilato de metila) | MicroChem | 495 PMMA A4 | |
| PDMS | Dow Corning | Sylgard 184 kit | |
| Poliestireno | Dow Chemical | Styron 685D | |
| 1H,1H,2H,2H-perfluorooctilmetildiclorossilano | Oakwood Chemical | 7142 | |
| Desenvolvedor | MicroChem | MIBK/IPA na proporção | |
| Removedor | MicroChem | PG Etanol Fisher | |
| Scientific | BP2818500 | ||
| Tolueno | Fisher Scientific | T324-500 | |
| Solução salina tamponada com fosfato | Sigma Aldrich | D8537 | |
| Dulbecco' s meio de águia modificado | Sigma Aldrich | D5796 | |
| Soro fetal bovino | Atlanta Biologicals | S11550 | |
| Paraformaldeído | Microscopia Eletrônica Ciência | 15712-S | |
| Glutaraldeído | Fisher Chemical | G151-1 | |
| Fibronectina | Corning | 356008 | |
| A549 células | ATCC | ATCC CCL-185 |
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