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Artigo de método

Medindo a endocitose da vesícula sináptica nos neurônios Hippocampal culturas

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DOI:

10.3791/55862

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4 de setembro de 2017

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Neste artigo

Resumo

Endocitose da vesícula sináptica é detectada pela microscopia de luz de pHluorin fundido com proteínas de vesículas sinápticas e por microscopia eletrônica de absorção da vesícula.

Resumo

Durante a endocitose, fundidas vesículas sinápticas são recuperadas em terminais nervosos, permitindo a reciclagem de vesículas e, portanto, a manutenção da transmissão sináptica durante o disparo repetitivo do nervo. Endocitose prejudicada em condições patológicas leva a diminuições em funções sinápticas de força e cérebro. Aqui, descrevemos os métodos utilizados para medir a endocitose da vesícula sináptica na sinapse hippocampal mamífera na cultura neuronal. Temos monitorado endocitose de proteínas de vesícula sináptica pela fusão de uma proteína de membrana vesicular sináptica, incluindo Sinaptofisina e VAMP2/synaptobrevin da, o lado lumenal vesicular, com pHluorin, uma proteína fluorescente verde sensíveis ao pH que aumenta sua intensidade de fluorescência como o pH aumenta. Durante a exocitose, pH do lúmen vesicular aumenta, Considerando que durante o lúmen vesicular endocitose pH é re-acidificado. Assim, um aumento da intensidade de fluorescência pHluorin indica fusão, enquanto uma diminuição indica endocitose da proteína rotulados vesícula sináptica. Além de usar o pHluorin método de imagem para gravar endocitose, temos monitorado endocitose da membrana vesicular por microscopia de elétron (EM) medições de absorção de Horseradish peroxidase (HRP) por vesículas. Finalmente, temos monitorado a formação dos poços de membrana terminal do nervo em vários momentos após a despolarização induzida por potássio alto. O tempo de curso de formação de poço de captação e membrana HRP indica o tempo de curso de endocitose.

Introdução

Os neurotransmissores são armazenados em vesículas sinápticas e liberados por exocitose. A membrana da vesícula sináptica e a proteína são então internalizadas por endocitose e reutilizadas na próxima rodada de exocitose. Endocitose das vesículas sinápticas é importante para a manutenção de piscinas de vesícula sináptica e remove salientes vesículas de membrana plasmática. O pHluorin sensíveis ao pH proteína verde fluorescente, que é saciada em circunstâncias ácidas e dequenched em pH neutro, tem sido usado para medir tempo de endocitose cursos em vivem células1,2,3. A proteí....

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Protocolo

Nota: O seguinte protocolo descreve os métodos de imagem pHluorin e métodos EM neurônios hippocampal culta. pHluorin monitores vesícula sináptica proteína absorção em células vivas e EM detecta a absorção da vesícula sináptica e as alterações ultra-estruturais.

cuidados com animais e procedimento seguiu as diretrizes do NIH e foram aprovados pelo Comitê de uso e cuidados do Animal NIH.

1. pHluorin Imaging

  1. cultura neurônio Hippocampal
    1. preparar hipocampo Buffer (HB) combinando NaHCO 3 de 4 mM e 5 mM HEPES e ajustar o pH 7.3 com 5 M de NaOH. Fazer o meio de cultura mi....

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Resultados

Usando o método de transportadora de lipídios, SpH foi expressa em neurônios hippocampal, permitindo a identificação de boutons (Figura 1a). Estimulação elétrica das células induzidas por exocitose e um correspondente aumento na intensidade de fluorescência. O aumento na fluorescência (ΔF) foi interrompido por encerrar o estímulo (Figura 1b). O aumento da fluorescência foi seguido por uma diminuição lenta, devido a endocitose. No.......

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Discussão

Aqui demonstramos dois métodos para monitorar a endocitose da vesícula sináptica. O primeiro método, temos monitorado pHluorin fundiu-se com uma proteína de vesícula sináptica nos neurônios transfectadas e posteriormente eletricamente estimulado. Em segundo lugar, usamos EM imagem latente de captação HRP como induzida por KCl. Usamos diferentes estímulos por duas razões. Primeiro, aplicação elevada de potássio induz a despolarização dos neurônios todos na cultura. Isso facilita o exame EM, dado que a nossa metodologia EM.......

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Divulgações

Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

Agradecemos o Dr. Yong-Ling Zhu por prevê construção Sinaptofisina-pHluorin2x e Dr. James E. Rothman fornecendo VAMP2-phluorin. Agradecemos o Dr. Susan Cheng e Virginia Crocker da facilidade de microscopia eletrônica de NINDS pelo apoio técnico e ajuda. Este trabalho foi financiado pelo Instituto Nacional de Disorders Neurological e curso Intramural Research Program nos EUA e uma bolsa da KRIBB iniciativa programa de pesquisa (Korean biomédica cientista Fellowship Program), Instituto de pesquisa da Coreia do Biociências e biotecnologia, República da Coreia.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Lipofectamina LTX com PlusThermo Fisher15338-100Transfecção de DNA plasmidial incluindo sinaptofisina ou VAMP2-pHluorin
meio neurobasalThermo Fisher21103-049Meio de crescimento para neurônio, Aqueça até 37° C antes do uso
B27Thermo Fisher17504-044Gradiente para diferenciação neuronal
GlutamaxThermo Fisher35050-061Gradiente para cultura neuronal
lamínula revestida com poli-D-lisinaNeuvitroGG-25-pdlSubstrato para crescimento neuronal e imagem de pHluorina
Tripsina XI do pâncreas bovinoSigmaT1005Neuronal tecidos hipocampais digeridos por cultura
Desoxirribonuclease I do pâncreas bovinoSigmaD5025suspensão de células viscosas
inibiçãoA-M modelo2100Aplicar estimulação elétrica
Banho com fenda com estimulação de campoWarner InstrumentsRC-21BRFS
de isolamento de estímulo de estimulação elétricaWarner InstrumentsSIU102Aplique
lubrificanteDow corning111pHluorin imaging-seal com lamínula e câmara de imagem, evite vazamento da câmara
AP5Tocris3693Gradiente para solução salina normal, antagonista seletivo do receptor NMDA, inibe a atividade pós-sináptica que tem potencial para atividade recorrente
CNQXTocris190Gradiente para solução salina normal, antagonista competitivo do receptor AMPA/cainato, inibe a atividade pós-sináptica que tem potencial para atividade recorrente
IluminadorNikonC-HGFIFonte de luz de iodetos metálicos para câmera pHluorin
EMCCDAndoriXon3imagens de pHluorin, detecção de intensidade de fluorescência pHluorin
Microscopia invertidaNikonTi-EImagiologia para sinaptofisina ou células transfectadas com pHluorina VAMP2
NIS-Elements ARNikonNIS-Elements Software de pesquisa avançadapara aquisição e análise de imagens
Igor ProWaveMetricsIgor proSoftware para análise de imagens e apresentação de dados
câmara de imagemWarner InstrumentsRC21BpHluorin imaging, aplicar estimulação de campo em células vivas
poli-l-lisinaSigmaP4832Microscopia eletrônica, substrato para crescimento neuronal, aplicar em placa multipoços por 1 h à temperatura ambiente e depois lavar com água esterilizada 3 vezes
Peroxidase de rábano (HRP)SigmaP6782Microscopia eletrônica, marcação de vesículas sinápticas endocitadas catalisando DAB na presença de peróxido de hidrogênio, concentração final é de 5 mg / mL em solução salina normal, fazer fresco antes do uso
Cacodilatode NaMicroscopia eletrônica Sciences12300Microscopia eletrônica, tampão para fixadores e lavagem, concentração final é 0,1 N
3,3′-Diaminobenzidina(DAB)SigmaD8001Microscopia eletrônica, marcação de vesículas sinápticas endocitadas, substrato para HRP, concentração final é de 0,5 mg/mL em DDW e filtrada, fazer fresco antes
do uso Solução de peróxido de hidrogênioSigmaH1009Microscopia eletrônica, marcação de vesículas sinápticas endocitadas induzindo a reação HRP-DAB, a concentração final é de 0,3% em DDW, faça fresco antes
de usar glutaraldeídoMicroscopia Eletrônica Ciências16365Microscopia eletrônica, fixadores, concentração final é de 4% em tampão Na-cacodilato, faça fresco antes de usar, agite bem antes de usar
TEMJEOL200CXMicroscopia eletrônica, imagem de vesículas endocitadas e alterações ultraestruturais
Câmera digital CCDAMTXR-100Microscopia eletrônica, captura de imagens
Citrato de chumboLeica microssistemas16707235Microscopia eletrônica, coloração de grade
Estimulador de pulso de com de cultura neuronal Aplicar unidade de estimulação elétrica

Referências

  1. Sankaranarayanan, S., Ryan, T. A. Real-time measurements of vesicle-SNARE recycling in synapses of the central nervous system. Nature cell biol. 2 (4), 197-204 (2000).
  2. Sun, T., Wu, X. S., et al. The role of calc....

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Reimpressões e permissões

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