Aqui nós descrevemos um método para estabelecer um modelo de Zika a microcefalia induzida por vírus no mouse. Este protocolo inclui métodos para inoculação intracerebral embrionária, neonatal e adulto-fase do vírus Zika.
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Artigo de método
Aqui nós descrevemos um método para estabelecer um modelo de Zika a microcefalia induzida por vírus no mouse. Este protocolo inclui métodos para inoculação intracerebral embrionária, neonatal e adulto-fase do vírus Zika.
O vírus Zika (ZIKV) é um flavivirus atualmente endêmica na América do Sul, Central e do Norte. Agora está estabelecido que o ZIKV pode causar microcefalia e anormalidades cerebrais adicionais. No entanto, o mecanismo subjacente a patogênese da ZIKV no cérebro em desenvolvimento permanece obscuro. Intracerebrais métodos cirúrgicos são frequentemente usados em pesquisas de neurociência para responder a perguntas sobre o desenvolvimento normal e anormal do cérebro e a função cerebral. Este protocolo utiliza técnicas cirúrgicas clássicas e descreve os métodos que permitem que um modelo associado a ZIKV humana doença neurológica no sistema nervoso do rato. Enquanto inoculação direta do cérebro não modelar o modo normal de transmissão do vírus, o método permite que os investigadores perguntas específicas relativas a consequência após infecção ZIKV do cérebro em desenvolvimento. Este protocolo descreve estágios embrionários, Neonatais e adultos de inoculação intraventricular de ZIKV. Uma vez dominado, este método pode tornar-se uma técnica simples e reprodutível que leva apenas algumas horas para executar.
Microcefalia é uma condição resultante do desenvolvimento do cérebro defeituoso caracterizado por menor do que o tamanho médio da cabeça em recém-nascidos. Crianças com microcefalia apresentam uma gama de sintomas que podem incluir atraso de desenvolvimento, convulsões, deficiência intelectual, perda de audição, problemas de visão e problemas com movimento e equilíbrio, entre outros, dependendo da gravidade da doença e causa a1,2,3. Esta condição é multifatorial na natureza, com o agente infeccioso, genética e fatores ambientais relacionados ao causar microcefalia
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Todo animal usar protocolos siga as orientações de cuidados com animais da Universidade do Sul da Califórnia e da Universidade da Geórgia. Métodos de eutanásia para barragens grávidas e adultos são executados de acordo com protocolos aprovados: asfixia de dióxido de carbono, seguida por deslocamento cervical como um método secundário para garantir a eutanásia. Filhotes neonatais são sacrificados por decapitação.
Atenção: O seguinte protocolo envolve lidar com um vírus patogênico. Precaução adequada deve ser tomada durante a manipulação do vírus. Todos os protocolos devem ser aprovados por prévia Comissão institucional adequado para usar.
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Imagens representativas de nossos métodos de injeção para a inoculação de ZIKV do cérebro embrionário são mostradas em diagramas com injeções intracerebrais (figura 1A) e intra-uterina e injeções de intraplacental (figura 1B), ilustrando a maneira a barragem grávida e embriões devem ser vistos e orientados para a cirurgia (protocolo de inoculação embrionárias). Figura 2A apresenta infecção ZIKV (MEX1.......
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Descrito aqui é um método de inoculação intracerebral do ZIKV em fases embrionárias, Neonatais e adultos para a investigação de danos ZIKV-induzida no desenvolvimento do cérebro. Embora simples, há algumas considerações que os investigadores devem tomar para garantir a qualidade do estudo e a segurança dos envolvidos.
DENV está intimamente relacionado com a ZIKV do gênero flavivirus. DENV não tem sido associada causalmente com desordens cerebrais pediátricos nos seres humanos. DENV2 com êxito .......
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Os autores não têm nada para divulgar.
Os autores gostaria de reconhecer o Dr. Abdellatif Benraiss na Universidade de Rochester para sua orientação e discussões relevantes para a aprendizagem do adulto cirúrgico e técnicas em recém-nascidos. Os autores também gostaria de reconhecer o Dr. James Lauderdale na UGA para o uso de seus equipamentos estereotáxicos e discussões relacionadas a criação de metodologia para esta técnica e o avanço para a Fundação de pesquisa faculdade cientistas (arcos) para sua suporte e apoio ao NIH (NINDS concede R01NS096176-02, 01-R01NS097231, & F99NS105187-01).
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| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| Eixo de transmissão flexível Broca Suspensão Motor | Leica | 39416001 | |
| Mouse Stereotax | Kopf | 04557R | |
| Micro4 Microsseringa Controlador de bomba | WPI | SYS-MICRO4 | |
| UMP3 UltraMicroPump | WPI | UMP3 | |
| Modulamp Tubulação | |||
| (calibre 19) | Hamilton | 90619 | |
| Ponto de fusão capilar | Kimble | 34500-99 | Agulha de vidro |
| Fluoro-Max: Microesferas fluorescentes vermelhas | Thermo Scientific | R25 | Sem diluição; Use para prática de injeções |
| 10 µ L, Modelo 1701 LT SYR | Hamilton | 80001 | para inoculação embrionária |
| 10 µ L, Modelo 1701 RN SYR, Pequeno NDL Removível, 26s ga, 2 pol, estilo de ponta 2 | Hamilton | 80030 | para recém-nascido/adulto |
| 4-0 Suturas de Nylon | Etônico-Óleo | ||
| Mineral | VWR | de | |
| micropipetas | Sutter Instruments | P-1000 | |
| Micropipeta Grinder | Narishige | EG-44 | |
| Fastgreen FCF Dye | Sigma | F7252 | injeta com 0,5% < anticorpos > corante |
| anticorpo de antígeno do grupo Flavivirus | Millipore | MAB10216 | ms IgG2a 1:400 (Figura 2, Figura 3) |
| Pax6 | DBHB | Pax6-s | ms IgG1 1:20 |
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