Summary
В этой статье подробно использование якорь мультиплекс полимеразы цепи реакции на основе библиотеки подготовки комплекта следуют следующего поколения секвенирования для оценки онкогенных синтезов генов в клинических твердых образцов опухоли. Описаны как шаги по анализу влажной скамейки, так и для анализа данных.
Abstract
Слияния генов часто способствуют онкогенному фенотипу многих различных видов рака. Кроме того, наличие определенных сплавов в образцах больных раком часто непосредственно влияет на диагностику, прогноз и/или выбор терапии. В результате, точное обнаружение слияний генов стало важнейшим компонентом клинического управления для многих типов заболеваний. До недавнего времени клиническое обнаружение синтеза генов осуществлялось преимущественно за счет использования одногенных анализов. Однако постоянно растущий список генных слияний с клиническим значением создал необходимость одновременной оценки состояния синтеза нескольких генов. Следующее поколение секвенирования (NGS) на основе тестирования удовлетворяет этот спрос за счет способности последовательности нуклеиновой кислоты в массово параллельной моды. Несколько NGS-подходов, использующих различные стратегии для обогащения генов, теперь доступны для использования в клинической молекулярной диагностике, каждый из которых имеет свои сильные и слабые стороны. В этой статье описывается использование якорного мультиплекса ПЦР (AMP) на основе целевого обогащения и подготовки библиотеки следуют NGS для оценки синтеза генов в клинических твердых образцов опухоли. AMP является уникальным среди ампрона основе обогащения подходов в том, что он определяет слияния генов, независимо от личности партнера слияния. Подробно здесь представлены как шаги по анализу влажной скамейки, так и для анализа данных, которые обеспечивают точное обнаружение синтеза генов из клинических образцов.
Introduction
Слияние двух или более генов в одну транскрипционную сущность может произойти в результате крупномасштабных хромосомных вариаций, включая удаления, дублирование, вставки, инверсии и транслокации. Благодаря измененному транскрипционному контролю и/или измененным функциональным свойствам выраженного генногопродукта эти гены синтеза могут придать онкологическим свойствам раковые клетки 1. Во многих случаях, синтез генов, как известно, выступать в качестве основных онкогенных драйверов путем непосредственной активации клеточной пролиферации и путей выживания.
Клиническая актуальность синтезов генов для онкологических больных впервые стала очевидной с открытием филадельфийской хромосомы и соответствующего гена синтеза BCR-ABL1 при хроническом миелоидном лейкозе (ХМЛ)2. Небольшой ингибитор молекулы imatinib мезилат был разработан специально для целевой этот ген синтеза и продемонстрировали замечательную эффективность в BCR-ABL1-положительныхпациентов CML3. Терапевтическая таргетинг онкогенных синтезов генов также был успешным в твердых опухолей, с ингибированием ALK и ROS1 синтеза генов в немелкоклеточного рака легких, выступающей в качестве основных примеров4,5. Недавно ингибитор NTRK larotrectinib был одобрен FDA для NTRK1/2/3 синтеза положительных твердых опухолей, независимо от болезни сайта6. Помимо выбора терапии, обнаружение синтеза генов также играет роль в диагностике и прогнозе заболевания. Это особенно распространено в различных саркома и гематологические злокачественные подтипы, которые диагностически определяется наличием конкретных слияний и / или для которых наличие синтеза непосредственно информирует прогноз7,8 , 9 До 9 , 10 Лет , 11. Это лишь некоторые из примеров клинического применения обнаружения синтеза генов для онкологических больных.
Из-за важной роли в принятии клинических решений, точное обнаружение синтеза генов из клинических образцов имеет жизненно важное значение. Многочисленные методы были применены в клинических лабораториях для синтеза или хромосомных анализ овранговых реаний, включая: цитогенетические методы, обратная транскрипция полимеразной цепной реакции (RT-PCR), флуоресценция на месте гибридизации (FISH), иммуногистохимии (IHC), и 5'/3'анализ дисбаланса выражения (среди прочих)12,13,14,15. В настоящее время быстро расширяющийся список действенных слияний генов при раке привел к необходимости одновременного оценки состояния синтеза нескольких генов. Следовательно, некоторые традиционные методы, которые могут задать запрос только один или несколько генов в то время, становятся неэффективными подходами, особенно если учесть, что клинические образцы опухоли часто очень конечны и не поддаются быть разделены между несколькими анализами. Последовательное ирование нового поколения (NGS), однако, является аналитической платформой, которая хорошо подходит для тестирования нескольких генов, и NGS-анализы стали распространены в клинических молекулярно-диагностических лабораториях.
В настоящее время используемые NGS анализы для слияния / перестановки обнаружения варьируются в отношении входной материал используется, химии, используемые для подготовки библиотеки и целевого обогащения, и количество генов, запрошенных в рамках расследования. NGS анализы могут быть основаны на РНК или ДНК (или оба) извлечены из образца. Хотя анализ на основе РНК препятствует тенденция клинических образцов содержать сильно деградировали РНК, он обходит необходимость последовательности больших и часто повторяющихся интронов, которые являются целями ДНК-тестирования синтеза, но оказались трудными для NGS анализ данных16. Стратегии целевого обогащения для анализов NGS на основе РНК можно в значительной степени разделить на гибридные подходы захвата или ампромнонов. Хотя обе стратегии были успешно использованы для обнаружения синтеза, каждая из них содержит преимущества по сравнению с другими17,18. Гибридные анализы захвата обычно приводят к более сложным библиотекам и уменьшенному аллелинческому отсеву, в то время как анализы на основе ампииконов обычно требуют более низкого ввода и приводят к меньшему секвенированию19. Однако, возможно, основным ограничением традиционного обогащения на основе ампииконов является потребность в грунтовки для всех известных партнеров по слиянию. Это проблематично, так как многие клинически важные гены, как известно, сливается с десятками различных партнеров, и даже если грунтовка дизайн позволил для обнаружения всех известных партнеров, новые события синтеза останется незамеченным. Недавно описанный метод называется якорь мультиплекс PCR (или AMP для краткости) адреса этого ограничения20. В AMP ,полуфункциональный" адаптер NGS привязываются к фрагментам кДНК, полученным из входной РНК. Целевое обогащение достигается за счет усиления между генными грунтовками и грунтовкой для адаптера. В результате, все слияния с генами, представляющими интерес, даже если речь идет о новом партнере по слиянию, должны быть обнаружены (см. рисунок1). В этой статье описывается использование комплекта АрчерDx FusionPlex Solid Tumor, ngS-аналитического комитета, который использует AMP для целевого обогащения и подготовки библиотеки, для обнаружения онкогенных синтезов генов в твердых образцах опухолей (см. Дополнительную таблицу 1 для полный список генов). Протокол с мокрой скамейкой и шаги по анализу данных были тщательно проверены в сертифицированной лаборатории по улучшению клинической лаборатории (CLIA).
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. Подготовка и секвенирование библиотеки
- Общие соображения ассеимного ассеиона и предатлеть шагов
- Ассаи работает, как правило, состоят из семи клинических образцов и один положительный контроль (хотя количество образцов на библиотеку подготовки перспективе могут быть скорректированы по мере необходимости). Используйте положительный контроль, который содержит по крайней мере несколько синтезов генов (что цель исследования), которые были подтверждены производителем и / или были подтверждены ортогоналметодологии. Нешаблонный контроль (NTC) должен быть включен в качестве дополнительного образца в каждом запуске анализа, но осуществляется только через второй синтез кДНя и предварительное секвенирование контроля качества (Pre-Seq КК; для обеспечения отсутствия синтеза кДНК). Используйте образец разбавителя (10 мМ Tris HCl pH 8.0) для NTC.
- Выполните полную нуклеиновой кислоты (ТНА) экстракции формилина-фиксированной парафин-встроенных (FFPE) ткани.
- Количественное измерение компонента РНК TNA с помощью флюорометрического асссе.
ПРИМЕЧАНИЕ: Предотвращение деградации РНК в образцах путем ограничения циклов замораживания оттепели, сохраняя оттаять нуклеиновой кислоты при низкой температуре (охлажденный блок, лед, или альтернатива), и предотвращение загрязнения RNase (ношение перчаток, с использованием распылителя RNase спрей).
- Случайная грунтовка
ПРИМЕЧАНИЕ: Необходимый вход для ассея составляет 200 нг РНК (на основе флюорометрической количественной оценки TNA). Более низкие входы могут быть использованы, если 200 нг не может быть достигнуто. Если выборка не удается после секвенирования КК, повторение с более высоким вхожском может привести к приемлемым кон-метрики КК.- Разбавить TNA в 10 мм Tris HCl pH 8.0 для достижения желаемой концентрации РНК. Для каждого образца, передача 20 qL разбавления в случайных грунтовки реагентов полосы труб (помещаются в предварительно охлажденный алюминиевый блок) и перемешать путем пипетки вверх и вниз 6-8 раз. Кратко спина вниз и передать весь объем 96 хорошо ПЦР пластины и печать с RT пленки.
- Вставьте тарелку в блок термоциклора, накройте компрессионной площадкой и закройте крышкой. Инкубировать при 65 градусах по Цельсию в течение 5 мин (нагретая крышка).
- Снимите тарелку с термоциклоза и поместите на лед на 2 мин.
- Первый синтез пряди кДНК
- Перенесите весь объем случайного грунтового продукта в первые прокладки реагента (помещены в предварительно охлажденный алюминиевый блок). Смешайте путем pipetting вверх и вниз 6'8 раз. Кратко спина вниз, передача всего объема на 96 хорошо ПЦР пластины и печать с RT пленки.
- Вставьте тарелку в блок термоциклора, накройте компрессионной площадкой и закройте крышкой. Запуск программы термоциклоза: 25 градусов по Цельсию 10 мин, 42 КК 30 мин, 80 c 20 мин, 4 C держать (нагретая крышка).
- Второй синтез кДНК
- В новом наборе пЦР полосы труб, создать 1:10 разбавления первой нити продукта, добавив 1 злицы первого продукта пряди до 9 Л л нуклеаза свободной воды. Установите разбавления в сторону, которые будут использоваться в предварительном Seq КК асссе.
- Добавьте 21 злну безнужной воды к оставшемуся первому продукту пряди. Передача 40 л первой нити продукта и нуклеаза свободной воды на вторую нить реагента полосы трубки (размещенные в предварительно охлажденной алюминиевой блока). Смешайте путем pipetting вверх и вниз 6'8 раз. Спин вниз, передать весь объем 96 хорошо ПЦР пластины и печать с RT пленки.
- Вставьте тарелку в блок термоциклора, накройте компрессионной площадкой и закройте крышкой. Запуск программы термоциклоза: 16 градусов по Цельсию 60 мин, 75 кв 20 мин, 4 C держать (нагретая крышка).
ПРИМЕЧАНИЕ: Это приемлемая точка остановки. Пластина может храниться при -20 градусах Цельсия.
- До-Сек КК
ПРИМЕЧАНИЕ: Этот контроль качества (КК) анализ используется в первую очередь для проверки синтеза кДНК из NTC. Тем не менее, данные также могут быть информативными в анализе устранения неполадок. Например, если образец имеет хорошее значение Pre-Seq, но плохое значение анализов (см. ниже), то это может быть признаком проблемы в запуске ассе, что требует повторения.- Запустите каждый образец и NTC в дубликате. Кроме того, включите в Pre-Seq КК запустить реакцию NTC, который является nuclease свободной воды (также запустить в дубликат). К каждой применимой скважине из оптической пластины 96 скважин добавьте 5 qL мастер-микса асссея, 1 зл 10x праймера VCP и 4 Зл 1:10 разбавления первого продукта пряди, который был создан в шаге 1.4.1.
- Печать пластины с RT пленки, спина вниз, и загрузить в количественный инструмент ПЦР (qPCR). Выполнить программу: предварительный усилитель: 1 цикл 95 C 20 s, усилитель: 35 циклов 95 C 3 s (4.4 C/s рампа скорость) - 60 C 30 s (2.2 C/s скорость пандуса).
- Подтвердите отсутствие значения цикла (Ct) как для асссеа NTC, так и для реакции NTC.
ПРИМЕЧАНИЕ: Если нет Ct наблюдается в проверке NTC он больше не будет осуществляться вперед в ассе. Наблюдение значения Ct в реакции NTC требует повторения предварительного Seq КК анализ. Наблюдение Ct в анализе NTC предполагает, что загрязнение образца в какой-то момент до в анализе, таким образом, требуя, чтобы весь анализ (все образцы) был начат за. Значение Pre-Seq КК Ct для адекватной выборки качества должно быть ниже 30 (более низкие значения Ct коррелируют с большим количеством продукта и, следовательно, более высоким качеством РНК). Значения выше 30 не являются абсолютными показателями отказа, и эти выборки должны быть продолжены в анализе. Однако все данные, полученные из таких выборок, должны быть тщательно изучены, особенно в тех случаях, когда не называется слияние.
- Окончание ремонта и очистки биса
- Передача 40 qL второго продукта пряди в конечный ремонт реагента полосы трубки (размещенные в предварительно охлажденной алюминиевой блок). Смешайте трубача вверх и вниз 6-8 раз, спина вниз и место в термоциклблок (сохраняя нагретую крышку открытой) и запустить программу термоциклора: 25 градусов по Цельсию 30 мин, 4 C держать.
- Снимите очищенные бусы от 4 градусов по Цельсию и дайте уравновесить до комнатной температуры. Составляют достаточно 70% этанола, чтобы прослужить всю подготовку библиотеки. Вортекс бусы задолго до использования и пипетка 100 л в соответствующее количество скважин U-нижней пластины.
ПРИМЕЧАНИЕ: Для каждого 8 образцов, которые работают, 20 мл 70% этанола будет необходимо. - Добавьте весь объем конечного ремонта продукта к бисеру. Пипетка вверх и вниз 6-8 раз, чтобы смешать и инкубировать при комнатной температуре в течение 5 минут, а затем 5-минутный инкубации на магните.
- Удалите и отбросьте супернатант и выполнить два 200 ЗЛ 70% этанола с 30-х инкубаций. После окончательной стирки удалите все 70% этанола и дайте воздуху высохнуть в течение 5 мин.
- Удалить из магнита и повторно приостановить бисер в 22 зл и 10 мм Tris HCl рН 8.0. Инкубировать от магнита в течение 3 мин с последующим 2-минутной инкубации на магните. Немедленно приступайке к этапу перевязки 1.
- Этап лиги 1 и очищение бисовой бытия
- Передача 20 Зл от конца ремонта бисовой пластины очистки (заботясь, чтобы не беспокоить гранулы биса) в перевязочный шаг 1 полосы труб (размещенных в предварительно охлажденный алюминиевый блок). Смешайте путем pipetting вверх и вниз 6-8 раз, спина вниз и передать весь объем в 96 хорошо ПЦР пластины.
- Вставьте тарелку в блок термоциклора, накройте компрессионной площадкой и закройте крышкой. Запуск программы термоциклоза: 37 градусов по Цельсию 15 мин, 4 c держать (нагретая крышка).
- Снимите очищенные бусы от 4 градусов по Цельсию и дайте уравновесить до комнатной температуры. Вортекс бусы задолго до использования и пайпет 50 зл в соответствующее количество скважин U-нижней пластины.
- Добавьте весь объем перевязки шаг 1 продукт бисера. Пипетка вверх и вниз 6-8 раз, чтобы смешать и инкубировать при комнатной температуре в течение 5 минут, а затем 5-минутный инкубации на магните.
- Удалите и отбросьте супернатант и выполнить два 200 ЗЛ 70% этанола с 30-х инкубаций. После окончательной стирки удалите все 70% этанола и дайте воздуху высохнуть в течение 5 мин.
- Удалить из магнита и повторно приостановить бисер в 42 зл и 10 мм Tris HCl рН 8.0. Инкубировать от магнита в течение 3 мин с последующим 2-минутной инкубации на магните. Немедленно приступайке к этапу перевязки 2.
- Этап лигации 2 и очищение бисовой бытия
- Удалите молекулярный штрих-код (MBC) адаптер полосы трубки реагентов из 4 кВ хранения. Правильная нумерование полосы адаптера MBC имеет решающее значение, поскольку на данном этапе добавляются конкретные индексы. Расположите трубки горизонтально с шарнирами на спине и использовать постоянный маркер для обозначения труб 1, 2, 3... слева направо. Также важно записывать конкретные индексы для последовательности (они должны быть введены в лист секвенсоров).
- Передача 40 qL от перевязки шаг 1 пластины очистки бисера (заботясь, чтобы не беспокоить бисером гранулы) в MBC адаптер полосы труб (размещенных в предварительно охлажденной алюминиевой блока). Смешайте путем pipetting вверх и вниз 6'8 раз.
- Спин вниз и передать весь объем на перевязочный шаг 2 реагента полосы труб (также помещается в предварительно охлажденной алюминиевой блок). Смешайте трубачи вверх и вниз 6-8 раз, спина вниз и место в термоциклблок. С нагретой крышкой побежка программа thermocycler: 22 c 5 min, 4 c держат.
ПРИМЕЧАНИЕ: Это безопасная остановка, и образцы могут храниться при -20 градусов по Цельсию. - Снимите шарики очистки перевязки из 4-c хранения и дайте уравновесить до комнатной температуры. Приготовьте 1 мл свежего 5 мМ НаОХ.
- Vortex перевязки очистки шарики и добавить 50 зл и добавить 50 зл. Инкубировать на магните 1 мин. После 1-минутной инкубации удалите и отбросьте супернатант. Удалите полоски труб из магнита и повторно приостановить в 50 зл перевязочных очистки буфера путем pipetting вверх и вниз 6-8 раз.
- Перенесите весь объем перевязки шага 2 продукта в перевязки очистки бисовые полосы труб. Смешайте образцы путем вихря и инкубировать при комнатной температуре в течение 5 мин. Опять же, смешать образцы путем вихря и инкубировать при комнатной температуре еще 5 мин. После второй 5-минутной инкубации смешайте образцы путем вихря, ненадолго раскрутитесь и инкубируете на магните 1 мин.
- Удалите и отбросьте супернатант. Добавьте 200 юаней буфера очистки перевязок и вихря, чтобы повторно приостановить. Выполните быстрый спин и место на магнит в течение 1 мин. Выполните вторую стирку с помощью буфера очистки перевязки снова.
- После двух моет с перевязкой очистки буфера выполнять идентичные мыть с помощью ультрачистой воды. После ультрачистой воды мыть повторно приостановить бисера в 20 мЛ 5 мМ NaOH и передачи на 96 хорошо ПЦР пластины. Поместите пластину в блок термоциклора с компрессионной колодкой и запустите программу термоциклоза: 75 градусов по Цельсию 10 мин, 4 кв.с.
- Спин вниз пЦР пластины, как только образцы остыли до 4 градусов по Цельсию. Поместите пластину на магнит, по крайней мере 3 мин и немедленно перейти к первому ПЦР.
- Первая очистка ПЦР и бисера
- Удалите первые прокладки реагента ПЦР из 4-C хранения и поместите в предварительно охлажденный алюминиевый блок. Кроме того, удалите грунтовки GSP1 от -20 градусов по Цельсию и дайте уравновесить до комнатной температуры.
- Добавьте 2 Зл из грунтовков GSP1 к каждой скважине первых трубок полоски реагента ПЦР. Перенесите 18 qL продукта очистки перевязки 2 в первые прокладки реагентов ПЦР и смешайте путем трубопроката вверх и вниз в 6-8 раз.
- Спин вниз и передачи на 96 хорошо ПЦР пластины. Поместите пластину в блок термоциклора с компрессионной колодкой и запустите программу термоциклов: 95 градусов по Цельсию 3 мин, 15 циклов 95 градусов по Цельсию 30 с и 65 градусов по Цельсию 5 мин (100% скорость рампы), 72 КК 3 мин, 4 c hold (нагретая крышка).
ПРИМЕЧАНИЕ: Это безопасная остановка, и образцы могут храниться при 4 градусах Цельсия на ночь или при -20 градусов по Цельсию для длительного хранения. - Снимите очищенные бусы от 4 градусов по Цельсию и дайте уравновесить до комнатной температуры. Вортекс бусы задолго до использования и пипетка 24 л в соответствующее количество скважин U-нижней пластины.
- Передача 20 зл и рюмк первого ПЦР на 24 л бусин. Пипетка вверх и вниз 6-8 раз, чтобы смешать и инкубировать при комнатной температуре в течение 5 минут, а затем 2-минутный инкубации на магните.
- Удалите и отбросьте супернатант и выполнить два 200 ЗЛ 70% этанола с 30-х инкубаций. После окончательной стирки удалите все 70% этанола и дайте воздуху высохнуть в течение 2 мин.
- Удалить из магнита и повторно приостановить бисер в 24 зл и 10 мм Tris HCl рН 8.0. Инкубировать от магнита в течение 3 мин с последующим 2-минутной инкубации на магните. Немедленно приступай ко второму ПЦР.
- Второе очищение ПЦР и бисера
- Удалите второй РЦП реагента полосы труб от 4 КС и поместите в предварительно охлажденный алюминиевый блок. Правильная нумерование второй прокладки ПЦР критически важна, поскольку на данном этапе добавляются конкретные индексы. Расположите трубки горизонтально с шарнирами на спине и использовать постоянный маркер для обозначения труб 1, 2, 3... слева направо. Кроме того, удалите грунтовки GSP2 от -20 градусов по Цельсию и дайте уравновесить до комнатной температуры.
ПРИМЕЧАНИЕ: Также важно записывать конкретные индексы для последовательности (они должны быть введены в лист секвенсоров). - Добавьте 2 Зл из грунтовки GSP2 к каждой скважине второго прокладки реагента ПЦР. Перенесите 18 qL первого продукта очистки ПЦР на второй прокладки реагентов ПЦР и смешайте путем трубопроката вверх и вниз в 6-8 раз.
- Спин вниз и передачи на 96 хорошо ПЦР пластины. Поместите тарелку в блок термоциклора с компрессионной площадкой и запустите программу термоциклов: 95 градусов по Цельсию 3 мин, 18 циклов 95 градусов по Цельсию 30 с и 65 градусов по Цельсию 5 мин (100% скорость рампы), 72 кв 3 мин, 4 c hold (нагретая крышка).
ПРИМЕЧАНИЕ: Это безопасная остановка, и образцы могут храниться при 4 градусах Цельсия на ночь или при -20 градусов по Цельсию для длительного хранения. - Снимите очищенные бусы от 4 градусов по Цельсию и дайте уравновесить до комнатной температуры. Вортекс бусы задолго до использования и пипетка 24 л в соответствующее количество скважин U-нижней пластины.
- Перенесите 20 зл второго пЦР-продукта в бисер. Пипетка вверх и вниз 6-8 раз, чтобы смешать и инкубировать при комнатной температуре в течение 5 минут, а затем 2-минутный инкубации на магните.
- Удалите и отбросьте супернатант и выполнить два 200 ЗЛ 70% этанола с 30-х инкубаций. После окончательной стирки удалите все 70% этанола и дайте воздуху высохнуть в течение 2 мин.
- Удалить из магнита и повторно приостановить бисер в 24 зл и 10 мм Tris HCl рН 8.0. Инкубировать от магнита в течение 3 мин с последующим 2-минутной инкубации на магните. Передача 20 злицита второго продукта очистки ПЦР на новую пластину ПЦР 96 скважин.
ПРИМЕЧАНИЕ: Это безопасная остановка, и библиотеки могут храниться при -20 градусов по Цельсию для долгосрочного хранения или немедленно переходить к количественной оценке библиотеки.
- Удалите второй РЦП реагента полосы труб от 4 КС и поместите в предварительно охлажденный алюминиевый блок. Правильная нумерование второй прокладки ПЦР критически важна, поскольку на данном этапе добавляются конкретные индексы. Расположите трубки горизонтально с шарнирами на спине и использовать постоянный маркер для обозначения труб 1, 2, 3... слева направо. Кроме того, удалите грунтовки GSP2 от -20 градусов по Цельсию и дайте уравновесить до комнатной температуры.
- Библиотека количественной оценки
- Удалите мастер-микс и стандарты библиотечной квантитии из -20 градусов по Цельсию и дайте уравновесить до комнатной температуры.
- Выполните 1:5 разбавления всех библиотек (второй продукт PCR) с использованием 10 мм Tris HCl pH 8.0 с последующим серийным разбавлением 1:199, 1:199 и 20:80 с помощью 10 мМ Tris HCl pH 8.0 0.05% полисорбата. Окончательные два разбавления 1:200,000 и 1:1,000,000 соответственно будут запущены в тройном.
- Добавьте 6 qL мастер-микски к каждой скважине из оптической пластины 96 скважин, за которой следует 4 Зл соответствующего разбавления или стандарта. Скрутите тарелку и загрузите ее на инструмент qPCR. Используйте следующие условия езды на велосипеде: 1 цикл 95 градусов по Цельсию 5 мин, 35 циклов 95 градусов по Цельсию 30 с (4,4 градуса по Цельсию/с) и 60 градусов по Цельсию 45 с (2,2 градуса по Цельсию/с скорости рампы).
- После завершения количественной оценки библиотеки и определения концентрации библиотеки (через усреднение обоих проверенных разбавлений) нормализуют все библиотеки до 2 нм с помощью 10 mM Tris HCl pH 8.0. Сделайте библиотечный пул, объединив 10 юл каждой нормализованной библиотеки в одну микроцентрифужную трубку мощностью 1,5 мл.
- Секвенирование библиотек
- Удалите ревагентный картридж секвенсора с -20 градусов по Цельсию и поместите в деионизированную (DI) воду до линии заливки не менее 1 ч. Кроме того, удалить набор реагентов секвенсорота от 4 кВ и позволить уравновесить до комнатной температуры, по крайней мере 1 ч. Максимальное количество библиотек, которые могут быть секвенированы на этой платформе секвенирования, составляет 8 (одна из которых должна быть положительным контролем).
- Сделайте бассейн библиотеки денатурированных ампликонов (DAL), объединив 10 зл и пул библиотеки с 10 злитровых 0,2 N NaOH и инкубируя в течение 5 минут при комнатной температуре. После 5-мин инкубации добавить 10 зл 200 мм Tris HCl pH 7.0, а затем 970 л буфера гибридизации HT1.
- Сделать окончательную трубку нагрузки, объединив 300 л HT1, 25 л 20 pM PhiX и 675 л пула DAL. Вихрь и спина вниз нагрузки трубки. Добавить весь объем нагрузки трубки в образец хорошо ревагента ревагента секвенсор и загрузки картриджа в секвенсор работает 2 х 151 bp читает с 2 х 8 индекс читает.
2. Анализ данных
- Секвенирование обработки и анализа данных
- Скачать метрика секвенирования с инструмента NGS.
- Убедитесь, что данные секвенирования попадают в нижеприведенные диапазоны (специфический для набора, используемого в данном примере). Плотность кластера (плотность К/мм2х): 945-1600 К; % считывает проходящий фильтр (кластеры PF (%): оценки качества (% 30 фунтов): Выравнивание PhiX (выровнено%%): 1,5–6,0%; Частота ошибок PhiX (коэффициент ошибок (%): lt;1.0%; читает проходной фильтр (читает ПФ «М»): «Gt;22 миллиона.
ПРИМЕЧАНИЕ: Секвенирование выполняет не соответствует этим показателям могут повторяться. - Просмотрите % считывателей, приписываемых каждому образцу (т.е. каждый конкретный индекс выборки). Для типичного запуска, в котором PhiX шип-в был 5% и 8 образцов были секвенированы, каждый образец должен в идеале приходится примерно 11,9% считывания. Приемлемый диапазон для каждой выборки составляет 5–25%. Если какие-либо образцы не вписываются в этот диапазон, повторите количественную оценку библиотеки и секвенирование.
- Представление необработанных данных последовательности в алгоритм анализа
ПРИМЕЧАНИЕ: Версия 4.1.1.7 анализа ArcherDx описана здесь. В этом примере программное обеспечение для анализа развертывается как «виртуальная машина», работана на внутреннем сервере. Для каждого образца для одновременного анализа требуется одно центральное блок обработки (CPU) и 12 ГБ случайной памяти доступа (RAM). Обработка обычно занимает 3–8 ч.- Используйте настройки анализа по умолчанию в системе анализа, за исключением MIN-AVERAGE-УНИКЕ-РНК-СТАРТ-СИТС-ПЕР-ВСП2-КОНТРОЛС (это изменено с 10 до 20) и READ-DEPTH-NORMALIZATION (это установлено на 0, чтобы предотвратить вниз выборки).
- Чтобы начать работу по анализу, нажмите на Perform Analysis в пользовательском интерфейсе, отправьте имя для задания, а затем выберите необходимые файлы FAST (гарантируя, что оба читает «R1 и R2» будут выбраны для каждого образца).
- Выберите RNA Fusion для типов анализа РНК, Illumina (в паре) для платформы, и FusionPlex твердая группа опухолей для целевого региона. Затем нажмите на Submit Анализ.
- Интерпретация данных анализа
- Откройте пользовательский интерфейс системы анализа и выберите нужное задание. Выберите положительный контрольный образец. Убедитесь, что все ожидаемые синтезы и онкогенные изоформы были обнаружены и перечислены во вкладке Сильные доказательства.
ПРИМЕЧАНИЕ: Если какой-либо из гусеничных слияний в положительном контроле не обнаружен для заданного запуска асссе, это может быть признаком проблемы в этом запуске, что требует повторения (с начала проверки). - Изучите статистику чтения для каждого клинического образца в перспективе, нажав на вкладку «Статистика чтения». Каждый образец должен быть представлен не менее чем 1 миллионом фрагментов. Если меньше 1 миллиона, повторно последовательность библиотеки с соображениями для повторной количественной оценки для обеспечения первоначальной количественной не был аберрантно высоким.
ПРИМЕЧАНИЕ: Хорошее качество образцов, как правило, отображаются на целевой % йgt;85%, и РНК Молекулярная бинов должно быть йgt;20000 и составляют йgt;30% от читает. Однако несоблюдение этих показателей не приводит к автоматическому сбою образца. - Проинспектировать средние уникальные стартовые сайты на значение управления GSP2.
ПРИМЕЧАНИЕ: Это значение является мерой последовательности сложности от грунтовки до четырех генов домашнего хозяйства. Эта метрика является критическим фактором качества РНК в образце (если секвенирование генов, как ожидается, будет выражено в образце, является плохим, то уверенность в способности обнаружить выраженный синтез генов является низкой). Отсечение для этой метрики составляет 20. Если какой-либо образец отображает значение менее 20, то результаты для выборки должны быть сообщены как неинформативные, если не найдено слияние с высоким уровнем достоверности. Состояние этой метрики также может быть определено на сводной странице запуска (статус будет указан как Fusion КК: Pass или Fusion КК: Количество уникальных САЙТОВ запуска УПРАВЛЕНИЯ РНК GSP2 Низкий в зависимости от того, значение больше или меньше, чем 20). Высокое слияние доверия в выборке, которая не прошла эту метрику КК, все еще может быть сообщено, если она определена как реальная (см. ниже). Как правило, более высокие баллы КК с помощью этой метрики коррелируют с более низкими оценками PreSeq Ct, как и ожидалось(рисунок 2).
- Откройте пользовательский интерфейс системы анализа и выберите нужное задание. Выберите положительный контрольный образец. Убедитесь, что все ожидаемые синтезы и онкогенные изоформы были обнаружены и перечислены во вкладке Сильные доказательства.
- Интерпретация вызова Fusion
- Тщательно изучить каждый называется слияние под вкладкой Сильные доказательства (большинство сильных доказательств слияний называется системой являются артефактными). Кроме того, сканировать слабые доказательства слияния бен, хотя наличие не-артефактного слияния в этом бункере является чрезвычайно редким событием. Чтобы оценить достоверность слияния, сначала обратите внимание на метрики чтения (я/%), и стартовые сайты.
ПРИМЕЧАНИЕ: Как правило, уверенность в так называемом слиянии увеличивается выше эти метрики. Сплавы, которые поддерживаются менее чем 5 стартовыми площадками и менее чем 10% считывающихся сотнюров из опорной грунтовки, следует рассматривать как весьма подозрительные как артефактные. - Обратите внимание на значки, отображаемые в столбце Фильтров.
ПРИМЕЧАНИЕ: Некоторые из этих значков предупреждают пользователя о потенциальном источнике артефактного вызова. Частые среди них (и в первую очередь найти в слабых доказательств бен называется слияний) являются случаи, когда партнеры известны паралоги или показать сходство друг с другом в последовательности (с указанием вероятно неправильной грунтовки или ошибочное выравнивание). Другой распространенный источник артефактных вызовов синтеза возникает, когда считывания, поддерживающие слияние, содержат высокую частоту ошибок, что свидетельствует о плохом отображении эталонного генома, и это связано с отчетливым значком. Транскрипционные события чтения идентифицируются через другой значок. Они являются общими и, как правило, игнорируются. Несколько других значков также используются в пользовательском интерфейсе, но полное описание всего выходит за рамки этой статьи. Общие артефакты, которые обычно могут быть проигнорированы без дальнейшего расследования включают в себя: ADCK4-NUMBL, SYN2-PPARG, DGKG-ETV5, ETV6-AXL, ETV1-ERG, ETV4-ETV1, FGFR3-PDGFRB, EGFR-NTRK1, RAF1-RET, ALK-TFEB, NOTCH1-RET, RELA-RET, NTRK3-ALK, BRAF-ADAM и FCGR2C-MAST. - Визуализируйте поддержку читает для каждого потенциального слияния, нажав на ссылку Visualize в пользовательском интерфейсе, который принимает пользователя к веб-jBrowse зрения pileups отдельных термоядерного поддержки читает. Подтвердите, что считывания, как правило, свободны от несоответствия (хотя некоторый шум следует ожидать), что значительная часть (в идеале ,gt;30 баз) читает выровнять с партнером слияния, и что последовательности непосредственно рядом с точкой разрыва между генами а сайты связывания грунтовки свободны от вставок или удаляний. Подтвердите, что выровненная последовательность включает в себя 3' часть связывающих последовательностей праймеров, поддерживающих считывание синтеза (если 3' части не включены, это может быть признаком неправильного грунтинга).
- Если последовательности кодирования обоих генов участвуют в слиянии, убедитесь, что 3 ' партнер остается в кадре. Нажмите на ссылку Translation в интерфейсе (что даст истинный или ложный статус для каждой комбинации эталонной последовательности), а также вручную подтвердите, что слияние находится в кадре путем проверки так называемых точек разрыва в браузер генома. Называемые точки разрыва могут быть определены путем зависания мыши над красными точками в схеме синтеза.
ПРИМЕЧАНИЕ: Поскольку большинство (но не все) геномные точки разрыва для законных слияний происходят в интронных регионах и приводят к сращиванию целых экзонов, слияния, в которых границы экзона составляют точки разрыва для обоих партнеров, как правило, рассматриваются с большей степенью доверия. Однако, поскольку существует много опубликованных примеров средних экзонических брейк-пойнтов в синтезах, это не должно использоваться в качестве абсолютных критериев в интерпретации синтеза. - Для каждого синтеза вручную убедитесь, что последовательности, прилегающие к точке разрыва, не являются гомологичными для следующего ожидаемого смежных баз для каждого партнера. Осмотрите все возможные смежные экзоны в браузере генома.
ПРИМЕЧАНИЕ: Общим источником артефактного синтеза является несогласованность или неправильное причитание из-за гомологии между двумя генными партнерами, и это не всегда называется системой через описанные выше значки.
- Тщательно изучить каждый называется слияние под вкладкой Сильные доказательства (большинство сильных доказательств слияний называется системой являются артефактными). Кроме того, сканировать слабые доказательства слияния бен, хотя наличие не-артефактного слияния в этом бункере является чрезвычайно редким событием. Чтобы оценить достоверность слияния, сначала обратите внимание на метрики чтения (я/%), и стартовые сайты.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Показано на рисунке 3, Рисунок 4 и Рисунок 5 являются скриншоты из анализа пользовательского интерфейса, демонстрирующего результаты образца аденокарциномы легких. На рисунке 3приведена сводка выборки (вверху), в которых перечислены так называемые веские слияния доказательств, а также статус КК (обведенный красным цветом). Слияние ADCK4-NUMBL (из которых 3 изоформы перечислены) немедленно игнорируется, потому что это постоянное транскрипционное событие чтения (отмеченное разбитыми иконками круга рядом с листингами). В нижней части рисунка 3 находится скриншот страницы «Читаем статистика». Особенно информативные метрики обведемы зеленым цветом. Критическая метрика КК, определяющая характер прохода/неудачи образца, выделена красным цветом (это метрика, которая диктует статус прохода/неудачи в резюме выше). Если это значение ниже 20, отрицательный результат слияния считается «неинформативным». Рисунок 4 и рисунок 5 являются скриншоты схем слияния (вверху) и JBrowse мнения слияния поддержки читает (внизу) для двух слияний, которые требуют дальнейшего расследования. Слияние KIF5B-RET (Рисунок4) демонстрирует большое количество поддерживающих считывающих, высокий процент считывает ся, что поддерживает синтез, и большое количество стартовых площадок. Кроме того, несколько смежных экзонов партнера по слиянию(KIF5B) включены в выравнивание, слияние было проверено, чтобы быть в кадре, и считывания поддержки синтеза, как правило, свободны от несоответствия. По этим причинам слияние считается реальным и отчетным. Слияние LOC101927681-PDGFRB (рисунок5) демонстрирует более низкие показатели поддержки. Кроме того, часть отображения считывания партнера относительно коротка и содержит высокий уровень ошибок, что убедительно свидетельствует о несогласованности и артефактном вызове синтеза. Наконец, интронное последовательность PDGFRB включена, далее предлагая артефакт (большинство, но не все, законные слияния состоят исключительно из последовательности, что карты для кодирования регионов обоих генов). По этим причинам это слияние считается артефактом и не подотчетно.
Рисунок 1: Схематическое представление подхода AMP. Традиционные ампроцированные подходы к целевому обогащению ограничиваются тем фактом, что грунтовки необходимы для всех партнеров по слиянию. Таким образом, новые партнеры слияния не будут обнаружены. В AMP, противоположные грунтовка специфична для адаптера, таким образом, новые партнеры обнаруживаются. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 2: Корреляция между preSeq КК оценка и пост-секвенирования КК. PreSeq Ct и средние уникальные стартовые площадки на значения Управления GSP2 были соотнесемы для серии из 100 образцов. Как правило, как и ожидалось, низкие оценки PreSeq коррелируют с более высокими значениями SS/GSP2 (оба являются индикаторами хорошего качества РНК). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 3: Пример сводки выборки и прочитайте статистические представления. Вверху: просмотр сводки выборки в пользовательском интерфейсе с сильными доказательствами слияний перечисленных. Внизу: просмотр страницы статистики чтения в пользовательском интерфейсе. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 4: Пример законного вызова слияния. Вверху: вид схемы синтеза в пользовательском интерфейсе. Внизу: JBrowse зрения отдельных читает поддержку слияния. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 5: Пример артефактного вызова синтеза. Вверху: вид схемы синтеза в пользовательском интерфейсе. Внизу: JBrowse зрения отдельных читает поддержку слияния. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
| АКТ3 | EWSR1 | NOTCH1 | PRKCA |
| ALK | FGFR1 | НОТЧ2 | PRKCB |
| ARHGAP26 | FGFR2 | NRG1 | RAF1 |
| Axl | FGFR3 | NTRK1 | РЕЛА |
| BRAF | Fgr | NTRK2 | Ret |
| BRD3 | INSR | NTRK3 | ROS1 |
| BRD4 | MAML2 | NUMBL | RSPO2 |
| Egfr | MAST1 | NUTM1 | RSPO3 |
| Эрг | MAST2 | PDGFRA | Трет |
| ESR1 | Встретил | PDGFRB | TFE3 |
| ETV1 | МСМБ | PIK3CA | TFEB |
| ETV4 | Мускус | PKN1 | ТАДА |
| ETV5 | MYB | ППАРГ | TMPRSS2 |
| ETV6 | |||
| В ассоже включает в себя генно-специфические грунтовки для различных экзонов (и некоторых интронов) в вышеуказанных 53 генах. | |||
Дополнительная таблица 1: Список генов, для которых генно-специфические праймеры включены в ассеи (для различных экзонов и интронов).
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Якорный мультиплекс ПЦР основе целевого обогащения и подготовки библиотеки следуют следующего поколения секвенирования хорошо подходит для мультиплексной оценки синтеза генов в клинических образцов опухоли. Сосредоточившись на входе РНК, а не на геномной ДНК, избегается необходимость секвенирования больших и повторяющихся интронов. Кроме того, поскольку этот подход усиливает слияние генов независимо от идентичности партнера по слиянию, обнаруживаются новые слияния. Это является критическим преимуществом в клинической сфере, и было много примеров действия новых синтезов генов, выявленных через AMP сообщили в литературе21,22,23,24, 25.
Поскольку ассс основан на РНК, очень важно сохранить качество РНК в образцах во время обработки. Также важно определить, какие образцы дали РНК секвенирования, что является слишком бедным, чтобы доверять отрицательным результатам слияния. Это достигается путем оценки данных о секвенировании от грунтовок до четырех генов домашнего хозяйства. Если секвенирование этих генов является плохим, то отрицательные результаты синтеза считаются неинформативными. Кроме того, учитывая сложность и множество мокрой скамейке шаги в ассее, важно включить синтез-положительный контроль в каждом запуске асссе. Поступая таким образом, скомпрометированные асссеивые пробежки становятся очевидными благодаря анализу ожидаемых событий слияния в элементе управления.
Как и во всех подходах, основанных на ампроционах, AMP в полнейо зависит от индивидуальной производительности грунтовки. При оценке нескольких экзонов нескольких генов, это неизбежно, что некоторые грунтовки не будет выполнять, а также другие. Поэтому для пользователей крайне важно знать, где результаты проверки невыполняются из-за неэффективности грунтовки. Кроме того, анализы на основе NGS требуют сложного биоинформатического анализа данных. Если используемые алгоритмы не разработаны вдумчиво, вероятно, будут результаты ложного и ложного и ложного. Очень важно, чтобы все синтезы генов, называемые алгоритмами анализа, были вручную проверены пользователем.
С постоянно растущим списком действия синтезов генов, которые должны быть оценены в клинических образцах опухоли, использование мультиплексных анализов, таких как AMP, будет продолжать увеличиваться в клинических лабораториях. Будущие применения метода, скорее всего, будут сосредоточены на объединении термоядерного и мутационного оценки в рамках одного исследования. Независимо от подхода молекулярного анализа, пользователи всегда должны быть осведомлены об ограничениях анализа и всегда должны устанавливать метрики контроля качества для руководства интерпретацией данных.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
D.L.A. получила консультационные сборы от Bayer Oncology, Genentech, AbbVie и Bristol Myers Squibb. K.D.D получил спонсорские поездки от ArcherDx.
Acknowledgments
Эта работа была поддержана молекулярной патологии Общий ресурс Университета Колорадо (Национальный институт рака центр поддержки Грант No. P30-CA046934) и Колорадо Центр персонализированной медицины.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 10 mM Tris HCl pH 8.0 | IDT | 11-05-01-13 | Used for TNA dilution |
| 1M Tris pH 7.0 | Thermo Fisher | AM9850G | Used in library pooling |
| 25 mL Reagent Reservoir with divider | USA Scientific | 9173-2000 | For use with multi-channel pipetters and large reagent volumes |
| 96-well TemPlate Semi-Skirt 0.1mL PCR plate-natural | USA Scientific | 1402-9700 | Plate used for thermocycler steps |
| Agencourt AMPure XP Beads | Beckman Coulter | A63881 | Used in purification after several assay steps |
| Agencourt Formapure Kit | Beckman Coulter | A33343 | Used in TNA extraction |
| Archer FusionPlex Solid Tumor kit | ArcherDX | AB0005 | This kit contains most of the reagents necessary to perform library preperation for Illumina sequencing (kits for Ion Torrent sequencing are also available) |
| Cold block, 96-well | Light Labs | A7079 | Used for keeping samples chilled at various steps |
| Ethanol | Decon Labs | DSP-MD.43 | Used for bead washes |
| Library Quantification for Illumina Internal Control Standard | Kapa Biosystems | KK4906 | Used for library quantitation |
| Library Quantification Primers and ROX Low qPCR mix | Kapa Biosystems | KK4973 | Used for library quantitation |
| Library Quantification Standards | Kapa Biosystems | KK4903 | Used for library quantitation |
| Magnet Plate, 96-well (N38 grade) | Alpaqua | A32782 | Used in bead purificiation steps |
| MBC Adapters Set B | ArcherDX | AK0016-48 | Adapters that contain sample-specific indexes to enable multiplex sequencing |
| Micro Centrifuge | USA Scientific | 2641-0016 | Used for spinning down PCR tubes |
| MicroAmp EnduraPlate Optical 96 well Plate | Thermo-Fisher | 4483485 | Used for Pre-Seq QClibrary quantitation |
| Microamp Optical Film Compression Pad | Applied Biosystems | 4312639 | Used for library quantitation |
| Mini Plate Spinner | Labnet | MPS-1000 | Used for collecing liquid at bottom of plate wells |
| MiSeq Reagent Kit v3 (600 cycle) | Illumina | MS-102-3003 | Contains components necessary for a MiSeq sequencing run |
| MiSeqDx System | Illumina | NGS Sequencing Instrument | |
| Model 9700 Thermocycler | Applied Biosystems | Used for several steps during assay | |
| nuclease free water | Ambion | 9938 | Used as general diluent |
| Optical ABI 96-well PCR plate covers | Thermo-Fisher | 4311971 | Used for Pre-Seq QClibrary quantitation |
| PCR Workstation Model 600 | Air Clean Systems | BZ10119636 | Wet-bench assay steps performed in this 'dead air box' |
| Proteinase K | Qiagen | 1019499 | Used in TNA extraction |
| QuantStudio 5 | Applied Biosystems | LSA28139 | qPCR instrument used for PreSeq and library quantitation |
| Qubit RNA HS Assay Kit | Life Technologies | Q32855 | Use for determing RNA concentration in TNA samples |
| RNase Away | Fisher | 12-402-178 | Used for general RNase decontamination of work areas |
| Seraseq FFPE Tumor Fusion RNA Reference Material v2 | SeraCare | 0710-0129 | Used as the assay positive control |
| Sodium Hydroxide | Fisher | BP359-212 | Used in clean-up steps and for sequencing setup |
| SYBR Green Supermix | Bio Rad | 172-5120 | Component of PreSeq QC Assay |
| TempAssure PCR 8-tube Strips | USA Scientific | 1402-2700 | Used for reagent and sample mixing etc. |
| Template RT PCR film | USA Scientific | 2921-7800 | Used for covering 96-well plates |
| U-Bottom 96-well Microplate | LSP | MP8117-R | Used during bead purification |
References
- Mitelman, F., Johansson, B., Mertens, F. The impact of translocations and gene fusions on cancer causation. Nature Reviews Cancer. 7 (4), 233-245 (2007).
- Daley, G. Q., Van Etten, R. A., Baltimore, D. Induction of chronic myelogenous leukemia in mice by the P210bcr/abl gene of the Philadelphia chromosome. Science. 247 (4944), 824-830 (1990).
- Druker, B. J., et al. Activity of a specific inhibitor of the BCR-ABL tyrosine kinase in the blast crisis of chronic myeloid leukemia and acute lymphoblastic leukemia with the Philadelphia chromosome. New England Journal of Medicine. 344 (14), 1038-1042 (2001).
- Solomon, B. J., et al. First-line crizotinib versus chemotherapy in ALK-positive lung cancer. New England Journal of Medicine. 371 (23), 2167-2177 (2014).
- Shaw, A. T., et al. Crizotinib in ROS1-rearranged non-small-cell lung cancer. New England Journal of Medicine. 371 (21), 1963-1971 (2014).
- Drilon, A., et al. Efficacy of Larotrectinib in TRK Fusion-Positive Cancers in Adults and Children. New England Journal of Medicine. 378 (8), 731-739 (2018).
- Kawai, A., et al. SYT-SSX gene fusion as a determinant of morphology and prognosis in synovial sarcoma. New England Journal of Medicine. 338 (3), 153-160 (1998).
- de Alava, E., et al. EWS-FLI1 fusion transcript structure is an independent determinant of prognosis in Ewing's sarcoma. Journal of Clinical Oncology. 16 (4), 1248-1255 (1998).
- Pierron, G., et al. A new subtype of bone sarcoma defined by BCOR-CCNB3 gene fusion. Nature Genetics. 44 (4), 461-466 (2012).
- Papaemmanuil, E., et al. Genomic Classification and Prognosis in Acute Myeloid Leukemia. New England Journal of Medicine. 374 (23), 2209-2221 (2016).
- Arber, D. A., et al. The 2016 revision to the World Health Organization classification of myeloid neoplasms and acute. Blood. 127 (20), 2391-2405 (2016).
- Sanders, H. R., et al. Exon scanning by reverse transcriptase-polymerase chain reaction for detection of known and novel EML4-ALK fusion variants in non-small cell lung cancer. Cancer Genetics. 204 (1), 45-52 (2011).
- Camidge, D. R., et al. Optimizing the Detection of Lung Cancer Patients Harboring Anaplastic Lymphoma Kinase (ALK) Gene Rearrangements Potentially Suitable for ALK Inhibitor Treatment. Clinical Cancer Research. 16 (22), 5581-5590 (2010).
- Mino-Kenudson, M., et al. A novel, highly sensitive antibody allows for the routine detection of ALK-rearranged lung adenocarcinomas by standard immunohistochemistry. Clinical Cancer Research. 16 (5), 1561-1571 (2010).
- Suehara, Y., et al. Identification of KIF5B-RET and GOPC-ROS1 fusions in lung adenocarcinomas through a comprehensive mRNA-based screen for tyrosine kinase fusions. Clinical Cancer Research. 18 (24), 6599-6608 (2012).
- Davies, K. D., et al. Comparison of Molecular Testing Modalities for Detection of ROS1 Rearrangements in a Cohort of Positive Patient Samples. Journal of Thoracic Oncology. 13 (10), 1474-1482 (2018).
- Reeser, J. W., et al. Validation of a Targeted RNA Sequencing Assay for Kinase Fusion Detection in Solid Tumors. Journal of Molecular Diagnostics. 19 (5), 682-696 (2017).
- Beadling, C., et al. A Multiplexed Amplicon Approach for Detecting Gene Fusions by Next-Generation Sequencing. Journal of Molecular Diagnostics. 18 (2), 165-175 (2016).
- Mamanova, L., et al. Target-enrichment strategies for next-generation sequencing. Nature Methods. 7 (2), 111-118 (2010).
- Zheng, Z., et al. Anchored multiplex PCR for targeted next-generation sequencing. Nature Medicine. 20 (12), 1479-1484 (2014).
- Davies, K. D., et al. Dramatic Response to Crizotinib in a Patient with Lung Cancer Positive for an HLA-DRB1-MET Gene Fusion. JCO Precision Oncology. 2017 (1), (2017).
- Vendrell, J. A., et al. Detection of known and novel ALK fusion transcripts in lung cancer patients using next-generation sequencing approaches. Scientific Reports. 7 (1), 12510 (2017).
- Agaram, N. P., Zhang, L., Cotzia, P., Antonescu, C. R. Expanding the Spectrum of Genetic Alterations in Pseudomyogenic Hemangioendothelioma With Recurrent Novel ACTB-FOSB Gene Fusions. American Journal of Surgical Pathology. 42 (12), 1653-1661 (2018).
- Skalova, A., et al. Molecular Profiling of Mammary Analog Secretory Carcinoma Revealed a Subset of Tumors Harboring a Novel ETV6-RET Translocation: Report of 10 Cases. American Journal of Surgical Pathology. 42 (2), 234-246 (2018).
- Guseva, N. V., et al. Anchored multiplex PCR for targeted next-generation sequencing reveals recurrent and novel USP6 fusions and upregulation of USP6 expression in aneurysmal bone cyst. Genes Chromosomes and Cancer. 56 (4), 266-277 (2017).
