Method Article

Modelo de apendicectomia Murina de colite crônica câncer colorretal associado por localização precisa do remendo de Caecal

DOI:

10.3791/59921

August 24th, 2019

In This Article

Summary

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O protocolo apresentado descreve uma remoção cirúrgica facile do apêndice (remendo caecal) em um rato seguido pela indução do cancro colorretal da doença de entranhas inflamatório-associado. Este modelo murino do apendicectomia permite a investigação do papel biológico do apêndice na patogénese da doença gastrintestinal humana.

Abstract

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O apêndice humano foi recentemente implicado para desempenhar papéis biológicos importantes na patogénese de várias doenças complexas, tais como câncer colorretal, doença inflamatória intestinal, e doença de Parkinson. Para estudar a função do apêndice, um modelo de apendicectomia Murina associada à doença intestinal foi estabelecido e seu protocolo passo a passo é descrito aqui. Este relatório introduz um protocolo facile para a remoção caecal do remendo nos ratos seguidos pela indução química do cancro colorretal colite-associado crônico usando uma combinação de sódio do sulfato do dextrano (DSS) e do azoximetano (Aom). As pilhas específicas de IgA e a concentração de IgA foram reduzidas significativamente em cima da remoção do remendo caecal nos ratos C57BL/6 masculinos comparados àqueles no grupo Sham. Simultaneamente administrar 2% DSS e AOM resultaram em quase 80% de sobrevida de camundongos em grupos de Sham e apendicectomia sem perda significativa de peso corporal. Os resultados histológicos confirmaram a inflamação relativa ao cólon e os graus diferentes de adenocarcinoma. Este modelo pode ser usado para o estudo do papel funcional do apêndice em manter a homeostase da microbiota do intestino e a patogénese da colite e das malignidades do intestino, assim como para o desenvolvimento potencial de terapias de segmentação da droga.

Introduction

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A apendicectomia clínica é um procedimento cirúrgico padrão que envolve a remoção do apêndice principalmente devido à inflamação (por exemplo, apendicite)1,2,3. No entanto, a função biológica do apêndice humano vermiforme permanece controversa4,5,6. O apêndice foi considerado como um remanescente vestigial que projeta-se do ceco no intestino grosso. Até recentemente, estudos evolucionários, imunológicos, morfológicos e microbiológicos sugeriram que o apêndice pode possuir funções distintas. Estas funções incluem a produção de imunoglobinas (por exemplo, IgA e IgG), uma variedade de células B e células T críticas para respostas imunes adaptativas dentro dos tecidos linfoides associados ao intestino (Galts), e reposição do intestino grosso com intestinal comensais 6 anos de , 7 anos de , 8 . º , 9 anos de , 10 de , 11 anos de , doze anos.

Os estudos epidemiológicos clínicos dos pacientes com apendicectomia prévio ou apendicite aguda igualmente revelaram seus papéis potenciais na patogénese de doenças humanas, tais como a doença de entranhas inflamatório (IBD), o cancro colorretal, e não-gastrintestinal distúrbios (por exemplo, doença de Parkinson e doença cardiovascular)13,14,15,16,17,18. Por exemplo, um grande estudo de coorte da população asiática com 75.979 pacientes com apendicectomia mostrou recentemente uma associação significativa entre a apendicectomia e o desenvolvimento subseqüente do câncer colorretal, uma das neoplasias malignas mais comuns com alta incidência e mortalidade14,19. Conformemente, estabelecer um modelo animal apropriado do apendicectomia que se assemelhe a um ser humano será útil investigar as funções biológicas e os mecanismos moleculars do apêndice na patogénese da doença.

Muitos mamíferos possuem um apêndice ou órgão apêndice-like, incluindo primatas, lagomorfos (por exemplo, coelhos), alguns roedores, e marsupiais20. Para animais de laboratório pequenos e comumente usados, o coelho possui o apêndice vermiforme morfologicamente parecido com o humano21,22, mas Galt no coelho é extremamente grande em comparação com o que em seres humanos, uma vez que a maioria dos os tecidos lymphoid são encontrados igualmente em Peyer ' remendos de s situados nos intestinos pequenos e grandes21. Adicionalmente, o coelho mostra uma estrutura folicular lymphoid diferente, uma distribuição da pilha de T, e uma densidade da imunoglobulina do ser humano, que faz o estudo de seus apêndices inadequados21.

Os camundongos são o modelo animal mais comumente utilizado para estudar a fisiopatologia humana e testar os vários therapuetics existentes e novos23,24,25. O único grande aglomerado branco linfoide no ápice do cécum em camundongos, conhecido como o remendo caecal, é pensado para executar funções semelhantes ao apêndice humano26,27,28. No entanto, é praticamente difícil separar o remendo caecal de cécum em camundongos. Até o momento, os procedimentos cirúrgicos comuns para induzir a apendicite em um modelo de camundongo envolvem uma incisão relativamente grande (por exemplo, 1 – 2 cm) através da parede abdominal para obter acesso a todo o cécum (tabela suplementar 1)29, 30,31,32,33,34,35,36.

Nisto, para gerar um modelo do apendicectomia associado com a doença gastrintestinal, este relatório apresenta um protocolo cirúrgico facile para a remoção caecal do remendo nos ratos. Isto é seguido pela administração combinada do agente genotóxico Aom e pelo agente pró-inflamatório DSS para a indução do cancro colorretal colite-associado similar àquele visto nos seres humanos. O IBD demonstrou ser um fator de risco do câncer intestinal37,38. A combinação do câncer colorretal associado à colite crônica induzida por Aom/DSS tem sido bem estabelecida, e os leitores podem se referir a Neufert et al., e Thaker et al. para procedimentos detalhados39,40. Este modelo reprodutível e rápido de apendicectomia Murina pode ser usado para estudar a inflamação intestinal modulada por apêndice e a microbiota do cólon, especialmente no desenvolvimento e progressão do IBD e do câncer colorretal.

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Protocol

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Todos os procedimentos animais foram aprovados pelo Comitê institucional de cuidados e uso de animais da Universidade de Xi ' an Jiaotong (no. XJTULAC2019-1023).

1. apendicectomia de camundongos

  1. Casa 8 – 10-week-old C57BL/6 ratos machos em um certificado específico-patógeno livre (SPF) ambiente para 1 semana antes da cirurgia.
  2. Prepare os seguintes instrumentos cirúrgicos estéreis: um par de Microtesouras, um par de micro-fórceps, dois tamanhos (4-0 e 8-0) de suturas não absorvíveis esterilizadas, uma pena elétrica da coagulação com suporte da agulha, álcool médico de 75%, esfrega iodo-baseada ( por exemplo, entoiodine), e um pacote de cotonetes estéreis do algodão.
  3. Encha uma seringa de 10 mL com soro fisiológico pré-aquecido a 0,9% para o rubor abdominal e hidratação durante a cirurgia.
  4. Anestesie um rato não-jejum via intraperitoneal (i.p.) com 1% de pentobarbital sódico numa dose de 100 mg/kg. Verific para ver se há a profundidade da anestesia pela falta da resposta aos reflexos do pedal.
    Nota: uma única dose anestésica é administrada para garantir um efeito sedativo completo no rato. a circunstância de procedimentos curtos, 50 mgs/quilograma do pentobarbital i.p. do sódio podem ser suficientes.
  5. Raspar suavemente o cabelo abdominal com uma máquina de barbear eléctrica.
  6. Coloque o mouse sobre a almofada de aquecimento para evitar a hipotermia.
  7. Fixe o rato em uma plataforma em uma posição supina coloc quatro tiras da fita adesiva médica através dos membros para impedir o movimento postural durante a cirurgia.
  8. Toque suavemente o abdômen inteiro para encontrar a sensação de um galo.
    Nota: na maioria dos casos, a sensação de uma colisão sempre indica a posição exata do caecum. Para evitar possíveis danos ao resto do intestino, esta pré-localização do cécum antes da incisão abdominal é importante.
  9. Cubra com uma cortina estéril e desinfete a área raspada do abdômen aplicando esfrega cirúrgica alternada da solução iodo-baseada e do álcool de 75%. Repita o processo 2x.
  10. Faça uma incisão longitudinal variando de 0,5 – 1,0 cm na linha média do abdômen.
  11. De acordo com a localização pré-determinada do cécum, alcançar o cécum e suavemente exteriorização (~ 1 cm) para identificar o remendo caecal. Use uma solução salina estéril e pré-aquecida de pH fisiológico para hidratar o intestino.
    Nota: o remendo caecal de um rato é parte do cécum e caracterizado pela presença de folículos ovóide brancos na superfície.
  12. Para evitar potenciais complicações do sangramento e infecção pós-operatória, ligar os vasos sanguíneos mesentéricos do cécum usando o 8-0 Sutura. Hidratar o cécum com soro fisiológico estéril.
  13. Marque a região de ressecção usando a sutura 4-0 com um laço aberto próximo ao ápice do cécum no cólon proximal.
    Nota: a marcação do cécum com um laço aberto também impede o vazamento de conteúdo caecal do corte.
  14. Corte o remendo caecal abaixo do Resection marcado usando micro-tesouras e limpe para fora o índice caecal residual com cotonetes médicos do algodão. Em seguida, desinfete o coto de cécum com esfoliação à base de iodo.
  15. Feche o coto com a sutura running usando o 8-0 Sutura.
  16. Remova com cuidado o laço da linha 4-0 usado previamente para marcar o resection no coto do caecum.
  17. Esterilizar a posição suturada com esfrega à base de iodo. Volte a hidratar o sítio cirúrgico com soro fisiológico.
  18. Feche a camada da musculatura com a sutura running usando 8-0 fio de sutura.
  19. Feche as camadas da pele usando suturas interrompidas com fio de sutura 4-0.
  20. Desinfete o corte cirúrgico 2x com esfoliação à base de iodo e, em seguida, remova o iodo usando 75% de álcool medicinal.
  21. Gentilmente virar o mouse para trás, por via subcutânea (s.c.) injetar 0,1 mg/kg de peso corporal de buprenorfina e 0,4 mL de soro fisiológico e deixe o mouse descansar na almofada de calor até retornar à consciência.
  22. Coloque o mouse de volta para a gaiola estéril e acompanhar de perto para sinais de dor por 3 dias após a cirurgia para garantir a recuperação.
    Nota: a aplicação pós-operatória de 0, 5 mg/kg de buprenorfina pode ser necessária para o alívio da dor do rato individual. Permita que os ratos recuperem por 7 dias após a cirurgia para uma indução mais adicional do cancro colorretal colite-associado.

2. indução de câncer colorretal associado à colite crônica com AOM e DSS

Nota: Execute este procedimento 7 dias após a apendicectomia.

  1. Prepare a solução de ações da AOM dissolvendo 25 mg de AOM em 2,5 mL de soro fisiológico 0,9% estéril a uma concentração de 10 mg/mL.
    Nota: AOM é sensível à luz.
    1. Alíquota 2,5 mL de solução de ações AOM preparada em tubos de vidro de 5 mL envoltos com folha de alumínio e armazenar a-20 ° c cada vez após o uso.
    2. Descongelar uma alíquota de AOM uma vez e diluir-lo para uma concentração de 1 mg/mL com 0,9% de soro fisiológico estéril (rácio 1:10).
      Cuidado: AOM é extremamente carcinogénico; Portanto, realize todo o procedimento de preparação em uma capa de fumaça.
  2. Dissolver 4 g de pó DSS em 200 mL de água esterilizada para preparar 2% (p/v) solução DSS.
    Nota: a concentração de DSS pode variar dependendo da estirpe do rato, sexo e ciclo de indução; 3% DSS podem ser usados para outras cepas de camundongos.
  3. Administrar simultaneamente o AOM/DSS preparado recentemente para os ratos. Para fazer isso, siga as etapas abaixo.
    1. Injete intraperitoneal 0, 1 mL/g de solução de trabalho de AOM preparada na hora para cada rato e substitua a água autoclavada por 2% de solução de DSS durante 5 dias ad libitum.
      Nota: cada gaiola contém cinco camundongos; Verifique regularmente a garrafa de bebida DSS para garantir que nenhum precipitado ocorra durante o período de tratamento.
    2. Peso e acompanhar de perto cada rato todos os dias.
      Nota: durante a administração, eutanizar camundongos com até 20% de perda de peso em comparação com o seu peso inicial ou sinais da aproximação, squint, hipotermia, e atividade pobre.
  4. Forneça uma garrafa fresca de água autoclavada no dia 6 pós-AOM/DSS Administração até o dia 21 (Figura 1B).
    Nota: Este é um ciclo completo composto por 21 dias.
  5. Repita os passos 2.3 – 2.4 para um adicional de dois ciclos e sacrificar os ratos no dia 70.

3. avaliação da inflamação e do tumor colônicos (70 dias após a administração de AOM)

  1. Sacrifique os camundongos por inalação de CO2 a uma taxa de enchimento de 10% na câmara de eutanásia seguida de luxação cervical.
  2. Colher todo o cólon de cima da junção ileo-cólica para o ânus.
  3. Expor o lado do lúmen abrindo o cólon longitudinalmente. Corte o cólon inteiro em 10 cm de comprimento e fixe o tecido do cólon em formalina a 10% para 72 h para coloração de hematoxilina e eosina (H & E).

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Results

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Estabelecimento de modelo de apendicectomia murina

Este modelo de apendicectomia Murina do câncer colorretal associado à colite crônica pode ser gerado seguindo as etapas cirúrgicas e de indução seqüenciais, conforme ilustrado na Figura 1. As posições mais freqüentes do cécum estão na fossa ilíaca esquerda e direita seguida da linha média do abdome (Figura 2). A taxa bem sucedida de pré-localização do cécum antes da i...

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Discussion

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Um modelo murino do apendicectomia do cancro colorretal colite-associado foi obtido usando etapas cirúrgicas com uma taxa de sobrevivência elevada nos ratos. Na maioria dos casos, desde que o cécum foi posicionado a parede abdominal (tabela suplementar 1, tabela suplementar 2, e Figura 2), era difícil prejudicar sua posição sem laparotomia. Neste protocolo cirúrgico, foi introduzido um passo fácil de tocar a colisão, e a avaliação quantitativa do local do cério também foi fo...

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Disclosures

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Os autores não têm nada a revelar.

Acknowledgements

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Este trabalho é parcialmente apoiado por fundos de investigação fundamentais para a Universidade Central (G2018KY0302), fundo de desenvolvimento de investigação fundamental da Universidade (KT00062), Fundação Nacional de ciência natural da China (81870380), e prêmio de pesquisa clínica da Primeiro hospital afiliado da Universidade de Xi ' an Jiaotong na China (NO. XJTU1AF-CRF-2015-029). Os autores agradecem o Dr. Chengxin shi por suas sugestões técnicas durante a fase adiantada da exploração do modelo murino do apendicectomia, assim como o patologista Dr. XI Liu para a avaliação de H & e que mancham resultados da colite e dos tumores colorretal. Y.L. realizou a demonstração cirúrgica, fez a análise dos dados, e escreveu o rascunho do manuscrito; A JL, a GL, a Z.P. e a Y.M. participaram da preparação cirúrgica, coleções de tecidos e produção de vídeo; M realizou citometria de fluxo e ELISA; Q.W. e H.X. forneceram o suporte técnico de gerar um modelo murino clinicamente relevante; R.X.Z. projetou o estudo, supervisionou a pesquisa, e escreveu e comprovou o manuscrito; J.S. revisou o manuscrito.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Azoximetano (AOM)Sigma-Aldrich, Inc.A5486
Sal de sódio de sulfato de dextrano (DSS)MP Biomedicals, Inc.160110
EntoiodoShanghai likon alta tecnologia desinfecção co. LTD310102
paquímetro digitalNingbo yuanneng trading co. LTD4859263
4-0 Suturas de sedaYuanlikang co. LTD20172650032
8-0 Suturas de ProleneYuanlikang co. LTD20172650032
Caneta de coagulação elétricaChuang mei medical equipment co. LTD28221777292
seringa descartável 1mlShengguang medical products co. LTD3262-2014
seringa descartável 10mlShengguang medical products co. LTD3262-2014
75% Álcool medicinalShandong anjie tecnologia de desinfecção de alta tecnologia co. LTD371402AAJ008
Salde sódio pentobarbitalSigma-Aldrich, Inc.57-33-0
Solução salina fisiológicaShandong qidu pharmaceutical co. LTDH37020766
cotonete absorventeHenan ruike medical co., LTDRK051
Instrumentos cirúrgicos-oftálmicosJinzhong Shanghai co. LTDWA3050

References

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