É necessária uma assinatura do JoVE para visualizar este conteúdo. Faça login ou inicie seu teste gratuito.

Artigo de método

Silenciando a faísca: Edição do genoma CRISPR/Cas9 em peixes fraca elétricos

9.4K visualizações

⸱

DOI:

10.3791/60253

⸱

27 de outubro de 2019

Neste artigo

Resumo

Aqui, um protocolo é apresentado para produzir e traseira CRISPR / Cas9 genoma nocaute peixeelétrico. Descritos em detalhes são os requisitos necessários de biologia molecular, reprodução e criação para um ginásio e um mormyrid, e técnicas de injeção para produzir larvas DelF 0 induzidas por Cas9.

Resumo

A eletrorecepção e a eletrogênese mudaram na história evolutiva dos vertebrados. Há um grau impressionante de convergência nesses fenótipos derivados independentemente, que compartilham uma arquitetura genética comum. Isto é talvez melhor exemplificado pelas numerosas características convergentes de gymnotiformes e mormyrids, dois folheados teleost ricos em espécies que produzem e detectam campos elétricos fracos e são chamados de peixes fracamente elétricos. Nos 50 anos desde a descoberta de que peixes elétricos fracos usam eletricidade para sentir seu entorno e se comunicar, uma crescente comunidade de cientistas ganhou enormes insights sobre a evolução do desenvolvimento, sistemas e circuitos de neurociência, fisiologia celular, ecologia, biologia evolutiva e comportamento. Mais recentemente, tem havido uma proliferação de recursos genômicos para peixes elétricos. O uso desses recursos já facilitou insights importantes no que diz respeito à conexão entre genótipo e fenótipo nessas espécies. Um grande obstáculo à integração de dados genômicos com dados phenotípicos de peixes elétricos fracos é a falta atual de ferramentas genômicas funcionais. Relatamos aqui um protocolo completo para a realização de mutagênese CRISPR/Cas9 que utiliza mecanismos de reparo de DNA endógenos em peixes fracamente elétricos. Demonstramos que este protocolo é igualmente eficaz tanto na espécie mormyrid Brienomyrus brachyistius e no gymnotiform Brachyhypopomus gauderio usando CRISPR/Cas9 para atingir indels e mutações pontuais na primeira exon do sódio canal gene scn4aa. Usando este protocolo, embriões de ambas as espécies foram obtidos e genotipados para confirmar que as mutações previstas no primeiro exon do canal de sódio scn4aa estavam presentes. O fenótipo de sucesso knock-out foi confirmado com gravações mostrando amplitudes reduzidas de descarga de órgãos elétricos quando comparadas a controles não injetados combinados com o tamanho.

Introdução

A eletrorecepção e a eletrogênese mudaram na história evolutiva dos vertebrados. Duas linhagens de peixes teleost, osteoglossiformes e siluriformes, evoluíram o electroreception em paralelo, e cinco linhagens de teleosts (gymnotiformes, mormyrids, e os Astros generacopus, Malapterurus, e Synodontis) evoluiu a eletrogênese em paralelo. Há um grau impressionante de convergência nestes fenótipos derivados independentemente, que compartilham uma arquitetura genética comum1,2,3.

Isto é talvez melhor exemplificado pelas numeros....

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Protocolo

Todos os métodos descritos aqui foram aprovados pelo Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) da Michigan State University.

1. Seleção de alvos sgRNA

Nota: Um protocolo é fornecido para o projeto manual de sgRNAs na etapa 1.1. Isso foi utilizado para a seleção de alvos scn4aa. Um protocolo adicional é fornecido para facilitar este processo (passo 1.2) usando o portal web EFISHGENOMICS. É aconselhável que os usuários selecionem o protocolo 1.2, que apresenta várias "verificações" automatizadas para garantir o sucesso na concepção de sgRNAs para alvos personalizados.

  1. <....

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Resultados

Os locais-alvo sgRNA foram identificados dentro do exon 1 de scn4aa em B. gauderio e B. brachyistius como descrito na Seção 1. Os sgRNAs foram gerados conforme descrito na Seção 2. Após a seleção e síntese bem sucedida sgRNA (Figura 1), clivagem in vitro foi testado(Figura 2). Os sgRNAs que demonstram o corte in vitro foram selecionados então para microinjections da única pilha.

Os peixes adultos foram condi.......

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Discussão

A riqueza phenotípica de peixes fracamente elétricos, juntamente com uma recente proliferação de recursos genômicos, motiva uma forte necessidade de ferramentas genômicas funcionais no modelo de peixe seleto fraco. Este sistema é particularmente atraente devido à evolução convergente de numerosas características phenotípicas em linhagens paralelas de peixes, que são facilmente mantidos em laboratório.

O protocolo aqui descrito demonstra a eficácia da técnica CRISPR/Cas9 em linhagens de peixes .......

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Divulgações

Os autores não têm nada a divulgar.

Agradecimentos

Os autores reconhecem os esforços heróicos de Monica Lucas, Katherine Shaw, Ryan Taylor, Jared Thompson, Nicole Robichaud e Hope Healey para ajudar com a criação de peixes, coleta de dados e desenvolvimento precoce do protocolo. Gostaríamos também de agradecer aos três revisores por suas sugestões ao manuscrito. Acreditamos que o produto final seja de melhor qualidade depois de abordar seus comentários. Este trabalho foi financiado pelo apoio da National Science Foundation #1644965 e #1455405 ao JRG, e da bolsa DG do Conselho de Pesquisa de Ciências Naturais e Engenharia para o VLS.

....

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
20 mg/mL de grau de RNA Glicogênio ThermoScientificR0551
50 bp escada de DNANEBN3236L
Capilar de vidro de borossilicato com filamentoSutter InstrumentBF100-58-10(OD 1,0 mm, ID 0,58 mm, 10 cm de comprimento)
Proteína Cas9 com NLS; 1 mg/mLPNA BiologiaCP01
Dneasy Blood & Kit de TecidosQiagen69506
Eppendorf FemptoJet 4i MicroinjetorFisher ScientificE5252000021
Eppendorf Microloader Pipetas PontasFisher Scientific10289651
Seringa HamiltonFisher Scientific14-824-654referida como "seringa de vidro de precisão" no protocolo
KimwipeFisher Scientific06-666referido como "limpeza de tarefas delicadas" no protocolo
MEGAscript T7 Transcription KitInvitrogenAM1334
NEBuffer 3NEBB7003Susado para ensaio de clivagem in vitro
OneTaq DNA kitNEBM0480L
OvaprimSyndel USAhttps://www.syndel.com/ovaprim-ovammmlu010.htmlreferido como "agente de desova" no protocolo
ParafilmFisher ScientificS37440referido como "termoplástico" no protocolo
Extrator de pipetasWPISU-P97marca sutter
QIAquick PCR Kit de PurificaçãoQiagen28106
Agulha reutilizável- requer personalizaçãoFisher Scientific7803-02Personalize para 0,7 polegadas de comprimento; ponto estilo 4 e ângulo 25
T4 DNA polimeraseNEBM0203LUse com o tampão NEB 10x incluído
Ferramentas revestidas com Teflonbonefolder.comT-SPATULA4PIECEreferido como "politetrafluoretileno" no protocolo

Referências

  1. Gallant, J. R., et al. Genomic basis for the convergent evolution of electric organs. Science. 344 (6191), 1522-1525 (2014).
  2. Zakon, H. H., Lu, Y., Zwickl, D. J., Hillis, D. M.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Reimpressões e permissões

Etiquetas

Edição GênicaTécnica de MicroinjeçãoDescarga de Órgão ElétricoGene do Canal de SódioGenômica ComparativaValidação FuncionalInjeção em EmbriõesEmbriões Mutantes