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Artigo de método

Triagem para inibidores da pirofosia ligada à membrana de maritoga

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DOI:

10.3791/60619

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23 de novembro de 2019

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* These authors contributed equally

Neste artigo

Resumo

Aqui apresentamos um método de triagem para inibidores de pirofosfatase ligado à membrana (da Thermotoga maritima)com base na reação azul molibdênio em um formato de placa de 96 poços.

Resumo

Pirofosfatases ligadas à membrana (mPPases) são enzimas diméricas que ocorrem em bactérias, arqueais, plantas e parasitas protistas. Estas proteínas acovardam o pirofosfato em duas moléculas de ortofosfato, que é acoplado com próton e / ou íon de sódio bombeamento através da membrana. Como não existem proteínas homólogas em animais e humanos, os mPPases são bons candidatos na concepção de potenciais alvos de drogas. Aqui apresentamos um protocolo detalhado para a tela para inibidores de mPase utilizando a reação azul molibdênio em um sistema de placa de 96 poços. Usamos mPase da bactéria termofílica Thermotoga maritima (TmPPase) como uma enzima modelo. Este protocolo é simples e barato, produzindo um resultado consistente e robusto. Leva apenas cerca de uma hora para concluir o protocolo de ensaio de atividade desde o início do ensaio até a medição de absorção. Uma vez que a cor azul produzida neste ensaio é estável por um longo período de tempo, ensaio (s) subseqüente pode ser realizado imediatamente após o lote anterior, e a absorção pode ser medida mais tarde para todos os lotes de uma só vez. A desvantagem deste protocolo é que ele é feito manualmente e, portanto, pode ser desgastante, bem como exigir boas habilidades de pipetting e tempo de manutenção. Além disso, a solução arsenite-citrate usada neste ensaio contém arsenita de sódio, que é tóxica e deve ser tratada com as precauções necessárias.

Introdução

Aproximadamente 25% do total de proteínas celulares são proteínas da membrana e cerca de 60% delas são alvos de drogas1,2. Um dos alvos potenciais da droga3, pirofosfofases ligados à membrana (mPPases), são enzimas diméricas que bombeiam próton e/ou íon de sódio através da membrana por hidróforadede de pirofosfato em dois ortopofosfatos4. mPPases podem ser encontrados em vários organismos5, como bactérias, archaea, plantas e parasitas protistas, com exceção de seres humanos e animais4. Em parasitas protistas, por ex....

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Protocolo

1. Preparação de proteínas

NOTA: A expressão e purificação de TmPPase foi descrita em outros lugares13.

  1. Prepare 10 mL da solução tampão de reativação contendo 20 mM 2-(N-morpholino) ácido ethanesulfonic (MES) pH 6.5, 3.5% (v/v) glycerol, 2 mM dithiothreitol (DTT), e 0.05% dodecyl maltoside (DDM).
  2. Prepare 10 mL da mistura de reação contendo 200 mM Tris-Cl pH 8.0, 8.0 mM MgCl2,333 mM KCl, e 67 mM NaCl.
    NOTA: Mg2+ é necessário para chelate o pirofosfato como o substrato de mPase, K+ é necessário para aumentar a atividade enzimática como TmPPase é um mPase ....

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Resultados

Neste protocolo, oito compostos (1-8) foram testados(Figura 2A)juntamente com o BID, inibidor comum de pirofosfatases, como controle positivo. Cada composto foi testado em três concentrações diferentes (1 μM, 5 μM e 20 μM) em triplicado. O fluxo de trabalho da triagem é representado na Figura 1,a partir da amostra e preparação do reagente até a medida de absorção em 860 nm.

Ao final deste protocolo, após a adição da solução A + B e ar.......

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Discussão

Aqui relatamos um protocolo detalhado para triagem simples de inibidores para pirofosfatase ligada à membrana de T. maritima em um formato de placa de 96 poços baseado em Vidilaseris et al.14. Este protocolo é barato e baseado em ácido 12-fosphomolybdic, que é formado a partir de ortopofosfato e molibdênio em condições ácidas e reduzido a espécies de fosphomolybdenum com uma cor azul distinta12. Este método é preferido em relação a outros protocolos, como o ensaio .......

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Divulgações

Os autores não têm nada a divulgar.

Agradecimentos

Este trabalho contou com o apoio das subvenções da Fundação Jane e Aatos Erkko e do BBSRC (BB/M021610) a Adrian Goldman, a Academia da Finlândia (nº 308105) para Keni Vidilaseris (nº 310297) a Henri Xhaard, e (nº 265481) a Jari Yli-Kauhaluoma, e os Fundos de Helsínquia da Universidade de Pesquisa a Gustav Boije af Gennäs. Os autores agradecem a Bernadette Gehl por sua ajuda técnica durante o projeto.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Folha de vedação adesivaThermo ScientificAB0558
Heptamolibdato de amônio tetrahidratadoMerckF1412481 636
Ácido ascórbicoSigma-Aldrich95212-250G
BioLite 96Well Multidish ThermoScientific130188
Dimetil sulfóxido (DMSO)Merck1167431000
Tiras de tubo de PCR de 8 poços 0,2 ml sem tampas (120)Genética NipponFG-028
Dodecil maltosídeo (DDM)MelfordB2010-100G
EtanolMerck1009901001
Ácido acético glacialMerck1000631011
Ácido clorídricoSigma-Aldrich258148-500ML
Imidodifosfato de sódio salSigma-AldrichI0631-1G
L-&alfa;-Fosfatidilcolina de lecitina de sojaSigma429415-100GM
de PCR de 96 poços
MultiSkan GoThermo Scientific10680879
Ascent (Tipo 750)Labsystems
Placa de Petri de poliestireno (tamanho 150 mm x 15 mm)Sigma-AldrichP5981-100EA
Cloreto de potássioMerck104936
Prism 6 softwareGraphPad
QBT2 Bloco de aquecimentoGrant Instruments
Meta-arsenito de sódioFisher Chemical
Fosfato de sódio dibásico (Pi)SigmaS0876-1KG
Pirofosfato de sódio dibásicoFluka71501-100G
Citrato trissódico di-hidratadoFluka71404-1KG
Cloreto de magnésio Placas 8147330500 Sigma-Aldrich Multiplate Bio-Rad MLL9651 Nepheloskan 12897692

Referências

  1. Terstappen, G. C., Reggiani, A. In silico research in drug discovery. Trends in Pharmacological Sciences. 22 (1), 23-26 (2001).
  2. Rask-Andersen, M., Almen, M. S., Schioth, H. B. Trends in the exploitation of novel drug targets. Nature Reviews Drug Discovery. 10 (8),....

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Reimpressões e permissões

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