Artigo de método

Acoustopforese microfluidica para flowthrough separação de bactérias gram-negativas usando Contas de Afinidade De Aptamer

DOI:

10.3791/63300

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17 de outubro de 2022

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1Department of Digital Anti-Aging Health Care, Inje University, 2Micro device Lab Co., Ltd, 3Biohealth Products Research Center (BPRC), Inje University, 4Department of Biomedical Engineering, Inje University

Neste artigo

Resumo

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Este artigo descreve a fabricação e o funcionamento de chips acoustopforéticos microfluidos usando a técnica de austopforese microfluidica e microesferas modificadas por aptamer que podem ser usadas para o isolamento rápido e eficiente de bactérias Gram-negativas a partir de um meio.

Resumo

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Este artigo descreve a fabricação e o funcionamento de chips acoustopforéticos microfluidos usando uma técnica de austopforese microfluídica e microesferas modificadas por aptamer que podem ser usadas para o isolamento rápido e eficiente de bactérias Gram-negativas de um meio. Este método aumenta a eficiência de separação usando uma mistura de microcanais longos e quadrados. Neste sistema, a amostra e o buffer são injetados na porta de entrada através de um controlador de fluxo. Para centralizar as contas e separar amostras, a energia CA é aplicada no transdutor piezoelétrico através de um gerador de função com um amplificador de energia para gerar força de radiação acústica no microcanal. Há um canal bifurcado tanto na entrada quanto na saída, permitindo separação simultânea, purificação e concentração. O dispositivo tem uma taxa de recuperação de >98% e pureza de 97,8% até uma concentração de 10x de dose. Este estudo demonstrou uma taxa de recuperação e pureza superior aos métodos existentes para separar bactérias, sugerindo que o dispositivo pode separar as bactérias de forma eficiente.

Introdução

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Plataformas microfluídicas estão sendo desenvolvidas para isolar bactérias de amostras médicas e ambientais, além de métodos baseados na transferência dielétrica, magnetoforese, extração de contas, filtragem, microfluidos centrífugas e efeitos inerciais, e ondas acústicas superficiais 1,2. A detecção de bactérias patogênicas continua usando reação em cadeia de polimerase (PCR), mas geralmente é trabalhosa, complexa e demorada 3,4. Os sistemas de austopforese microfluidica são uma alternativa para lidar com isso através de rendimento razoável e isolamento celular sem contato 5,6,7. Acoustophoresis é uma tecnologia que separa ou concentra contas usando o fenômeno do movimento material através de uma onda sonora. Quando as ondas sonoras entram no microcanal, elas são classificadas de acordo com o tamanho, densidade, etc., das contas, e as células podem ser separadas de acordo com as propriedades bioquímicas e elétricas do meio de suspensão 7,8. Assim, muitos estudos aoustopforéticos foram ativamente perseguidos 9,10,11, e recentemente, simulações numéricas 3D de movimento acoustopforético induzido pelo streaming acústico orientado por limites em microfluidos de onda acústica de superfície em pé foram introduzidas12.

Estudos em diversas áreas estão examinando como substituir anticorpos 2,3. Aptamer é um material-alvo com alta seletividade e especificidade, e muitos estudos estão sendo realizados 2,9,10,13. Os aptamers têm vantagens de pequeno porte, excelente estabilidade biológica, baixo custo e alta reprodutibilidade em relação aos anticorpos e estão sendo estudados em aplicações diagnósticas e terapêuticas 2,3,14.

Aqui, este artigo descreve um protocolo de tecnologia de acoustopforese microfluídica que pode ser usado para a rápida e eficiente separação de bactérias Gram-negativas (GN) de um meio usando microesferas modificadas por aptamer. Este sistema gera uma onda de pé acústica bidimensional (2D) através da atuação piezoelétrica única, estimulando simultaneamente duas ressonâncias ortogonais dentro de um microcanal retangular longo para alinhar e focar microesferas ligadas a aptamer nos pontos de nó e anti-nó para eficiência de separação 2,11,15,16 . Há um canal bifurcado tanto na entrada quanto na saída, permitindo separação simultânea, purificação e concentração.

Este protocolo pode ser útil no campo do diagnóstico precoce de doenças infecciosas bacterianas, bem como uma resposta rápida, seletiva e sensível a infecções bacterianas patogênicas através do monitoramento da água em tempo real.

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Protocolo

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1. Design de chip de acoustopforese microfluídica

NOTA: A Figura 1 mostra um esquema da separação e coleta de microesferas-alvo de microcanais por acoustopforese. O chip de austopforese microfluídica é projetado com um programa CAD.

  1. Projete um chip de acoustopforese microfluida que usa uma mistura de contas modificadas por aptámero e contas de poliestireno revestidos de streptavidin (PS) correspondentes ao tamanho das bactérias para estudar o desempenho de separação do dispositivo.
  2. Projete um chip de austopforese microfluida que colete contas de PS na tomada alvo e descarte o resto através da tomada depois de injetar uma mistura de amostra de PS na entrada da amostra (ver Figura 2 e Tabela 1).
    NOTA: Para isso, o chip acoustofluidic é projetado composto por duas entradas para injetar amostras e tampão, um canal principal com um transdutor piezoelétrico anexado (PZT) para permitir que as microesferas sejam alinhadas centralmente, e duas saídas através das quais os espécimes são coletados e os resíduos são descarregados (Figura 3A)
  3. Projete um chip de acoustopforese microfluida no qual microesferas, tampão, bactérias e aptamers passam pelo canal principal, com as microesferas alinhadas centralmente através de acoustophoresis in-chip induzida pelo PZT (Figura 3B,C)

2. Fabricação de chip de acoustopforese microfluídica

NOTA: Monte quatro camadas na seguinte ordem: uma camada de vidro-silício borossilicato, uma camada de silício, uma camada de vidro borossilicato e uma camada PZT, como mostrado na Figura 3A,B.

  1. Prepare vidro borossilicato (a camada superior) com furos de 2 mm de diâmetro pelo jateamentode areia 17 na entrada e saída para conectar tubos de polietercetíton (PEEK). O vidro borossilicato mede 20 × 80 × 0,5 mm3.
  2. Prepare uma camada de canal de silício de 200 μm de espessura com um microcanal com uma área transversal de 0,2 × 0,2 mm2 formadas por um fotoresist e um padrão de silício obtido através de gravura de íons reativos profundos (RIE)18. Perfurar furos de 1 mm de diâmetro para os canais de entrada de amostra e tampão e os canais de coleta e saída de resíduos durante a gravação de íons reativos.
    NOTA: Aqui, a gravura de íons usa o processo RIE para formar microcanais. Um fotoresist foi aplicado na forma de um canal em um wafer de silício para a camada do canal de silício. O wafer de silício revestido de RP foi gravado com plasma gerado pela aplicação de 13,56 Mhz ao flúor18.
  3. Prepare um chip com as camadas acima e abaixo da camada de silício (20 × 80 × 0,5 mm 3) preparado na etapa 2.2 (20 × 80 ×3 0,5 mm3) ligado ao vidro borossilicato na etapa 2.1 e uma terceira camada de vidro borossilicato usando anodização a 1.000 V e 400 °C19.
  4. Conecte um PZT (20 × 40 mm2) à camada de vidro borossilicato ao longo do canal microfluido usando um adesivo de cianoacrilato (10 μL ou menos).
    NOTA: Aplique o adesivo como uma camada muito fina no canal usando um cotonete para minimizar qualquer mudança de altura. Figura 3C é uma imagem do dispositivo.

3. Cepas bacterianas e cultura

NOTA: Consulte a Tabela 2 para selecionar e incubar bactérias GN e Gram-positive (GP) para experimentos. Para o método de cultura, consulte as etapas 3.1-3.4. Todas as bactérias devem ser incubadas em condições aeróbicas até que seja obtida uma absorvância de 0,4 a 600 nm (OD600).

  1. Para bactérias GN como Escherichia coli DH5α, Escherichia coli KCTC2571, Sphingomonas insulae, e pseudomonas pictorum e bactérias GP como Staphylococcus epidermidis e Staphylococcus pasteuri, incubam em luria-bertani médio a 37 °C e 220 rpm por 16 h.
  2. Para Enterobacter (GN) e Bacillus megaterium (GP; KCTC 1021), incubar em caldo de nutrientes médio a 37 °C e 220 rpm por 16 h.
  3. Para Enterococcus thailandicus (GP), incubar em de Man, Rogosa e Sharpe (MRS) médio a 37 °C e 220 rpm por 16 h.
  4. Para Listeria grayi (GP), incubar em meio de infusão cerebral ao coração a 37 °C e 220 rpm por 16 h.
  5. Centrífuga (9056 x g) as bactérias cultivadas por 1 min a temperatura ambiente (RT), depois lava duas vezes com 1x tampão salino tampão tampão de fosfato (PBS).
  6. Prepare as bactérias GN e GP selecionadas para análise, reutilizando-se no buffer PBS.

4. Microesferas e imobilização de aptamer em microesferas

  1. Resuspend a mistura de microesferas revestidas de streptavidin (10 μm) (Tabela de Materiais) antes do uso (misture via vórtice para 20 s).
  2. Prepare o aptamer desnaturando a 95 °C por 3 min e, em seguida, redobrando a 0 °C por 2 min.
  3. Transfira 250 μL da mistura de microesferas revestidas de streptavidin resuspended para um tubo de 1,5 mL e lave com tampão Tris-HCl (50 mM Tris, pH 7.4, 1 mM MgCl2, 5 mM KCL, 100 mM NaCl) na RT. Em seguida, adicione 100 μL de aptamer de DNA biotinitado ao tubo.
  4. Incubar a mistura em RT por 30 minutos enquanto gira (25 rpm).
  5. Após a centrifugação (9056 x g), lave o tubo duas vezes com 200 μL de tampão Tris-HCl em RT.
  6. Adicione 10 μL de BSA (100 mg/mL) ao tubo de amostra lavado e incubar por 30 minutos em RT com rotação (25 rpm).
  7. Finalmente, lave as microesferas modificadas por aptamer duas vezes por centrifugação (9056 x g) no buffer Tris-HCl em RT.

5. Configuração e operação acoustophoresis

  1. Conecte os tubos PEEK às duas entradas para injetar duas amostras e tampão e as duas tomadas para coleta e descarga de resíduos (Figura 4).
  2. Encha manualmente o canal de acoustopforese microfluídica com água desmineralizada sem bolhas usando uma seringa de 10 mL.
  3. Prepare um controlador de pressão de precisão com dois ou mais canais de saída para controlar o fluxo de fluidos. Em seguida, encha os frascos com amostra e tampão com dois orifícios em suas tampas, respectivamente, e conecte-se à entrada do chip.
    NOTA: Um controlador de pressão de precisão com dois ou mais canais de saída pode ser substituído por múltiplos controladores de pressão de precisão. Na entrada do buffer, um buffer capaz de gerar um fluxo laminar que impede que a amostra se mova para o centro durante a injeção de amostra é injetado através de um controlador de fluxo.
  4. Após o preparo do dispositivo, injete a amostra e o buffer aplicando uma pressão de 2 kPa na entrada da amostra e 4 kPa na entrada do buffer usando o dispositivo de controle de pressão de precisão.
    NOTA: Neste momento, para um fluxo suave de laminar, a pressão de injeção do tampão deve ser maior do que a pressão de injeção da amostra. O fluxo é controlado por um controlador de fluxo fixado ao aspirador conectado ao canal de entrada.
  5. Concentre-se em uma conta para movê-la para o centro do canal microfluido usando o PZT enquanto verifica através do microscópio.
    NOTA: Quanto maior a conta, maior o efeito na forma de onda, por isso é mais fácil alinhar com o ponto de nó. Gerador de função com amplificador aplica energia ao PZT para gerar onda senoidal no microcanal. Como as porções superior e inferior do microcanal são feitas de vidro, a onda seno gerada é refletida e cria um nó ponto7.
  6. Gere uma frequência de ressonância de 3,66 MHz usando um gerador de função de um único canal e amplie um sinal típico por 16 dB (cerca de nove vezes) usando um amplificador de energia (Figura 4).
    NOTA: A frequência de ressonância do atuador deve corresponder ao tamanho do canal; como o canal é quadrado, o PZT opera em uma frequência precisa para criar um único nó.
  7. Observe os processos de separação e enriquecimento no chip acoustofluido com um microscópio de fluorescência e uma câmera de alta velocidade operando a 1.200 fps.
  8. Quantifique e analise a presença ou ausência de bactérias GN e bactérias GP verificando as imagens tiradas com a câmera do microscópio de fluorescência das contas ligadas a bactérias e bactérias descarregadas através das amostras de coleta e saída de resíduos.
    NOTA: Microesferas com tampão, bactérias e aptamers passam pelo canal principal, e as microesferas são alinhadas centralmente através de acoustophoresis in-chip induzida pelo PZT. Finalmente, microesferas que ligaram bactérias GN são coletadas na tomada de coleta, e as bactérias não coletadas são descarregadas através da tomada de resíduos.

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Resultados

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A Figura 5 mostra a imagem do fluxo de contas em função da tensão PZT (OFF, 0,1 V, 0,5 V, 5 V). No caso do chip acoustopforético introduzido neste estudo, foi confirmado que, à medida que a tensão do PZT aumentava, a concentração central das contas de 10 μm aumentava. A maioria das contas de 10 μm de tamanho estavam concentradas no centro a 5 V da tensão PZT. Através deste resultado, uma frequência ressonante de 3,66 MHz foi gerada em um gerador de função de um único canal, e um sinal geral ...

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Discussão

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Desenvolvemos um dispositivo microfluido de levitação sônica para capturar e transferir bactérias GN de amostras de cultura em alta velocidade com base em um método de execução contínuo de acordo com seu tamanho e tipo, e microesferas modificadas por aptamer. O microcanal longo e quadrado permite um design mais simples e maior custo-benefício para a 2D acoustophoresis do que o relatado anteriormente 20,21,22,23,24,25,26.

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Divulgações

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Os autores não têm conflitos de interesse para divulgar.

Agradecimentos

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Este trabalho foi apoiado pela Fundação Nacional de Pesquisa da Coreia (NRF) financiada pelo governo coreano (Ministério da Ciência e TIC). (Não. NRF-2021R1A2C1011380)

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
1 µ m microesferas de poliestirenoBang LaboratoriesPS04001Contas de tamanho celular
10 µ m Microesferas revestidas com estreptavidinaBang LaboratoriesCP01007contas de afinidade Aptamer
4 polegadas Silicon Wafer / SU-8 molde4science29-03573-01Componentes do chip
AptamerIntegrated DNA TechnologiesGN3-6'RNApara conjugação de bactérias
Vidro borosilicatoSchottBOROFLOAT 33Componentes da centrífuga de chip
DaihanCF-10Partículas de desperdício
Cola de cianoacrilato3MAD100Anexe PZT ao microchip
Escherichia coli DH5αKCTCKCTC2571Bactérias-alvo
Gerador funcionalGW InstekAFG-2225Gerar frequência
Câmera de alta velocidadePhotronFASTCAM MiniObservação da separação
Placa quenteComo umHI-1000Placa de aquecimento para cura de líquido PDMS
KOVAX-SYRINGE 10 mL SeringaKoreavaccine22G-10MLEncha o canal de acostoforese microfluídica com água desmineralizada sem bolhas.
Polidimetilsiloxano líquido, PDMSDow Corning Inc.Sylgard 184Componentes do chip
LB Broth MillerBD Difco244620Cultura de células (meio Luria-Bertani)
MicroscópioOlympus Corp.IX-81Observação da separação
Tampão PBSCapricórnio científicoPBS-1ABactérias debilitantes
Tubos PEEKSaint-Gobain Ppl Corp.AAD04103Injetar ou coletar partículas
Transdutor piezoelétricoFuji CeramicsC-213Gerar onda específica no canal
Amplificadorde potência Pesquisa do amplificador75A250AAmplificar frequência
Controlador de pressão/μ fluconAMEDAMED-μ fluconControle do controlador de pressão / fluxo de ar
Tris-HCl bufferinvitrogen15567027Wasing partículas
Rotador de tuboSeouLin BioscienceSLRM-3Modificando aptâmero e talão

Referências

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