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Artigo de método

Técnica modificada para construção de fístula arteriovenosa em coelhos

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DOI:

10.3791/64352

10 de fevereiro de 2023

* These authors contributed equally

Neste artigo

Resumo

O presente protocolo propõe a criação de uma fístula arteriovenosa em coelhos utilizando uma técnica no-touch modificada. A técnica envolve a anastomose látero-lateral da artéria carótida comum e veia jugular externa sem a dissecção dos tecidos perivenosos ou corte da artéria.

Resumo

A estenose justastomótica é um problema desafiador que frequentemente causa a não maturação e diminui a patência de uma fístula arteriovenosa (FAV). A lesão de veias e artérias durante a operação e alterações hemodinâmicas podem levar à hiperplasia intimal, levando à estenose justastomosótica. Para reduzir a lesão de veias e artérias durante a operação, este estudo propõe uma nova técnica no-touch modificada (MNTT) para a construção de FAV que pode diminuir a taxa de estenose justastomosótica e melhorar a patência da FAV. Para desvendar as alterações hemodinâmicas e os mecanismos do MNTT, este estudo apresentou um procedimento de FAV utilizando essa técnica. Embora esse procedimento seja tecnicamente desafiador, 94,4% de sucesso do procedimento foi alcançado após treinamento adequado. Finalmente, 13 dos 34 coelhos tiveram uma FAV funcional 4 semanas após a cirurgia, levando a uma taxa de perviedade da FAV de 38,2%. Entretanto, com 4 semanas, a sobrevida foi de 86,1%. A ultrassonografia mostrou fluxo sanguíneo ativo através da anastomose de FAV. Além disso, o fluxo espiral laminar foi observado na veia e artéria próximas à anastomose, sugerindo que esta técnica pode melhorar a hemodinâmica da FAV. Na observação histológica, observou-se hiperplasia íntima venosa importante na anastomose com FAV, enquanto não foi observada hiperplasia intimal significativa na veia jugular externa (VVEJ) proximal da anastomose. Esta técnica melhorará a compreensão dos mecanismos subjacentes ao uso de MNTT para a construção de FAV e fornecerá suporte técnico para a otimização adicional da abordagem cirúrgica na construção de FAV.

Introdução

A confecção de fístula arteriovenosa (FAV) é amplamente utilizada na prática clínica para pacientes submetidos à hemodiálise de manutenção (MHD), apresentando maior patência e menos complicações do que um enxerto arteriovenoso (AVG) ou um cateter tunelizado com balonete (TCC)1,2. Embora a FAV seja o acesso vascular preferido, ela não é perfeita e apresenta limitações inerentes. As taxas de perviedade da FAV primária em 1 ano são de apenas 60%-65%, com muitas falhas ocorrendo na região da anastomose próxima 3,4,5.

Os vasos sofrem diferentes graus de dano durante a abordagem cirúrgica tradicional, o que acaba afetando a maturação da FAV. Novas modalidades cirúrgicas, como a técnica no-touch (NTT) (Figura 1 Suplementar) proposta por Hörer et al.6 e a excursão e reimplante da artéria radial (RADAR) propostas por Sadaghianloo et al.7,8 e Bai et al.9, foram desenhadas para diminuir a taxa de estenose justastomosótica e melhorar a patência da fístula modificando a técnica cirúrgica. Embora o efeito do RADAR tenha sido melhor do que o do NTT, observou-se que a estenose arterial de influxo foi mais proeminente com o RADAR. Para reduzir ainda mais a lesão das veias e artérias durante a operação, em 2021, uma nova técnica no-touch modificada (MNTT) foi proposta para criar uma FAV radiocefálica, preservando o tecido perivenoso ao redor da veia cefálica sem cortar a artéria radial (Figura 1 Suplementar e Figura 2 Suplementar). Os resultados preliminares mostraram aumento da perviedade primária, diminuição da estenose justastomótica e ausência de estenosearterial10,11.

Considerando a atual falta de modelos animais de FAV usando MNTT, e para explorar melhor o mecanismo de MNTT em cirurgia de FAV, este estudo introduz um procedimento de FAV da artéria carótida comum (ACC)-veia jugular externa (VVEJ) usando MNTT.

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Protocolo

Os procedimentos experimentais com animais de laboratório foram aprovados pelo Comitê de Ética em Bem-Estar Animal Experimental da Universidade de Medicina de Nanjing. Coelhos da raça Nova Zelândia com idade de 10 meses (de ambos os sexos; peso corporal, 3,18 ± 0,24 kg) foram utilizados para este estudo. Os animais foram obtidos de fonte comercial (ver Tabela de Materiais).

1. Preparo dos animais

  1. Anestesiar os coelhos utilizando uma injeção intravenosa mista de cloridrato de tiletamina e cloridrato de zolazepam (3 mg/kg) na veia marginal da orelha e uma injeção intramuscular de sumianxina II (0,02 mL/kg) (ver Tabela de Materiais) no músculo dos membros posteriores.
    NOTA: Após cerca de 1-3 min, o efeito anestésico estabiliza. Antes de prosseguir, o nível de anestesia deve ser verificado pinçando a pele atrás do pescoço e observando o reflexo corneano. Cloridrato de tiletamina, cloridrato de zolazepam (0,5 mg/kg) e sumianxina II (0,01 mL/kg) podem ser adicionados durante a operação, se necessário.
  2. Coloque o coelho sobre uma mesa fixa (ver Tabela de Materiais) em decúbito dorsal e amarre os membros e incisivos com amarrações.
  3. Faça a barba no pescoço e na parte superior do peito usando uma navalha elétrica e remova os pelos com creme depilatório animal (consulte a Tabela de Materiais).
  4. Manter condições estéreis durante a cirurgia, autoclavando o equipamento cirúrgico e limpando a área cirúrgica com solução de iodopovidona.

2. Incisão na pele

  1. Posicione o coelho com a cabeça em direção ao cirurgião.
  2. Faça uma incisão longitudinal de ~3 cm entre a mandíbula e a articulação esternoclavicular usando tesoura cirúrgica ou lâmina de bisturi.

3. Preparo da veia jugular externa (VEJ)

  1. Expor a incisão e identificar a VEJ direita. Certifique-se de que a VEJ e seus tecidos perivasculares sejam claramente visíveis e não dissecados.
    NOTA: A VJJ apresenta padrão em "Y" invertido, sendo anastomosado o ramo próximo ao colo medial.
  2. Faça um túnel pelo qual uma pinça vascular possa ser passada (ver Tabela de Materiais) ao longo da direção perpendicular à EJV. Certifique-se de que as distâncias entre as aberturas em ambos os lados do túnel e o EJV sejam de >1 cm.
  3. Coloque uma pinça vascular ao longo do túnel.
  4. Fazer outro túnel (o mesmo que no passo 3.2) na EJV distal usando o mesmo método.
    NOTA: Certifique-se de que a distância entre os dois túneis é de ≥2 cm.
  5. Aplicar uma sutura 4-0 (ver Tabela de Materiais) e uma pinça vascular ao longo do túnel para controlar o fluxo sanguíneo (Figura 1A).

4. Dissecar e preparar a artéria carótida comum (ACC)

  1. Use pinças (ver Tabela de Materiais) para explorar a ACC lateral à traqueia e medial ao músculo esternocleidomastoideo.
    OBS: A ACC tem sensação pulsátil e corre paralelamente ao nervo cervical.
  2. Dissecar o CCA com um comprimento de cerca de 2 cm.
    NOTA: Evitar lesão do nervo vago e seus ramos com um curso arterial profundo.
  3. Coloque um fio de sutura 4-0 ao redor da CCA para controlar o fluxo sanguíneo quando necessário.
  4. Aplicar pinças vasculares (ver Tabela de Materiais) o mais distal e proximalmente possível (Figura 1B).

5. Preparo da anastomose

  1. Para flebotomia e anastomose, use microtesouras (ver Tabela de Materiais) para dissecar a parte interna da VEJ (4 mm de comprimento) livre dos tecidos circundantes.
  2. Faça uma incisão longitudinal de 4 mm de comprimento com microtesoura no meio da veia. Enxaguar a veia com solução de heparina (100 UI/mL) para evitar trombose.
  3. Realizar incisão longitudinal medindo aproximadamente 4 mm na parede anterior da artéria com lâmina afiada e microtesoura. Enxaguar a artéria com 100 UI/mL de solução de heparina até que o vaso esteja livre de sangue.

6. Anastomose látero-lateral

  1. Aproxime o EJV e o CCA, o mais próximo possível.
  2. Aplicar a técnica de Kunlin12 para anastomose látero-lateral da CCA e EJV usando 8-0 suturas inabsorvíveis (ver Tabela de Materiais). Sutura primeiro a parede posterior do vaso (Figura 1C), seguida da parede anterior do vaso.
    OBS: Como a parede da VAJ em coelho é fina, deve-se tomar cuidado durante a cirurgia para evitar danos aos vasos que possam comprometer posteriormente a patência da anastomose. Durante o processo de anastomose vascular, solução de heparina (100 UI/mL) deve ser usada repetidamente para enxaguar o lúmen para evitar trombose.

7. Retirada da pinça vascular e ligadura da veia

  1. Remova o clamp vascular distal da ACC, o pinça vascular proximal da VEJ e, por sua vez, o pinça vascular proximal da ACC. Observe o fluxo sanguíneo ativo através da anastomose.
  2. Amarrar a extremidade distal da VJJ usando a sutura 4-0 que foi colocada anteriormente. Remova a pinça vascular distal da VEJ.
  3. Retirar o fio de sutura que foi colocado ao redor da CCA (Figura 1D).

8. Fechamento da pele e cuidados pós-operatórios

  1. Após não haver sangramento significativo no campo cirúrgico, fechar a pele do pescoço com suturas interrompidas (4-0).
  2. Coloque o coelho em uma gaiola até que ele se recupere completamente. Normalmente, isso leva de 30 a 45 minutos.
    NOTA: Em caso de recuperação incompleta ou tardia, deve-se tomar cuidado para garantir que o coelho não sofra choque hemodinâmico devido a sangramento na área cirúrgica. Se necessário, administrar Sumianxin II (0,01 mL/kg) após a cirurgia.

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Resultados

O resultado da aplicação bem sucedida desta técnica é uma FAV pérvia no pescoço de coelhos. Este estudo utilizou os seguintes critérios para avaliar o sucesso: (1) quando a anastomose vascular é completada, o tremor venoso da FAV pode ser tocado e o sopro vascular pode ser ouvido; (2) 4 semanas após o estabelecimento da FAV, o fluxo sanguíneo ativo através da anastomose interna da fístula pode ser medido pelo ultrassom com Doppler colorido; (3) 4 semanas após o estabelecimento da FAV, a coloração pela hematoxilina-eosina...

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Discussão

Atualmente, vários modelos animais estão disponíveis para FAV. Dentre eles, suínos, ovelhas e cães são os mais utilizados como modelos animais de grande porte13,14,15. Os modelos animais de pequeno porte utilizados incluem coelhos, ratos e camundongos16,17,18. Coelhos da raça Nova Zelândia foram utilizados neste estudo. Coelhos da raça ...

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Divulgações

Os autores não apresentam potenciais conflitos de interesse relacionados aos fármacos e materiais utilizados neste procedimento.

Agradecimentos

Este estudo foi apoiado por subsídios do Projeto do Plano de Ciência e Tecnologia de Suzhou (SYS2020077), Projeto do Plano de Ciência e Tecnologia da Zona de Alta Tecnologia de Suzhou (2020z001), Projeto do Plano de Desenvolvimento de Ciência e Tecnologia de Suzhou-Inovação em Ciência e Tecnologia Médica e de Saúde (SYK2021030), Projeto Geral do Fundo de Desenvolvimento de Ciência e Tecnologia da Universidade Médica de Nanjing (NMUB20210253), Departamento de Ciência e Tecnologia de Suzhou da aplicação do projeto de pesquisa básica (No.SYSD2019205, No.SYS2020119), Projeto do Plano de Desenvolvimento de Ciência e Tecnologia de Medicina Tradicional Chinesa da Província de Jiangsu (No.MS2021098), o Projeto de Educação Colaborativa de Cooperação Indústria-Universidade do Ministério da Educação (No. 202102242003), o Sexto Projeto "333 Cultivo de Talentos de Alto Nível" na Província de Jiangsu, Projeto de Fundo de Pré-pesquisa de Nível Hospitalar do Hospital Municipal de Ciência e Tecnologia de Suzhou (SZKJCYY2022014) e Projeto de Ciência e Tecnologia Juvenil "KeJiaoXingWei" de Suzhou (KJXW2022086).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Biotecnologia Depilatória AnimalFuzhou Feijing Co., Ltd.PH1877
Pinça hemostática curvaXinhua Surgical Instrument Co., Ltd.ZH131R/RN
Pinça de dissecaçãoXinhua Surgical Instrument Co., Ltd.ZDO25R / RN
barbeador elétricoShenbao Technology Co., LtdPGC-660
Tabela FixaZhenhua Biomedical Instrument Co., LtdZH-DSB019
Halsey needleholderXinhua Surgical Instrument Co., Ltd.ZM208R / RN
Heparina Dodium InjeçãoJiangsu Wanbang Biochemical Pharmaceutical Group Co., Ltd.
Gaze médica curativoNanchang Kangjie produtos de higiene médica Co., Ltd20172640135
Micro fórcepsXinhua Surgical Instrument Co., Ltd.ZD275RN / T
Micro pinça de suporte de agulhaXinhua Surgical Instrument Co., Ltd.ZF2618RB / T
Micro tesouraXinhua Surgical Instrument Co., Ltd.ZF022T
Suturas sem seda 4-0Kollsut Medical Instrument Co., Ltd.NMB020RRCN26C075-1
Suturas não absorvíveis 8-0 (agulha dupla)Fornecedor verificado - Yangzhou Yuankang Medical Instrument Co., Ltd.
solução de iodopovidonaShanghai Likang Desinfecção High-tech Co., Ltd.
enxágueJiangsu Tonghui Medical Instrument Co., Ltd20180039
cabo de bisturiShanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd. Fábrica de instrumentos cirúrgicosJ11030
Lâmina afiadaSuzhou Medical Products Factory Co., Ltd.
Injeção de Cloreto de Sódio  (100 ml)Fornecedor verificado - Guangdong Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd.
Tesoura SugicalXinhua Instrumento Cirúrgico Co., Ltd.ZC120R/RN
Sumianxin IIJilin Dunhua Shengda Animal Pharmaceutical Co., Ltd.
Seringa com agulha?5 mL)BD dispositivos médicos (Shanghai) Co., Ltd2006116
Cloridrato de Tiletamina e Cloridrato de Zolazepam para InjeçãoVirbac Pet Health, França83888204
Agulha triangularHangzhou Huawei suprimentos médicos Co., Ltd7X17
Braçadeira vascularXinhua Surgical Instrument Co., Ltd.
Coelhos da Nova ZelândiaSuzhou Huqiao Biological Co., Ltd.SCXK2020-0001
H3202061210299023602Agulha de 310512 TY21232001B21K090420180801ZF220RN

Referências

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