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Os experimentos foram realizados de acordo com o Guia para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório dos National Institutes of Health (Publicação NIH nº 8023, revisada em 1978). O protocolo foi aprovado pelo Comitê de Ética da Universidade de Yantai (Aprovação nº YTDX20240526). Materiais perigosos foram descartados de acordo com protocolos institucionais de resíduos químicos. A Figura 1 ilustra um diagrama esquemático do desenho experimental. Os reagentes e os equipamentos utilizados estão listados na Tabela de Materiais.
1. Detalhes dos animais
Ratos machos CD-1 pesando entre 22 e 25 g eram alojados em uma sala com ciclo claro/escuro de 12 a 12 horas. Os animais estavam livres para conseguir comida e água.
2. Preparação do modelo de camundongos ICH
O modelo camundongo do PCI foi estabelecido de acordo com um relatórioanterior 11. Brevemente, os camundongos foram anestesiados com xilazina (10 mg/kg) e cetamina (90 mg/kg), depois posicionados em um sistema estereotáxico. Um pequeno furo de rebarba foi perfurado na sutura coronal direita (2,2 mm lateral à linha média, 0,2 mm posterior à bregma). Uma microseringa foi inserida no hemisfério direito a uma profundidade de 3,5 mm a partir da superfície do crânio. Usando uma bomba de microinfusão, colagênase bacteriana (0,075 U em 0,5 μL soro fosfatado tamponado [PBS]) foi infundida a uma taxa de 0,15 μL/min. A agulha foi retirada suavemente após 5 minutos. Os camundongos do grupo simulado receberam um volume equivalente de PBS em vez de colagênase. Selei o buraco da rebarba com cera óssea e a incisão no couro cabeludo foi suturada. A temperatura corporal dos animais era mantida em 37°C até o despertar.
3. Desenho experimental
Os camundongos machos CD-1 foram aleatoriamente distribuídos em três grupos: sham, modelo e lansoprazol. O modelo ICH foi estabelecido conforme descrito acima. Trinta minutos após a indução da ICH, camundongos do grupo do lansoprazol receberam lansoprazol na dose de 30 mg/kg (a dose de lansoprazol foi selecionada segundo um relatórioanterior 12), administrada uma vez ao dia por três dias consecutivos. Os camundongos dos grupos simulado e modelo receberam injeções intraperitoneais de PBS. Três dias após a ICH, a função neurológica de curto prazo foi avaliada usando o teste de Garcia, teste de colocação do membro anterior e teste rotodódico. No dia 29 após a indução da ICH, foram realizados os novos testes de reconhecimento de objetos e labirinto aquático para avaliar a função neurológica a longo prazo.
4. Teste Garcia
Dois pesquisadores, cegados para o grupo, realizaram o teste Garcia de acordo com um protocolo13 previamente relatado. A função neurológica foi avaliada usando um sistema de pontuação que variava de 0 a 21. A avaliação consiste em sete subtestes, cada um pontuado de 0 a 3 (0 = pior, 3 = melhor).
5. Teste de colocação do membro anterior
Após o teste de Garcia, o teste de colocação do membro anterior foi realizado de acordo com o método14 previamente descrito. Os camundongos eram mantidos em posição vertical, paralela à mesa, permitindo que suas vibrissas roçassem a superfície. A colocação dos membros anteriores foi observada em 10 testes consecutivos. A porcentagem de posicionamento do membro anterior esquerdo foi calculada como: Posição do membro anterior esquerdo / (Posição do membro anterior esquerdo + Posição do membro dianteiro direito) × 100%.
6. Teste rotativo
Após o teste de posicionamento do membro anterior, os camundongos foram colocados em uma haste rotativa a 5 rpm por 3 minutos para treinamento. A haste foi acelerada de 5 rpm para 30 rpm em 4 minutos. A duração em que cada camundongo permaneceu na vareta foi registrada ao longo de um período de 5 minutos, e a latência de fuga foiregistrada em 15.
7. Ensaio de permeabilidade intestinal e edema cerebral
Após o teste rotativo, seis camundongos de cada grupo foram selecionados aleatoriamente. De acordo com o métodoanterior 16, o FITC-dextran foi administrado intragicastricamente em uma dose de 300 mg/kg. Três horas depois, os camundongos foram anestesiados com isoflurano, e sangue foi coletado do plexo venoso retroorbital, centrifugado a 4 °C e 11.000 × g por 5 minutos. O conteúdo de FITC-dextrano foi analisado usando um leitor de placas de fluorescência em 485 nm de excitação e 528 nm de emissão. Os animais eram então decapitados, e o hemisfério direito do cérebro era coletado e pesado para obter o peso úmido. O tecido foi secado a 100 °C por 24 horas para determinar o peso seco. O teor de água cerebral (%) foi calculado como: [(Peso úmido − Peso seco) / Peso úmido] × 100%.
8. Avaliação de permeabilidade da barreira hematoencefálica (BBB)
Após o teste rototodo, seis camundongos de cada grupo foram selecionados aleatoriamente para avaliar a permeabilidade ao BBB. Uma solução de azul de Evans a 2% foi administrada intraperitonealmente a 4 mL/kg. Três horas depois, os camundongos foram anestesiados com isoflurano, e a perfusão transcárdica foi realizada usando PBS. O hemisfério direito do cérebro foi homogeneizado em 50% de ácido tricloroacético na proporção de 3:1 (tecido cerebral: ácido tricloroacético). O homogenado foi centrifugado a 15.000 × g e 4 °C por 20 minutos. Depois, 500 μL do sobrenadante foram misturados com 500 μL de etanol 70% e incubados durante a noite a 4 °C no escuro. A concentração de azul de Evans foi medida em 610 nm e quantificada usando uma curva padrão. Os dados são apresentados como μg de azul de Evans por mg de tecido cerebral.
9. Exame histopatológico do intestino e do cérebro
Após o teste rotatorio, três camundongos de cada grupo foram selecionados aleatoriamente. Os camundongos foram anestesiados com isoflurano. O jejuno, o íleo e o cérebro foram coletados e fixados em 10% de formaldeído. Os tecidos foram seccionados com 5 μm de espessura, e foi realizada coloração por hematoxilina-eosina (HE). O exame histopatológico do intestino e do cérebro foi realizado ao microscópio por dois experimentadores que estavam cegos para as tarefas em grupo. O número de microglia ao redor do hematoma foi contado em seções representativas. As contagens celulares foram realizadas em cinco campos visuais arbitrários distribuídos por três seções por animal.
10. Medição de LPS e IL-1β
Após o teste rotativo, seis camundongos de cada grupo foram selecionados aleatoriamente. Os camundongos foram anestesiados com isoflurano e coleta de sangue. As amostras de sangue foram centrifugadas a 5.000 × g e 4 °C por 10 minutos, e o soro foi coletado. O hemisfério direito do cérebro foi colhido, e homogeneados cerebrais foram preparados na proporção de 1:3 (peso cerebral em gramas para volume de PBS em mililitros). Os homogenados foram centrifugados a 12.000 × g e 4 °C por 10 minutos. As concentrações de proteína no sobrenadante foram determinadas usando um kit de BCA. Os níveis de LPS e IL-1β tanto no soro quanto no homogeneado cerebral foram medidos usando kits ELISA, seguindo as instruções do fabricante.
11. Microscopia eletrônica de transmissão
Para exame microscópico eletrônico, três animais de cada grupo foram selecionados aleatoriamente após o teste de rotodo. Os camundongos foram anestesiados com isoflurano e passaram por perfusão transcardíaca com 2% de glutaraldeído e 2,5% de paraformaldeído em 0,1 M PBS (seguindo protocolos institucionalmente aprovados). O cérebro, o jejuno e o íleo foram então colhidos e colocados em glutaraldeído a 2% em tampão de cacodilato de 0,1 M (pH 7,4) a 4 °C durante a noite. As amostras foram posteriormente transferidas para tetróxido de ósmio a 1% por 1 hora em temperatura ambiente. Os tecidos foram cortados em seções ultrafinas (50 nm). Após a desidratação, as seções foram coradas com acetato de uranila e citrato de chumbo para observação sob microscópio eletrônico de transmissão. Todas as seções foram avaliadas de forma cega e fotografadas usando um microscópio eletrônico de transmissão.
12. Reconhecimento de objetos inovadores
Aos 29 dias após a modelagem do ICH, foi realizado o novo teste de reconhecimento de objetos para avaliar a função de aprendizagem e memória dos camundongos. No primeiro dia, nenhum objeto foi colocado no aparelho (comprimento: 40 cm, largura: 40 cm, altura: 40 cm), permitindo que os camundongos explorassem livremente por 5 minutos. No segundo dia, dois objetos idênticos foram colocados no aparelho, e os ratos puderam explorá-los por 5 minutos. Vinte e quatro horas depois, um dos objetos foi substituído por um objeto novo. Os ratos exploraram os dois objetos por mais 5 minutos. O tempo de exploração era registrado quando o nariz do rato tocava um objeto ou quando sua cabeça estava orientada em direção ao objeto a uma distância de 1 cm. O tempo gasto explorando o objeto novo foi medido e calculado. Um tempo de exploração mais longo do objeto novo indica melhor aprendizado e capacidade de memória.
13. Labirinto aquático Morris
Aos 32 dias após a modelagem do ICH, as funções de aprendizagem e memória foram avaliadas usando o labirinto aquático Morris. O aparelho consistia em uma piscina circular (diâmetro: 100 cm, altura: 40 cm) cheia de água (profundidade: 25 cm) mantida entre 22 °C ± 1 °C. Uma plataforma de escape (diâmetro: 9 cm) foi submersa 1 cm abaixo da superfície da água. No teste de navegação, os camundongos passaram por quatro testes por dia. O tempo necessário para encontrar a plataforma foi registrado como a latência de escape. Ratos que não localizavam a plataforma em até 60 segundos eram gentilmente guiados até ela. No quinto dia, foi realizado um teste de sonda de 60 segundos. A função de memória era avaliada registrando a latência de escape, o número de travessias da plataforma e o tempo passado no quadrante alvo. Os dados foram analisados usando um software de rastreamento de vídeo.
14. Análise estatística
Os dados foram analisados usando o software GraphPad Prism versão 7.0. Os resultados são apresentados como média ± desvio padrão. O teste de Shapiro-Wilk foi usado para avaliar se os dados de cada grupo seguiam uma distribuição normal. As diferenças entre os grupos foram analisadas por ANOVA unidirecional seguida pelo teste post hoc de Tukey. Para comparações não paramétricas, foi utilizado o teste de Kruskal-Wallis seguido pelo teste de Dunn. Um valor-p de <0,05 foi considerado estatisticamente significativo.